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proteasa

Diagrama de cinta de una proteasa ( proteasa TEV ) complejada con su sustrato peptídico en negro con residuos catalíticos en rojo. ( PDB : 1LVB ​)

Una proteasa (también llamada peptidasa , proteinasa o enzima proteolítica ) [1] es una enzima que cataliza la proteólisis , descomponiendo las proteínas en polipéptidos más pequeños o aminoácidos individuales y estimulando la formación de nuevos productos proteicos. [2] Lo hacen escindiendo los enlaces peptídicos dentro de las proteínas mediante hidrólisis , una reacción en la que el agua rompe los enlaces . Las proteasas participan en numerosas vías biológicas, incluida la digestión de proteínas ingeridas, el catabolismo de proteínas (descomposición de proteínas viejas) [3] [4] y la señalización celular .

En ausencia de aceleradores funcionales, la proteólisis sería muy lenta y tardaría cientos de años . [5] Las proteasas se pueden encontrar en todas las formas de vida y en los virus . Han evolucionado independientemente varias veces y diferentes clases de proteasas pueden realizar la misma reacción mediante mecanismos catalíticos completamente diferentes .

Clasificación

Basado en residuo catalítico.

Las proteasas se pueden clasificar en siete grandes grupos: [6]

Las proteasas se agruparon por primera vez en 84 familias según su relación evolutiva en 1993, y se clasificaron en cuatro tipos catalíticos: serina , cisteína , aspártico y metaloproteasas . [7] Las proteasas treonina y glutámica no se describieron hasta 1995 y 2004, respectivamente. El mecanismo utilizado para escindir un enlace peptídico implica hacer nucleