La actina participa en muchos procesos celulares importantes, incluida la contracción muscular, la motilidad celular , la división celular y la citocinesis , el movimiento de vesículas y orgánulos , la señalización celular y el establecimiento y mantenimiento de las uniones celulares y la forma de las células. Muchos de estos procesos están mediados por interacciones extensas e íntimas de la actina con las membranas celulares . [2] En los vertebrados, se han identificado tres grupos principales de isoformas de actina , alfa , beta y gamma . Las alfa actinas, que se encuentran en los tejidos musculares, son un componente importante del aparato contráctil. Las actinas beta y gamma coexisten en la mayoría de los tipos de células como componentes del citoesqueleto y como mediadores de la motilidad celular interna . Se cree que la diversa gama de estructuras formadas por la actina que le permiten cumplir una gama tan amplia de funciones está regulada mediante la unión de tropomiosina a lo largo de los filamentos. [3]
La capacidad de una célula para formar microfilamentos dinámicamente proporciona el andamiaje que le permite remodelarse rápidamente en respuesta a su entorno o a las señales internas del organismo , por ejemplo, para aumentar la absorción de la membrana celular o aumentar la adhesión celular para formar tejido celular . A este andamiaje se pueden anclar otras enzimas u orgánulos como los cilios para controlar la deformación de la membrana celular externa , lo que permite la endocitosis y la citocinesis . También puede producir movimiento por sí solo o con la ayuda de motores moleculares . Por tanto, la actina contribuye a procesos como el transporte intracelular de vesículas y orgánulos, así como a la contracción muscular y la migración celular . Por tanto, juega un papel importante en la embriogénesis , la curación de heridas y la invasividad de las células cancerosas . El origen evolutivo de la actina se remonta a las células procarióticas , que tienen proteínas equivalentes. [4] Los homólogos de actina de procariotas y arqueas se polimerizan en diferentes filamentos helicoidales o lineales que constan de una o varias hebras. Sin embargo, los contactos dentro de la cadena y los sitios de unión de nucleótidos se conservan en procariotas y arqueas. [5] Por último, la actina juega un papel importante en el control de la expresión genética .
Un gran número de enfermedades y dolencias son causadas por mutaciones en alelos de los genes que regulan la producción de actina o de sus proteínas asociadas. La producción de actina también es clave en el proceso de infección por algunos microorganismos patógenos . Las mutaciones en los diferentes genes que regulan la producción de actina en el ser humano pueden provocar enfermedades musculares , variaciones en el tamaño y función del corazón así como sordera . La composición del citoesqueleto también está relacionada con la patogenicidad de bacterias y virus intracelulares , particularmente en los procesos relacionados con evadir las acciones del sistema inmunológico . [6]
Función
La función principal de la actina en la célula es formar polímeros lineales llamados microfilamentos que cumplen diversas funciones en la estructura de la célula, redes de tráfico, migración y replicación. [7] El papel multifacético de la actina depende de algunas de las propiedades de los microfilamentos: primero, la formación de filamentos de actina es reversible y su función a menudo implica una rápida polimerización y despolimerización. En segundo lugar, los microfilamentos están polarizados, es decir, los dos extremos de un filamento son distintos entre sí. En tercer lugar, los filamentos de actina pueden unirse a muchas otras proteínas, que en conjunto ayudan a modificar y organizar los microfilamentos para sus diversas funciones. [7]
En la mayoría de las células, los filamentos de actina forman redes de mayor escala que son esenciales para muchas funciones clave: [8]
Las redes de actina brindan soporte mecánico a las células y proporcionan rutas de tráfico a través del citoplasma para ayudar a la transducción de señales.
El rápido montaje y desmontaje de la red de actina permite que las células migren ( Migración celular ).
La actina es extremadamente abundante en la mayoría de las células y comprende del 1 al 5% de la masa proteica total de la mayoría de las células y el 10% de las células musculares. [7]
La proteína actina se encuentra tanto en el citoplasma como en el núcleo celular . [9] Su ubicación está regulada por vías de transducción de señales de la membrana celular que integran los estímulos que recibe una célula estimulando la reestructuración de las redes de actina en respuesta. [10]
Hay varios tipos diferentes de actina con estructuras y funciones ligeramente diferentes. La α-actina se encuentra exclusivamente en las fibras musculares , mientras que la β- y γ-actina se encuentran en otras células. Como estos últimos tipos tienen una alta tasa de rotación, la mayoría de ellos se encuentran fuera de estructuras permanentes. Los microfilamentos que se encuentran en células distintas a las musculares están presentes en tres formas: [11]
Redes de microfilamentos : las células animales suelen tener una corteza celular debajo de la membrana celular que contiene una gran cantidad de microfilamentos, lo que impide la presencia de orgánulos . Esta red está conectada con numerosos receptores que transmiten señales al exterior de la célula.
Una pila fusionada de imágenes confocales que muestran filamentos de actina dentro de una célula. La imagen ha sido codificada por colores en el eje z para mostrar en una imagen 2D en qué alturas se pueden encontrar los filamentos dentro de las células.
Anillos de actina periódicos : en los axones se encuentra una estructura periódica construida con anillos de actina espaciados uniformemente . [12] En esta estructura, los anillos de actina, junto con los tetrámeros de espectrina que unen los anillos de actina vecinos, forman un citoesqueleto cohesivo que sostiene la membrana del axón. La periodicidad de la estructura también puede regular los canales iónicos de sodio en los axones.
Levaduras
El citoesqueleto de actina es clave para los procesos de endocitosis , citocinesis , determinación de la polaridad celular y morfogénesis en levaduras . Además de depender de la actina, estos procesos involucran 20 o 30 proteínas asociadas, todas las cuales tienen un alto grado de conservación evolutiva, junto con muchas moléculas de señalización. Juntos, estos elementos permiten un ensamblaje modulado espacial y temporalmente que define la respuesta de una célula a estímulos tanto internos como externos. [13]
Las levaduras contienen tres elementos principales asociados con la actina: parches, cables y anillos. A pesar de no estar presentes por mucho tiempo, estas estructuras están sujetas a un equilibrio dinámico debido a la polimerización y despolimerización continua. Poseen una serie de proteínas accesorias que incluyen ADF/cofilina, que tiene un peso molecular de 16 kDa y está codificada por un único gen, llamado COF1 ; Aip1, un cofactor de cofilina que promueve el desmontaje de microfilamentos; Srv2/CAP, un regulador de procesos relacionado con las proteínas adenilato ciclasa ; una profilina con un peso molecular de aproximadamente 14 kDa que está relacionada/asociada con monómeros de actina; y twinfilin, una proteína de 40 kDa implicada en la organización de los parches. [13]
Plantas
Los estudios del genoma de las plantas han revelado la existencia de isovariantes de proteínas dentro de la familia de genes de la actina. Dentro de Arabidopsis thaliana , un organismo modelo , existen diez tipos de actina, seis profilinas y decenas de miosinas. Esta diversidad se explica por la necesidad evolutiva de poseer variantes que difieren ligeramente en su expresión temporal y espacial. [4] La mayoría de estas proteínas se expresaron conjuntamente en el tejido analizado. Las redes de actina se distribuyen por todo el citoplasma de las células que han sido cultivadas in vitro . Hay una concentración de la red alrededor del núcleo que está conectada mediante radios a la corteza celular, esta red es altamente dinámica, con una polimerización y despolimerización continua. [14]
Estructura del subdominio C-terminal de villin , una proteína capaz de dividir microfilamentos [15]
Si bien la mayoría de las células vegetales tienen una pared celular que define su morfología, sus microfilamentos pueden generar fuerza suficiente para lograr una serie de actividades celulares, como las corrientes citoplasmáticas generadas por los microfilamentos y la miosina. La actina también participa en el movimiento de orgánulos y en la morfogénesis celular, que implican la división celular , así como el alargamiento y diferenciación de la célula. [dieciséis]
Las proteínas más notables asociadas con el citoesqueleto de actina en las plantas incluyen: [16] villina , que pertenece a la misma familia que gelsolina /severina y es capaz de cortar microfilamentos y unirse a monómeros de actina en presencia de cationes de calcio; la fimbrina , que es capaz de reconocer y unir monómeros de actina y que interviene en la formación de redes (mediante un proceso de regulación diferente al de los animales y las levaduras); [17] forminas , que pueden actuar como agente nucleante de polimerización de actina F; la miosina , un motor molecular típico que es específico de los eucariotas y que en Arabidopsis thaliana está codificado por 17 genes en dos clases distintas; CHUP1, que puede unirse a actina y está implicado en la distribución espacial de los cloroplastos en la célula; KAM1/MUR3 que definen la morfología del aparato de Golgi así como la composición de xiloglucanos en la pared celular; NtWLIM1, que facilita la aparición de estructuras celulares de actina; y ERD10, que participa en la asociación de orgánulos dentro de membranas y microfilamentos y que parece desempeñar un papel involucrado en la reacción de un organismo al estrés .
actina nuclear
La actina nuclear fue descubierta y descrita por primera vez en 1977 por Clark y Merriam. [18] Los autores describen una proteína presente en la fracción nuclear, obtenida de ovocitos de Xenopus laevis , que muestra las mismas características que la actina del músculo esquelético. Desde entonces ha habido muchos informes científicos sobre la estructura y funciones de la actina en el núcleo (para una revisión ver: Hofmann 2009. [19] ) El nivel controlado de actina en el núcleo, su interacción con las proteínas de unión a actina (ABP) y la presencia de diferentes isoformas permite que la actina desempeñe un papel importante en muchos procesos nucleares importantes. [20]
Transporte a través de la membrana nuclear.
La secuencia de actina no contiene una señal de localización nuclear. El pequeño tamaño de la actina (alrededor de 43 kDa) le permite ingresar al núcleo por difusión pasiva. [21] La importación de actina al núcleo (probablemente en un complejo con cofilina) se ve facilitada por la proteína importada importina 9. [22]
Los niveles bajos de actina en el núcleo parecen ser importantes, porque la actina tiene dos señales de exportación nuclear (NES) en su secuencia. La actina microinyectada se elimina rápidamente del núcleo al citoplasma. La actina se exporta al menos de dos maneras, mediante la exportación 1 y la exportación 6 . [23] [24] Modificaciones específicas, como la SUMOilación, permiten la retención de actina nuclear. Una mutación que impide la SUMOilación provoca una rápida exportación de beta actina desde el núcleo. [25]
Organización
La actina nuclear existe principalmente como monómero, pero también puede formar oligómeros dinámicos y polímeros cortos. [26] [27] [28] La organización de la actina nuclear varía en diferentes tipos de células. Por ejemplo, en los ovocitos de Xenopus (con un nivel de actina nuclear más alto en comparación con las células somáticas), la actina forma filamentos que estabilizan la arquitectura del núcleo. Estos filamentos se pueden observar al microscopio gracias a la tinción con faloidina conjugada con fluoróforo. [18] [21]
Sin embargo, en los núcleos de células somáticas no se pueden observar filamentos de actina mediante esta técnica. [29] El ensayo de inhibición de la DNasa I, la única prueba que permite la cuantificación de la actina polimerizada directamente en muestras biológicas, ha revelado que la actina nuclear endógena se presenta principalmente en forma monomérica. [28]
Un nivel de actina exactamente controlado en el núcleo celular, más bajo que en el citoplasma, previene la formación de filamentos. La polimerización también se ve reducida por el acceso limitado a los monómeros de actina, que están unidos en complejos con ABP, principalmente cofilina. [30]
Isoformas de actina
En el núcleo celular están presentes diferentes isoformas de actina. El nivel de isoformas de actina puede cambiar en respuesta a la estimulación del crecimiento celular o la detención de la proliferación y la actividad transcripcional. [31] La investigación sobre la actina nuclear se centra en la isoforma beta. [32] [33] [34] [35] Sin embargo, el uso de anticuerpos dirigidos contra diferentes isoformas de actina permite identificar no solo la beta citoplasmática en el núcleo celular, sino también la actina alfa y gamma en ciertos tipos de células. [28] [36] [37] La presencia de diferentes isoformas de actina puede tener un efecto significativo en su función en los procesos nucleares, ya que el nivel de isoformas individuales se puede controlar de forma independiente. [28]
Funciones
Las funciones de la actina en el núcleo están asociadas con su capacidad para polimerizarse e interactuar con diversos ABP y con elementos estructurales del núcleo. La actina nuclear participa en:
Arquitectura del núcleo : la interacción de la actina con la espectrina alfa II y otras proteínas es importante para mantener la forma adecuada del núcleo. [38] [39]
Transcripción : la actina participa en la reorganización de la cromatina, [9] [32] [40] [41] el inicio de la transcripción y la interacción con el complejo de transcripción. [42] La actina participa en la regulación de la estructura de la cromatina, [43] [44] [45] interactuando con la ARN polimerasa I, [35] II [33] y III. [34] En la transcripción de Pol I, la actina y la miosina ( MYO1C , que se une al ADN) actúan como motor molecular . Para la transcripción de Pol II, se necesita β-actina para la formación del complejo de preiniciación. Pol III contiene β-actina como subunidad. La actina también puede ser un componente de los complejos de remodelación de la cromatina, así como de las partículas pre-mRNP (es decir, el ARN mensajero precursor agrupado en proteínas), y participa en la exportación nuclear de ARN y proteínas. [46]
Regulación de la actividad genética : la actina se une a las regiones reguladoras de diferentes tipos de genes. [47] [48] [49] [50] La capacidad de la actina para regular la actividad genética se utiliza en el método de reprogramación molecular, que permite que las células diferenciadas regresen a su estado embrionario. [49] [51]
Translocación del fragmento de cromosoma activado desde la región debajo de la membrana a la eucromatina donde comienza la transcripción. Este movimiento requiere la interacción de actina y miosina. [52] [53]
Integración de diferentes compartimentos celulares . La actina es una molécula que integra vías de transducción de señales citoplásmicas y nucleares. [54] Un ejemplo es la activación de la transcripción en respuesta a la estimulación sérica de las células in vitro . [55] [56] [57]
"Respuesta inmune : la actina nuclear se polimeriza tras la estimulación del receptor de células T y es necesaria para la expresión de citocinas y la producción de anticuerpos in vivo ". [58]
Debido a su capacidad para sufrir cambios conformacionales e interacción con muchas proteínas, la actina actúa como regulador de la formación y actividad de complejos proteicos como el complejo transcripcional. [42]
movimiento celular
La actina también participa en el movimiento celular. Una red de filamentos de actina marca el borde anterior de una célula en movimiento, y la polimerización de nuevos filamentos de actina empuja la membrana celular hacia adelante en protuberancias llamadas lamellipodios . [60] Estas protuberancias de la membrana luego se adhieren al sustrato, formando estructuras conocidas como adherencias focales que se conectan a la red de actina. [60] Una vez adherido, la parte posterior del cuerpo celular se contrae exprimiendo su contenido hacia adelante más allá del punto de adhesión. [60] Una vez que el punto de adhesión se ha movido hacia la parte trasera de la celda, la celda lo desmonta, permitiendo que la parte trasera de la celda avance. [60]
Estructura del sarcómero cardíaco con actina y miosina.
Movimiento actina/miosina
Además de la fuerza física generada por la polimerización de actina, los microfilamentos facilitan el movimiento de varios componentes intracelulares al servir como vía por la que viaja una familia de proteínas motoras llamadas miosinas . [61]
Contracción muscular
La estructura de un sarcómero , la unidad morfológica y funcional básica de los músculos esqueléticos que contiene actina.
La actina desempeña un papel particularmente destacado en las células musculares, que consisten en gran parte en haces repetidos de actina y miosina II . [62] Cada unidad repetida, llamada sarcómero , consta de dos conjuntos de hebras de actina F orientadas opuestamente ("filamentos delgados"), entrelazadas con haces de miosina ("filamentos gruesos"). Los dos conjuntos de hebras de actina están orientados con sus extremos ( +) incrustados en cada extremo del sarcómero en estructuras delimitadoras llamadas discos Z. [62] Las fibrillas de miosina se encuentran en el medio entre los conjuntos de filamentos de actina, con hebras orientadas en ambas direcciones. Cuando el músculo se contrae, los hilos de miosina se mueven a lo largo de los filamentos de actina hacia el extremo (+), juntando los extremos del sarcómero y acortándolo alrededor del 70% de su longitud. [62] Para moverse a lo largo del hilo de actina, la miosina debe hidrolizar el ATP; por tanto, el ATP sirve como fuente de energía para la contracción muscular. [62]
En momentos de reposo, las proteínas tropomiosina y troponina se unen a los filamentos de actina, impidiendo la unión de la miosina. [62] Cuando una señal de activación (es decir, un potencial de acción ) llega a la fibra muscular, desencadena la liberación de Ca 2+ desde el retículo sarcoplásmico hacia el citosol. El aumento resultante en el calcio citosólico libera rápidamente tropomiosina y troponina del hilo de actina, lo que permite que la miosina se una y comience la contracción muscular. [63]
División celular
En las etapas finales de la división celular , muchas células forman un anillo de actina en el punto medio de la célula. Este anillo, acertadamente llamado " anillo contráctil ", utiliza un mecanismo similar al de las fibras musculares donde la miosina II tira del anillo de actina, provocando que se contraiga. [64] Esta contracción escinde la célula madre en dos, completando la citocinesis . [64] El anillo contráctil está compuesto de actina, miosina, anilina y α-actinina . [65] En la levadura de fisión Schizosaccharomyces pombe , la actina se forma activamente en el anillo constrictor con la participación de Arp3 , la formina Cdc12, profilina y WASp , junto con microfilamentos preformados. Una vez construido el anillo, la estructura se mantiene mediante un continuo montaje y desmontaje que, ayudado por el complejo Arp2/3 y las forminas, es clave para uno de los procesos centrales de la citocinesis. [66]
Tráfico intracelular
Los pares actina-miosina también pueden participar en el tráfico de diversas vesículas de membrana y orgánulos dentro de la célula. La miosina V se activa uniéndose a varios receptores de carga en orgánulos y luego se mueve a lo largo de un filamento de actina hacia el extremo (+), arrastrando su carga consigo. [67]
Estas miosinas no convencionales utilizan la hidrólisis de ATP para transportar carga, como vesículas y orgánulos, de forma dirigida mucho más rápido que la difusión. La miosina V camina hacia el extremo púas de los filamentos de actina, mientras que la miosina VI camina hacia el extremo puntiagudo. La mayoría de los filamentos de actina están dispuestos con el extremo con púas hacia la membrana celular y el extremo puntiagudo hacia el interior celular. Esta disposición permite que la miosina V sea un motor eficaz para la exportación de cargas y que la miosina VI sea un motor eficaz para la importación.
Otros procesos biológicos
Imágenes de fluorescencia de la dinámica de la actina durante la primera división celular embrionaria de C. elegans . En primer lugar, los filamentos de actina se ensamblan en la parte superior de la célula, contribuyendo así a la división celular asimétrica . Luego, a los 10 s, se puede observar la formación del anillo de actina contráctil.
La imagen tradicional de la función de la actina la relaciona con el mantenimiento del citoesqueleto y, por tanto, con la organización y movimiento de los orgánulos, así como con la determinación de la forma de una célula. [11] Sin embargo, la actina tiene un papel más amplio en la fisiología de las células eucariotas, además de funciones similares en procariotas .
Apoptosis . Durante la muerte celular programada, la familia de proteasas ICE/ced-3 (una de las proteasas convertidoras de interleucina-1β) degrada la actina en dos fragmentos in vivo ; uno de los fragmentos es de 15 kDa y el otro de 31 kDa. Esto representa uno de los mecanismos implicados en la destrucción de la viabilidad celular que forma la base de la apoptosis. [68] También se ha demostrado que la proteasa calpaína está involucrada en este tipo de destrucción celular; [69] así como se ha demostrado que el uso de inhibidores de calpaína disminuye la proteólisis de actina y la degradación del ADN (otro de los elementos característicos de la apoptosis). [70] Por otro lado, el desencadenamiento de la apoptosis inducido por el estrés provoca la reorganización del citoesqueleto de actina (que también implica su polimerización), dando lugar a estructuras llamadas fibras de estrés ; esto es activado por la vía MAP quinasa . [71]
Diagrama de una zonula occludens o unión estrecha, estructura que une el epitelio de dos células. La actina es uno de los elementos de anclaje que se muestran en verde.
Adhesión y desarrollo celular . La adhesión entre células es una característica de los organismos multicelulares que permite la especialización de los tejidos y por tanto aumenta la complejidad celular. La adhesión de los epitelios celulares involucra al citoesqueleto de actina en cada una de las células unidas, así como a las cadherinas que actúan como elementos extracelulares y la conexión entre ambos está mediada por cateninas . [72] Interferir en la dinámica de la actina tiene repercusiones en el desarrollo de un organismo; de hecho, la actina es un elemento tan crucial que hay disponibles sistemas de genes redundantes. Por ejemplo, si en Dictyostelium se ha eliminado el gen de la α-actinina o del factor de gelificación , los individuos no muestran un fenotipo anómalo posiblemente debido a que cada una de las proteínas puede realizar la función de la otra. Sin embargo, se ve afectado el desarrollo de mutaciones dobles que carecen de ambos tipos de genes. [73]
Modulación de la expresión genética . "El estado de polimerización de la actina afecta el patrón de expresión genética ". En 1997, se descubrió que la despolimerización mediada por citocalasina D en células de Schwann provoca un patrón de expresión específico para los genes implicados en la mielinización de este tipo de células nerviosas . [74] Se ha demostrado que la actina F modifica el transcriptoma en algunas de las etapas de la vida de organismos unicelulares, como el hongo Candida albicans . [75] Además, las proteínas similares a la actina desempeñan un papel regulador durante la espermatogénesis en ratones [76] y, en las levaduras, se cree que las proteínas similares a la actina desempeñan un papel en la regulación de la expresión genética . [77] De hecho, la actina es capaz de actuar como iniciador de la transcripción cuando reacciona con un tipo de miosina nuclear que interactúa con las ARN polimerasas y otras enzimas involucradas en el proceso de transcripción. [9]
Dinámica de las estereocilias . Algunas células desarrollan finas excrecencias filiformes en su superficie que tienen una función mecanosensorial . Por ejemplo, este tipo de orgánulo está presente en el Órgano de Corti , que se encuentra situado en el oído . La principal característica de estas estructuras es que se puede modificar su longitud. [78] La arquitectura molecular de los estereocilios incluye un núcleo de actina paracristalina en equilibrio dinámico con los monómeros presentes en el citosol adyacente. Las miosinas de tipo VI y VIIa están presentes en todo este núcleo, mientras que la miosina XVa está presente en sus extremidades en cantidades proporcionales a la longitud de los estereocilios. [79]
Quiralidad intrínseca . Se ha implicado a las redes de actomiosina en la generación de una quiralidad intrínseca en células individuales. [80] Las células que crecen en superficies quirales pueden mostrar un sesgo direccional izquierda/derecha que depende de la actomiosina. [81] [82]
Estructura
Diagrama de cinta de un monómero de actina del músculo esquelético de conejo, con la superficie de la molécula mostrada semitransparente. Se anotan los cuatro subdominios, así como el ATP unido y el ion calcio.
La actina monomérica, o actina G, tiene una estructura globular que consta de dos lóbulos separados por una hendidura profunda. [83] La parte inferior de la hendidura representa el "pliegue de ATPasa", una estructura conservada entre las proteínas de unión a ATP y GTP que se une a un ion magnesio y una molécula de ATP. [83] Se requiere la unión de ATP o ADP para estabilizar cada monómero de actina; Sin una de estas moléculas unida, la actina se desnaturaliza rápidamente . [83]
Elzinga y sus colaboradores determinaron por primera vez la secuencia peptídica completa para este tipo de actina en 1973, y un trabajo posterior del mismo autor añadió más detalles al modelo. Contiene 374 residuos de aminoácidos . Su extremo N es muy ácido y comienza con un aspartato acetilado en su grupo amino. Mientras que su extremo C-terminal es alcalino y está formado por una fenilalanina precedida por una cisteína , que tiene cierto grado de importancia funcional. Ambos extremos están muy próximos dentro del subdominio I. Una N τ -metilhistidina anómala se encuentra en la posición 73. [85]
La convención normal en estudios topológicos significa que una proteína se muestra con el dominio más grande en el lado izquierdo y el dominio más pequeño en el lado derecho. En esta posición, el dominio más pequeño se divide a su vez en dos: el subdominio I (posición inferior, residuos 1 a 32, 70 a 144 y 338 a 374) y el subdominio II (posición superior, residuos 33 a 69). El dominio más grande también se divide en dos: subdominio III (inferior, residuos 145–180 y 270–337) y subdominio IV (superior, residuos 181–269). Las áreas expuestas de los subdominios I y III se denominan extremos "con púas", mientras que las áreas expuestas de los dominios II y IV se denominan extremos "puntiagudos". Esta nomenclatura hace referencia a que, debido a la pequeña masa del subdominio II, la actina es polar; La importancia de esto se discutirá más adelante en la discusión sobre la dinámica de la asamblea. Algunos autores denominan a los subdominios Ia, Ib, IIa y IIb, respectivamente. [86]
Otras estructuras importantes
La estructura supersecundaria más notable es una hoja beta de cinco cadenas que se compone de un meandro β y una unidad β-α-β en el sentido de las agujas del reloj. Está presente en ambos dominios, lo que sugiere que la proteína surgió de la duplicación de genes. [87]
El sitio de unión del nucleótido de adenosina se encuentra entre dos estructuras beta en forma de horquilla que pertenecen a los dominios I y III. Los residuos implicados son Asp11-Lys18 y Asp154-His161 respectivamente.
El sitio de unión del catión divalente se encuentra justo debajo del del nucleótido de adenosina. In vivo está formado con mayor frecuencia por Mg 2+ o Ca 2+ , mientras que in vitro está formado por una estructura quelante formada por Lys18 y dos oxígenos de los fosfatos α y β del nucleótido . Este calcio está coordinado con seis moléculas de agua que son retenidas por los aminoácidos Asp11 , Asp154 y Gln137 . Forman un complejo con el nucleótido que restringe los movimientos de la llamada región "bisagra", situada entre los residuos 137 y 144. Esta mantiene la forma nativa de la proteína hasta que su retirada desnaturaliza el monómero de actina. Esta región también es importante porque determina si la hendidura de la proteína está en la conformación "abierta" o "cerrada". [1] [86]
Es muy probable que existan al menos otros tres centros con menor afinidad (intermedia) y otros con baja afinidad por cationes divalentes. Se ha sugerido que estos centros pueden desempeñar un papel en la polimerización de actina actuando durante la etapa de activación. [86]
Hay una estructura en el subdominio 2 que se llama "bucle D" porque se une con la ADNasa I , está ubicada entre los residuos His40 y Gly48 . Tiene la apariencia de un elemento desordenado en la mayoría de los cristales, pero parece una lámina β cuando forma un complejo con la ADNasa I. Se ha propuesto que el evento clave en la polimerización es probablemente la propagación de un cambio conformacional desde el centro del enlace con el nucleótido a este dominio, que cambia de bucle a espiral. [1] Sin embargo, esta hipótesis ha sido refutada por otros estudios. [88]
actina F
actina F; representación superficial de una repetición de 13 subunidades basada en el modelo de filamento de actina de Ken Holmes [89]
En diversas condiciones, las moléculas de actina G se polimerizan en hilos más largos llamados "filamentosos" o "actina F". Estos hilos de actina F suelen estar compuestos por dos hebras helicoidales de actina enrolladas entre sí, formando una hélice de 7 a 9 nanómetros de ancho que se repite cada 72 nanómetros (o cada 14 subunidades de actina G). [90] En los hilos de actina F, las moléculas de actina G están todas orientadas en la misma dirección. Los dos extremos del hilo de actina F son distintos entre sí. En un extremo, denominado extremo (-), la hendidura de unión de ATP de la molécula de actina terminal mira hacia afuera. En el extremo opuesto, designado (+), la hendidura de unión de ATP está enterrada en el filamento, en contacto con la molécula de actina vecina. [90] A medida que crecen los hilos de actina F, nuevas moléculas tienden a unirse en el extremo (+) de una cadena de actina F existente. Por el contrario, los hilos tienden a encogerse al desprenderse monómeros de actina del extremo (-) de la hebra. [90]
Algunas proteínas, como la cofilina , parecen aumentar el ángulo de giro, pero nuevamente esto podría interpretarse como el establecimiento de diferentes estados estructurales. Estos podrían ser importantes en el proceso de polimerización. [91]
Hay menos acuerdo en cuanto a las mediciones del radio de giro y el espesor del filamento: mientras que los primeros modelos asignaban una longitud de 25 Å, los datos actuales de difracción de rayos X, respaldados por microscopía crioelectrónica, sugieren una longitud de 23,7 Å. Estos estudios han demostrado los puntos de contacto precisos entre los monómeros. Algunos se forman con unidades de la misma cadena, entre el extremo "púas" de un monómero y el extremo "puntiagudo" del siguiente. Mientras que los monómeros de las cadenas adyacentes hacen contacto lateral a través de proyecciones del subdominio IV, siendo las proyecciones más importantes las formadas por el extremo C y el enlace hidrófobo formado por tres cuerpos que involucran los residuos 39–42, 201–203 y 286. El modelo sugiere que un filamento está formado por monómeros en una formación de "lámina", en la que los subdominios giran sobre sí mismos; esta forma también se encuentra en el homólogo de actina bacteriana MreB . [92]
Los términos "puntiagudo" y "púas" que se refieren a los dos extremos de los microfilamentos derivan de su apariencia bajo microscopía electrónica de transmisión cuando las muestras se examinan siguiendo una técnica de preparación llamada "decoración". Este método consiste en la adición de fragmentos de miosina S1 a tejido que ha sido fijado con ácido tánico . Esta miosina forma enlaces polares con monómeros de actina, dando lugar a una configuración que parece flechas con plumas a lo largo de su eje, donde el eje es la actina y las plumas son la miosina. Siguiendo esta lógica, el extremo del microfilamento que no tiene ninguna miosina sobresaliente se llama punta de flecha (extremo -) y el otro extremo se llama extremo de púas (extremo +). [93]
Un fragmento S1 está compuesto por los dominios de cabeza y cuello de la miosina II . En condiciones fisiológicas, la actina G (la forma monomérica ) se transforma en actina F (la forma polimérica ) mediante el ATP, donde el papel del ATP es esencial. [94]
El filamento helicoidal de actina F que se encuentra en los músculos también contiene una molécula de tropomiosina , que es una proteína de 40 nanómetros de largo que se envuelve alrededor de la hélice de actina F. [95] Durante la fase de reposo, la tropomiosina cubre los sitios activos de la actina para que la interacción actina-miosina no pueda tener lugar y producir contracción muscular. Existen otras moléculas proteicas unidas al hilo de tropomiosina, estas son las troponinas que tienen tres polímeros: troponina I , troponina T y troponina C. [96]
La actina F es a la vez fuerte y dinámica. A diferencia de otros polímeros , como el ADN , cuyos elementos constituyentes están unidos entre sí mediante enlaces covalentes , los monómeros de los filamentos de actina se ensamblan mediante enlaces más débiles. [97] Los enlaces laterales con monómeros vecinos resuelven esta anomalía, que en teoría debería debilitar la estructura, ya que pueden romperse mediante agitación térmica. Además, los enlaces débiles ofrecen la ventaja de que los extremos de los filamentos pueden liberar o incorporar monómeros fácilmente. Esto significa que los filamentos pueden remodelarse rápidamente y cambiar la estructura celular en respuesta a un estímulo ambiental. Lo cual, junto con el mecanismo bioquímico por el cual se produce, se conoce como "dinámica de ensamblaje". [6]
La actina puede adquirir espontáneamente gran parte de su estructura terciaria . [99] Sin embargo, la forma en que adquiere su forma completamente funcional a partir de su forma nativa recién sintetizada es especial y casi única en la química de las proteínas. El motivo de esta ruta especial podría ser la necesidad de evitar la presencia de monómeros de actina mal plegados, que podrían ser tóxicos ya que pueden actuar como terminadores de polimerización ineficaces. Sin embargo, es clave para establecer la estabilidad del citoesqueleto y, además, es un proceso esencial para coordinar el ciclo celular . [100] [101]
Se requiere CCT para garantizar que el plegado se realice correctamente. CCT es una chaperonina del grupo II, un gran complejo proteico que ayuda en el plegamiento de otras proteínas. CCT está formado por un doble anillo de ocho subunidades diferentes (hetero-octamérica) y se diferencia de las chaperoninas del grupo I como GroEL , que se encuentra en Eubacterias y en orgánulos eucariotas, ya que no requiere una co-chaperona para actuar como tapa. sobre la cavidad catalítica central . Los sustratos se unen a CCT a través de dominios específicos. Inicialmente se pensó que sólo se unía a actina y tubulina , aunque estudios recientes de inmunoprecipitación han demostrado que interactúa con un gran número de polipéptidos , que posiblemente funcionen como sustratos . Actúa a través de cambios conformacionales dependientes de ATP que en ocasiones requieren varias rondas de liberación y catálisis para completar una reacción. [102]
Para completar con éxito su plegamiento, tanto la actina como la tubulina necesitan interactuar con otra proteína llamada prefoldina , que es un complejo heterohexámero (formado por seis subunidades distintas), en una interacción tan específica que las moléculas han coevolucionado [ cita necesaria ] . La actina forma complejos con la prefoldina mientras aún se está formando, cuando tiene aproximadamente 145 aminoácidos de longitud, específicamente los del N-terminal. [103]
Se utilizan diferentes subunidades de reconocimiento para actina o tubulina, aunque existe cierta superposición. En la actina, las subunidades que se unen a la prefoldina son probablemente PFD3 y PFD4, que se unen en dos lugares, uno entre los residuos 60 a 79 y el otro entre los residuos 170 a 198. La actina es reconocida, cargada y entregada a la chaperonina citosólica (CCT) en una conformación abierta por el extremo interno de los "tentáculos" de la prefoldina (ver imagen y nota). [99] El contacto cuando se entrega actina es tan breve que no se forma un complejo terciario, liberando inmediatamente la prefoldina. [98]
Modelo de cinta del dominio γ apical de la chaperonina CCT
Luego, el CCT provoca el plegamiento secuencial de la actina formando enlaces con sus subunidades en lugar de simplemente encerrarla en su cavidad. [104] Esta es la razón por la que posee áreas de reconocimiento específicas en su dominio β apical. La primera etapa del plegamiento consiste en el reconocimiento de los residuos 245-249. A continuación, otros determinantes establecen contacto. [105] Tanto la actina como la tubulina se unen a CCT en conformaciones abiertas en ausencia de ATP. En el caso de la actina, se unen dos subunidades durante cada cambio conformacional, mientras que en el caso de la tubulina la unión se realiza con cuatro subunidades. La actina tiene secuencias de unión específicas que interactúan con las subunidades δ y β-CCT o con δ-CCT y ε-CCT. Después de que AMP-PNP se une a CCT, los sustratos se mueven dentro de la cavidad de la chaperonina. También parece que en el caso de la actina, la proteína CAP es necesaria como posible cofactor en los estados finales de plegamiento de la actina. [101]
Aún no se comprende del todo la forma exacta en que se regula este proceso, pero se sabe que la proteína PhLP3 (una proteína similar a la fosducina ) inhibe su actividad mediante la formación de un complejo terciario. [102]
Mecanismo catalítico de la ATPasa
La actina es una ATPasa , lo que significa que es una enzima que hidroliza el ATP. Este grupo de enzimas se caracteriza por sus lentas velocidades de reacción. Se sabe que esta ATPasa es "activa", es decir, su velocidad aumenta unas 40.000 veces cuando la actina forma parte de un filamento. [91] Un valor de referencia para esta velocidad de hidrólisis en condiciones ideales es de alrededor de 0,3 s −1 . Luego, el Pi permanece unido a la actina junto al ADP durante mucho tiempo, hasta que se libera cooperativamente del interior del filamento. [106] [107]
Los detalles moleculares exactos del mecanismo catalítico aún no se comprenden del todo. Aunque hay mucho debate sobre este tema, parece seguro que se requiere una conformación "cerrada" para la hidrólisis del ATP, y se piensa que los residuos que intervienen en el proceso se desplazan a la distancia adecuada. [91] El ácido glutámico Glu137 es uno de los residuos clave, que se ubica en el subdominio 1. Su función es unir la molécula de agua que produce un ataque nucleofílico al enlace γ-fosfato del ATP , mientras que el nucleótido está fuertemente unido a los subdominios. 3 y 4. La lentitud del proceso catalítico se debe a la gran distancia y posición sesgada de la molécula de agua en relación con el reactivo. Es muy probable que el cambio conformacional producido por la rotación de los dominios entre las formas G y F de actina acerque el Glu137 permitiendo su hidrólisis. Este modelo sugiere que la polimerización y la función de la ATPasa se desacoplarían inmediatamente. [92] [95] La transformación "abierta" a "cerrada" entre las formas G y F y sus implicaciones en el movimiento relativo de varios residuos clave y la formación de hilos de agua se han caracterizado en dinámica molecular y simulaciones QM/MM . [108] [109]
Dinámica de montaje
Formación de microfilamentos que muestra el mecanismo de polimerización para convertir actina G en actina F; Obsérvese la hidrólisis del ATP.
Los filamentos de actina a menudo se ensamblan y desarman rápidamente, lo que les permite generar fuerza y apoyar el movimiento celular. [110] El montaje clásicamente se produce en tres pasos. Primero, la "fase de nucleación", en la que dos o tres moléculas de actina G se unen lentamente para formar un pequeño oligómero que nucleará un mayor crecimiento. En segundo lugar, la "fase de alargamiento", cuando el filamento de actina crece rápidamente mediante la adición de muchas moléculas de actina en ambos extremos. A medida que el filamento crece, las moléculas de actina se añaden al extremo (+) del filamento aproximadamente 10 veces más rápido que al extremo (-), por lo que los filamentos tienden a crecer principalmente en el extremo (+). [111] En tercer lugar, la "fase de estado estacionario", donde se alcanza un equilibrio cuando las moléculas de actina se unen y abandonan el filamento a la misma velocidad, manteniendo la longitud del filamento. [110] Si bien la longitud del filamento permanece constante en la fase de estado estacionario, constantemente se agregan nuevas moléculas al extremo (+) y se caen del extremo (-), un fenómeno llamado "caminata", ya que aparecería una molécula de actina determinada. para moverse a lo largo de la hebra. [112] De forma aislada, si un filamento crecerá o se encogerá, y con qué rapidez, están determinados por la concentración de actina G alrededor del filamento; [111] sin embargo, en las células, la dinámica de los filamentos de actina está fuertemente influenciada por varias proteínas de unión a actina .
Proteínas de unión a actina
El citoesqueleto de actina in vivo no está compuesto exclusivamente de actina, se requieren otras proteínas para su formación, continuidad y función. Estas proteínas se denominan proteínas de unión a actina y participan en la polimerización, despolimerización, estabilidad y organización de la actina. [113] La diversidad de estas proteínas es tal que se cree que la actina es la proteína que participa en el mayor número de interacciones proteína-proteína . [114]
Estructura atómica de Arp2/3. [115] Cada color corresponde a una subunidad: Arp3, naranja; Arp2, azul mar (las subunidades 1 y 2 no se muestran); p40, verde; p34, azul claro; p20, azul oscuro; p21, magenta; p16, amarillo.
La nucleación de nuevos filamentos de actina (el paso limitante de la velocidad de polimerización de actina) se ve favorecida por proteínas nucleadoras de actina como las forminas (como la formina-2 ) y el complejo Arp2/3 . [116] Las forminas ayudan a nuclear largos filamentos de actina. Se unen a dos moléculas de actina-ATP libres, uniéndolas. Luego, a medida que el filamento comienza a crecer, la formina se mueve a lo largo del extremo (+) del filamento en crecimiento, mientras recluta proteínas de unión a actina que promueven el crecimiento del filamento y excluye proteínas de protección que bloquearían la extensión del filamento. [116] Las ramas de los filamentos de actina suelen ser nucleadas por el complejo Arp2/3 junto con factores promotores de la nucleación. Los factores promotores de la nucleación se unen a dos moléculas de actina G libres y luego reclutan y activan el complejo Arp2/3. El complejo Arp2/3 activado se adhiere a un filamento de actina existente y utiliza las dos moléculas de actina G unidas para nuclear un nuevo filamento de actina que se ramifica del anterior en un ángulo de 70°. [117]
Un complejo de actina (verde) - profilina (azul). [118] La profilina mostrada pertenece al grupo II, normalmente presente en los riñones y el cerebro .
A medida que crecen los filamentos, el conjunto de moléculas de actina G disponibles es gestionado por proteínas de unión a actina G, como la profilina y la timosina β-4 . Profilin asegura un suministro de actina-ATP disponible uniéndose a la actina G unida a ADP y promoviendo el intercambio de ADP por ATP. La unión de la profilina a la molécula de actina bloquea físicamente su adición al extremo (-) de un filamento, pero le permite unirse al extremo (+). Una vez que la actina-ATP se ha unido al filamento, la profilina lo libera. [112] A medida que las forminas promueven la nucleación y extensión de nuevos filamentos de actina, reclutan profilina en el área, aumentando la concentración local de actina-ATP para impulsar el crecimiento de los filamentos. [116] Por el contrario, la timosina β-4 se une y secuestra la actina-ATP, impidiendo que se una a un microfilamento. [119]
Una vez que se establece una fibra de actina, la dinámica de su crecimiento o colapso está influenciada por numerosas proteínas. Las hebras existentes pueden ser interrumpidas por proteínas que escinden los filamentos, como la cofilina y la gelsolina . La cofilina se une a dos moléculas de actina-ADP en un filamento, forzando un movimiento que desestabiliza el filamento y hace que se rompa. [120] La gelsolina se inserta entre las moléculas de actina en un filamento, rompiendo el filamento. Después de que el filamento se rompe, la gelsolina queda adherida al nuevo extremo (+), impidiendo que crezca, obligando así a su desmontaje. [119]
La proteína gelsolina , que es un regulador clave en el montaje y desmontaje de la actina.
Otras proteínas se unen a los extremos de los filamentos de actina, estabilizándolos. Estas se denominan "proteínas de protección" e incluyen CapZ y tropomodulina . CapZ se une al extremo (+) de un filamento, evitando una mayor adición o pérdida de actina desde ese extremo. [119] La tropomodulina se une al extremo (-) de un filamento, evitando nuevamente la adición o pérdida de moléculas en ese extremo. La tropomodulina se encuentra típicamente en células que requieren filamentos de actina extremadamente estables, como los de los músculos y los glóbulos rojos. [119]
Estas proteínas de unión a actina suelen estar reguladas por diversas señales celulares para controlar la dinámica de ensamblaje de actina en diferentes ubicaciones celulares. Las forminas, por ejemplo, normalmente se pliegan en una conformación inactiva hasta que se activan mediante la unión de la pequeña GTPasa Rho . [116] La ramificación de actina en la membrana celular es importante para el movimiento celular, por lo que el lípido PIP 2 de la membrana plasmática activa el factor promotor de la nucleación WASp e inhibe CapZ. [121] WASp también es activado por la pequeña GTPasa Cdc42 , mientras que otro factor promotor de la nucleación WAVE es activado por la GTPasa Rac1 . [122]
Genética
Las principales interacciones de las proteínas estructurales se producen en la unión adherente basada en cadherina . Los filamentos de actina están unidos a la α- actinina y a la membrana a través de vinculina . El dominio principal de la vinculina se asocia a la E-cadherina a través de α-catenina , β-catenina y γ-catenina . El dominio de cola de la vinculina se une a los lípidos de la membrana y a los filamentos de actina.
Aunque la mayoría de las levaduras tienen un solo gen de actina, los eucariotas superiores , en general, expresan varias isoformas de actina codificadas por una familia de genes relacionados. Los mamíferos tienen al menos seis isoformas de actina codificadas por genes separados, [123] que se dividen en tres clases (alfa, beta y gamma) según sus puntos isoeléctricos . En general, las actinas alfa se encuentran en el músculo ( α-esquelético , α-aórtico liso , α-cardíaco ), mientras que las isoformas beta y gamma son prominentes en células no musculares ( β-citoplasmáticas , γ1-citoplasmáticas , γ2-entéricas lisas ) . . Aunque las secuencias de aminoácidos y las propiedades in vitro de las isoformas son muy similares, estas isoformas no pueden sustituirse completamente entre sí in vivo . [124] Las plantas contienen más de 60 genes y pseudogenes de actina . [83]
El gen de actina típico tiene una 5' UTR de aproximadamente 100 nucleótidos , una región traducida de 1200 nucleótidos y una 3' UTR de 200 nucleótidos . La mayoría de los genes de actina están interrumpidos por intrones , con hasta seis intrones en cualquiera de las 19 ubicaciones bien caracterizadas. La alta conservación de la familia hace que la actina sea el modelo preferido para estudios que comparan los modelos de evolución de intrones tempranos e intrones tardíos.
Evolución
La actina y proteínas estrechamente relacionadas están presentes en todos los organismos, lo que sugiere que el ancestro común de toda la vida en la Tierra tenía actina. [125] La actina es una de las proteínas más conservadas a lo largo de la evolución de los eucariotas. Las secuencias de las proteínas actina de animales y amebas son idénticas en un 80% a pesar de estar separadas por aproximadamente mil millones de años de evolución. [83] Muchos eucariotas unicelulares tienen un solo gen de actina, mientras que los eucariotas multicelulares a menudo tienen varios genes estrechamente relacionados que cumplen funciones especializadas. Los humanos tenemos seis; las plantas tienen 10 o más. [125] Además de la actina, los eucariotas tienen una gran familia de proteínas relacionadas con la actina, o "Arps", que comparten un ancestro común con la actina y se denominan Arp1-Arp11, siendo Arp1 la más estrechamente relacionada con la actina y Arp11 la más cercana. el menos. [125]
"Las bacterias codifican tres tipos de actina: MreB influye en la forma celular, la división celular FtsA y la separación ParM de plásmidos grandes ". [125] Algunas arqueas tienen un gen MreB similar a una bacteria, mientras que otras tienen un gen de actina que se parece más a la actina eucariota. [125]
El citoesqueleto eucariota de organismos de todos los grupos taxonómicos tiene componentes similares a la actina y la tubulina. Por ejemplo, la proteína que codifica el gen ACTG2 en humanos es completamente equivalente a los homólogos presentes en ratas y ratones, aunque a nivel de nucleótidos la similitud disminuye al 92%. [126] Sin embargo, existen diferencias importantes con los equivalentes en procariotas ( FtsZ y MreB ), donde la similitud entre las secuencias de nucleótidos está entre el 40 y el 50% entre diferentes bacterias y especies de arqueas . Algunos autores sugieren que la proteína ancestral que dio origen al modelo de actina eucariota se asemeja a las proteínas presentes en los citoesqueletos bacterianos modernos. [4] [127]
Estructura de MreB , una proteína bacteriana cuya estructura tridimensional se asemeja a la de la actina G
Algunos autores señalan que el comportamiento de la actina, la tubulina y la histona , proteína implicada en la estabilización y regulación del ADN, son similares en su capacidad para unirse a nucleótidos y en su capacidad de aprovechar el movimiento browniano . También se ha sugerido que todos ellos tienen un ancestro común. [128] Por lo tanto, los procesos evolutivos resultaron en la diversificación de proteínas ancestrales en las variedades presentes hoy, conservando, entre otras, las actinas como moléculas eficientes que fueron capaces de abordar procesos biológicos ancestrales esenciales, como la endocitosis . [129]
El citoesqueleto bacteriano contiene proteínas que son muy similares a los monómeros y polímeros de actina. La proteína bacteriana MreB se polimeriza en finos filamentos no helicoidales y ocasionalmente en estructuras helicoidales similares a la actina F. [92] [131] Además, su estructura cristalina es muy similar a la de la actina G (en términos de su conformación tridimensional), incluso existen similitudes entre los protofilamentos MreB y la actina F. El citoesqueleto bacteriano también contiene las proteínas FtsZ , que son similares a la tubulina . [132]
Por tanto, las bacterias poseen un citoesqueleto con elementos homólogos a la actina (por ejemplo, MreB, AlfA, ParM , FtsA y MamK), aunque la secuencia de aminoácidos de estas proteínas difiere de la presente en las células animales. Sin embargo, estas proteínas tienen un alto grado de similitud estructural con la actina eucariota. Los microfilamentos altamente dinámicos formados por la agregación de MreB y ParM son esenciales para la viabilidad celular y participan en la morfogénesis celular, la segregación cromosómica y la polaridad celular. ParM es un homólogo de actina que está codificado en un plásmido y participa en la regulación del ADN plasmídico. [4] [133] Los ParM de diferentes plásmidos bacterianos pueden formar estructuras helicoidales sorprendentemente diversas que comprenden dos [134] [135] o cuatro [136] cadenas para mantener la herencia plasmídica fiel.
En arqueas, el homólogo Ta0583 es aún más similar a las actinas eucariotas. [137]
ACTA1 es el gen que codifica la isoforma α de actina predominante en los músculos estriados esqueléticos humanos , aunque también se expresa en el músculo cardíaco y en la glándula tiroides . [138] Su secuencia de ADN consta de siete exones que producen cinco transcripciones conocidas . [139] La mayoría de ellos consisten en mutaciones puntuales que provocan la sustitución de aminoácidos . En muchos casos, las mutaciones están asociadas con un fenotipo que determina la gravedad y el curso de la enfermedad. [86] [139]
La mutación altera la estructura y función de los músculos esqueléticos produciendo una de tres formas de miopatía : miopatía nemalínica tipo 3 , miopatía congénita con exceso de miofilamentos finos (CM) y miopatía congénita con desproporción del tipo de fibras (CMFTD). También se han encontrado mutaciones que producen miopatías centrales . [141] Aunque sus fenotipos son similares, además de la miopatía nemalínica típica, algunos especialistas distinguen otro tipo de miopatía llamada miopatía nemalínica actínica. En el primero, en lugar de los típicos bastones, se forman grumos de actina. Es importante señalar que un paciente puede presentar más de uno de estos fenotipos en una biopsia . [142] Los síntomas más comunes consisten en una morfología facial típica ( facies miopática ), debilidad muscular, retraso en el desarrollo motor y dificultades respiratorias. El curso de la enfermedad, su gravedad y la edad en la que aparece son variables y también se encuentran formas superpuestas de miopatía. Un síntoma de la miopatía nemalínica es que aparecen "bastones de nemalínica" en diferentes lugares de las fibras musculares tipo 1. Estos bastones son estructuras no patognomónicas que tienen una composición similar a los discos Z que se encuentran en el sarcómero . [143]
La patogénesis de esta miopatía es muy variada. Muchas mutaciones ocurren en la región de la indentación de la actina cerca de sus sitios de unión de nucleótidos , mientras que otras ocurren en el Dominio 2, o en las áreas donde se produce la interacción con las proteínas asociadas. Esto explica en parte la gran variedad de agregados que se forman en estos casos, como los Cuerpos Nemalinos o Intranucleares o Cuerpos de Cebra. [86] En la miopatía nemalínica se producen cambios en el plegamiento de la actina , así como cambios en su agregación y también hay cambios en la expresión de otras proteínas asociadas. En algunas variantes donde se encuentran cuerpos intranucleares, los cambios en el plegamiento enmascaran la señal de exportación de proteínas del núcleo , de modo que se produce la acumulación de la forma mutada de actina en el núcleo celular . [144] Por otro lado, parece que las mutaciones en ACTA1 que dan lugar a una CFTDM tienen un mayor efecto sobre la función sarcomérica que sobre su estructura. [145] Investigaciones recientes han tratado de comprender esta aparente paradoja, que sugiere que no existe una correlación clara entre el número de bastones y la debilidad muscular. Parece que algunas mutaciones son capaces de inducir una mayor tasa de apoptosis en las fibras musculares tipo II. [100]
Posición de siete mutaciones relevantes para las diversas actinopatías relacionadas con ACTA1 [140]
ACTG2 codifica la isoforma de actina más grande, que tiene nueve exones , uno de los cuales, el situado en el extremo 5', no está traducido . [126] Es una γ-actina que se expresa en el músculo liso entérico. No se han encontrado mutaciones en este gen que correspondan a patologías, aunque microarrays han demostrado que esta proteína se expresa con mayor frecuencia en los casos resistentes a la quimioterapia con cisplatino . [146]
ACTA2 codifica una α-actina ubicada en el músculo liso y también en el músculo liso vascular. Se ha observado que la mutación MYH11 podría ser responsable de al menos el 14% de los aneurismas hereditarios de la aorta torácica, particularmente el tipo 6. Esto se debe a que la variante mutada produce un ensamblaje filamentoso incorrecto y una capacidad reducida de contracción del músculo liso vascular. En estos individuos se ha registradodegradación de la media aórtica , con áreas de desorganización e hiperplasia , así como estenosis de los vasa vasorum de la aorta. [147] El número de enfermedades en las que está implicado el gen está aumentando. Se ha relacionado con la enfermedad de Moyamoya y parece probable que determinadas mutaciones en heterocigosis puedan conferir predisposición a muchas patologías vasculares, como el aneurisma de la aorta torácica y la cardiopatía isquémica . [148] La α-actina que se encuentra en los músculos lisos también es un marcador interesante para evaluar el progreso de la cirrosis hepática . [149]
en el musculo cardiaco
El gen ACTC1 codifica la isoforma α-actina presente en el músculo cardíaco. Hamada y sus colaboradores lo secuenciaron por primera vez en 1982, cuando descubrieron que estaba interrumpido por cinco intrones. [150] Fue el primero de los seis genes donde se encontraron alelos implicados en procesos patológicos. [151]
Se han estudiado dos casos de miocardiopatía dilatada que implican una sustitución de aminoácidos altamente conservados pertenecientes a los dominios proteicos que se unen y se intercalan con los discos Z. Esto ha llevado a la teoría de que la dilatación se produce por un defecto en la transmisión de la fuerza contráctil en los miocitos . [155] [151]
Las mutaciones en ACTC1 son responsables de al menos el 5% de las miocardiopatías hipertróficas. [156] También se ha encontrado la existencia de una serie de mutaciones puntuales: [157]
Mutación E101K: cambios de carga neta y formación de un enlace electrostático débil en el sitio de unión de actomiosina.
P166A: zona de interacción entre monómeros de actina.
A333P: zona de interacción actina-miosina.
La patogénesis parece implicar un mecanismo compensatorio: las proteínas mutadas actúan como toxinas con un efecto dominante, disminuyendo la capacidad de contracción del corazón provocando un comportamiento mecánico anormal, de modo que la hipertrofia, que suele ser tardía, es consecuencia de la respuesta normal del músculo cardíaco al estrés. . [158]
ACTB es un locus muy complejo. Existen una serie de pseudogenes que se distribuyen por todo el genoma , y su secuencia contiene seis exones que pueden dar lugar a hasta 21 transcripciones diferentes mediante splicing alternativo , que se conocen como β-actinas. Coherente con esta complejidad, sus productos también se encuentran en numerosas localizaciones y forman parte de una amplia variedad de procesos ( citoesqueleto , complejo NuA4 histona -aciltransferasa, núcleo celular ) y además están asociados a los mecanismos de un gran número de de procesos patológicos ( carcinomas , distonías juveniles, mecanismos de infección, malformaciones del sistema nervioso e invasión tumoral, entre otros). [161] Se ha descubierto una nueva forma de actina, la actina kappa, que parece sustituir a la actina β en procesos relacionados con tumores . [162]
Imagen tomada mediante microscopía confocal y empleando anticuerpos específicos que muestran la red cortical de actina. De la misma forma que en la distonía juvenil se produce una interrupción en las estructuras del citoesqueleto , en este caso es producida por la citocalasina D. [163]
Hasta el momento se han descubierto tres procesos patológicos causados por una alteración directa en la secuencia genética:
También se ha descubierto una mutación puntual dominante que causa disfunción de los granulocitos de los neutrófilos e infecciones recurrentes . Parece que la mutación modifica el dominio responsable de la unión entre la profilina y otras proteínas reguladoras. La afinidad de la actina por la profilina se reduce considerablemente en este alelo. [166]
El locus ACTG1 codifica la proteína citosólica γ-actina que es responsable de la formación de microfilamentos citoesqueléticos . Contiene seis exones , que dan lugar a 22 ARNm diferentes, que producen cuatro isoformas completas cuya forma de expresión probablemente depende del tipo de tejido en el que se encuentran. También tiene dos promotores de ADN diferentes . [167] Se ha observado que las secuencias traducidas de este locus y del de β-actina son muy similares a las predichas, lo que sugiere una secuencia ancestral común que sufrió duplicación y conversión genética. [168]
En términos de patología, se ha asociado a procesos como amiloidosis , retinitis pigmentosa , mecanismos de infección, enfermedades renales y diversos tipos de hipoacusia congénita. [167]
Se ha descubierto que seis mutaciones puntuales autosómicas dominantes en la secuencia causan varios tipos de pérdida auditiva, particularmente pérdida auditiva neurosensorial relacionada con el locus DFNA 20/26. Parece que afectan a los estereocilios de las células ciliadas presentes en el órgano de Corti del oído interno . La β-actina es la proteína más abundante que se encuentra en el tejido humano, pero no es muy abundante en las células ciliadas, lo que explica la localización de la patología. Por otro lado, parece que la mayoría de estas mutaciones afectan a las zonas implicadas en la unión con otras proteínas, particularmente con la actomiosina. [86] Algunos experimentos han sugerido que el mecanismo patológico de este tipo de pérdida auditiva se relaciona con que la actina F en las mutaciones sea más sensible a la cofilina de lo normal. [169]
Sin embargo, aunque no hay registro de ningún caso, se sabe que la γ-actina también se expresa en los músculos esqueléticos, y aunque está presente en pequeñas cantidades, organismos modelo han demostrado que su ausencia puede dar lugar a miopatías. [170]
Otros mecanismos patológicos
Algunos agentes infecciosos utilizan actina, especialmente actina citoplasmática, en su ciclo de vida . En las bacterias están presentes dos formas básicas :
Listeria monocytogenes , algunas especies de Rickettsia , Shigella flexneri y otros gérmenes intracelulares escapan de las vacuolas fagocíticas recubriéndose con una cápsula de filamentos de actina. Tanto L. monocytogenes como S. flexneri generan una cola en forma de "cola de cometa" que les da movilidad. Cada especie presenta pequeñas diferencias en el mecanismo de polimerización molecular de sus "colas de cometa". Se han observado diferentes velocidades de desplazamiento, siendo Listeria y Shigella las más rápidas. [171] Muchos experimentos han demostrado este mecanismo in vitro . Esto indica que las bacterias no están utilizando un motor proteico similar a la miosina, y parece que su propulsión se adquiere a partir de la presión ejercida por la polimerización que tiene lugar cerca de la pared celular del microorganismo. Las bacterias han sido previamente rodeadas por ABP del huésped y, como mínimo, la cubierta contiene complejo Arp2/3 , proteínas Ena/VASP , cofilina, una proteína tampón y promotores de nucleación, como el complejo de vinculina . A través de estos movimientos forman protuberancias que llegan a las células vecinas, infectándolas también, de modo que el sistema inmunológico sólo puede combatir la infección a través de la inmunidad celular. El movimiento podría deberse a la modificación de la curva y desramificación de los filamentos. [172] Otras especies, como Mycobacterium marinum y Burkholderia pseudomallei , también son capaces de polimerizar localizadamente la actina celular para ayudar a su movimiento a través de un mecanismo que se centra en el complejo Arp2/3. Además, el virus vacunal Vaccinia también utiliza elementos del citoesqueleto de actina para su difusión. [173]
Además del ejemplo citado anteriormente, la polimerización de actina se estimula en las etapas iniciales de la internalización de algunos virus, en particular el VIH , inactivando, por ejemplo, el complejo de cofilina. [175]
Aún no se ha determinado el papel que desempeña la actina en el proceso de invasión de las células cancerosas. [176]
Aplicaciones
La actina se utiliza en laboratorios científicos y tecnológicos como vía de motores moleculares como la miosina (ya sea en el tejido muscular o fuera de él) y como componente necesario para el funcionamiento celular. También puede utilizarse como herramienta de diagnóstico, ya que varias de sus variantes anómalas están relacionadas con la aparición de patologías específicas.
Nanotecnología . Los sistemas actina-miosina actúan como motores moleculares que permiten el transporte de vesículas y orgánulos por todo el citoplasma. Es posible que la actina pueda aplicarse a la nanotecnología , ya que su capacidad dinámica se ha aprovechado en una serie de experimentos, incluidos los llevados a cabo en sistemas acelulares. La idea subyacente es utilizar los microfilamentos como pistas para guiar motores moleculares que puedan transportar una carga determinada. Es decir, la actina podría utilizarse para definir un circuito a lo largo del cual se pueda transportar una carga de forma más o menos controlada y dirigida. En términos de aplicaciones generales, podría usarse para el transporte dirigido de moléculas para su depósito en ubicaciones determinadas, lo que permitiría el ensamblaje controlado de nanoestructuras. [177] Estos atributos podrían aplicarse a procesos de laboratorio como el laboratorio en un chip , en mecánica de nanocomponentes y en nanotransformadores que convierten la energía mecánica en energía eléctrica. [178]
Western blot para actina citoplasmática de pulmón y epidídimo de rata
La actina se utiliza como control interno en las transferencias Western para determinar que se hayan cargado cantidades iguales de proteína en cada carril del gel. En el ejemplo de transferencia que se muestra en el lado izquierdo, se cargaron 75 μg de proteína total en cada pocillo. La transferencia se hizo reaccionar con un anticuerpo anti-β-actina (para otros detalles de la transferencia, consulte la referencia [179] )
El uso de actina como control interno se basa en el supuesto de que su expresión es prácticamente constante e independiente de las condiciones experimentales. Comparando la expresión del gen de interés con la de la actina, es posible obtener una cantidad relativa que se puede comparar entre diferentes experimentos, [180] siempre que la expresión de esta última sea constante. Vale la pena señalar que la actina no siempre tiene la estabilidad deseada en su expresión genética . [181]
Salud. Algunos alelos de actina provocan enfermedades; por este motivo se han desarrollado técnicas para su detección. Además, la actina se puede utilizar como marcador indirecto en patología quirúrgica: es posible utilizar variaciones en el patrón de su distribución en el tejido como marcador de invasión en neoplasia , vasculitis y otras afecciones. [182] Además, debido a la estrecha asociación de la actina con el aparato de contracción muscular, sus niveles en el músculo esquelético disminuyen cuando estos tejidos se atrofian , por lo que puede usarse como marcador de este proceso fisiológico. [183]
Tecnología de los Alimentos . Es posible determinar la calidad de determinados alimentos procesados, como los embutidos , cuantificando la cantidad de actina presente en la carne que los constituye. Tradicionalmente se ha utilizado un método que se basa en la detección de 3-metilhistidina en muestras hidrolizadas de estos productos, ya que este compuesto está presente en la cadena pesada de actina y F-miosina (ambas son componentes principales del músculo). La generación de este compuesto en la carne deriva de la metilación de residuos de histidina presentes en ambas proteínas. [184] [185]
La actina fue observada experimentalmente por primera vez en 1887 por WD Halliburton , quien extrajo una proteína del músculo que "coagulaba" preparaciones de miosina a las que llamó "fermento de miosina". [186] Sin embargo, Halliburton no pudo refinar más sus hallazgos, y el descubrimiento de la actina se le atribuye a Brunó Ferenc Straub , un joven bioquímico que trabaja en el laboratorio de Albert Szent-Györgyi en el Instituto de Química Médica de la Universidad de Szeged. , Hungría .
Siguiendo el descubrimiento de Ilona Banga y Szent-Györgyi en 1941 de que la coagulación sólo ocurre en algunas extracciones de miosina y se revertía con la adición de ATP, [187] Straub identificó y purificó la actina de aquellas preparaciones de miosina que sí coagulaban. Sobre la base del método de extracción original de Banga, desarrolló una técnica novedosa para extraer proteína muscular que le permitió aislar cantidades sustanciales de actina relativamente pura , publicada en 1942. [188] El método de Straub es esencialmente el mismo que se utiliza en los laboratorios hoy en día. Dado que la proteína de Straub era necesaria para activar la coagulación de la miosina, se la denominó actina . [187] [189] Al darse cuenta de que las preparaciones de miosina coagulante de Banga también contenían actina, Szent-Györgyi llamó a la mezcla de ambas proteínas actomiosina . [190]
Las hostilidades de la Segunda Guerra Mundial significaron que Szent-Gyorgyi no pudo publicar el trabajo de su laboratorio en revistas científicas occidentales . Por lo tanto, la actina no se hizo conocida en Occidente hasta 1945, cuando su artículo se publicó como suplemento del Acta Physiologica Scandinavica . [191] Straub continuó trabajando en actina, y en 1950 informó que la actina contiene ATP unido [192] y que, durante la polimerización de la proteína en microfilamentos , el nucleótido se hidroliza a ADP y fosfato inorgánico (que permanecen unidos al microfilamento). . Straub sugirió que la transformación de actina unida a ATP en actina unida a ADP desempeñaba un papel en la contracción muscular. De hecho, esto es cierto sólo en el músculo liso y no fue respaldado mediante experimentación hasta 2001. [192] [193]
M. Elzinga y sus colaboradores completaron la secuenciación de aminoácidos de la actina en 1973. [84] La estructura cristalina de la actina G fue resuelta en 1990 por Kabsch y sus colegas. [87] Ese mismo año, Holmes y sus colegas propusieron un modelo para la actina F después de experimentos que utilizaban cocristalización con diferentes proteínas. [89] El procedimiento de cocristalización con diferentes proteínas se utilizó repetidamente durante los años siguientes, hasta que en 2001 la proteína aislada se cristalizó junto con ADP. Sin embargo, todavía no existe una estructura radiográfica de alta resolución de la actina F. La cristalización de actina G fue posible gracias al uso de un conjugado de rodamina que impide la polimerización al bloquear el aminoácido cys-374 . [1] Christine Oriol-Audit murió el mismo año en que la actina se cristalizó por primera vez, pero ella fue la investigadora que en 1977 cristalizó por primera vez la actina en ausencia de proteínas de unión a actina (ABP). Sin embargo, los cristales resultantes eran demasiado pequeños para la tecnología disponible en la época. [194]
Aunque actualmente no existe ningún modelo de alta resolución de la forma filamentosa de la actina, en 2008 el equipo de Sawaya pudo producir un modelo más exacto de su estructura basado en múltiples cristales de dímeros de actina que se unen en diferentes lugares. [195] Este modelo ha sido posteriormente perfeccionado por Sawaya y Lorenz. Otros enfoques, como el uso de microscopía crioelectrónica y radiación sincrotrón, han permitido recientemente aumentar la resolución y comprender mejor la naturaleza de las interacciones y los cambios conformacionales implicados en la formación de filamentos de actina. [196] [92] [95]
Varias toxinas naturales que interfieren con la dinámica de la actina se utilizan ampliamente en la investigación para estudiar el papel de la actina en biología. La latrunculina , una toxina producida por las esponjas , se une a la actina G impidiendo que se una a los microfilamentos. [197] La citocalasina D , producida por ciertos hongos , sirve como factor de protección, uniéndose al extremo (+) de un filamento y evitando una mayor adición de moléculas de actina. [197] Por el contrario, la toxina esponjosa jasplakinolida promueve la nucleación de nuevos filamentos de actina uniendo y estabilizando pares de moléculas de actina. [198] La faloidina , del hongo Amanita phalloides , se une a las moléculas de actina adyacentes dentro del filamento de actina F, estabilizando el filamento y previniendo su despolimerización. [198]
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enlaces externos
Técnicas de tinción con actina (tinción de células vivas y fijas)
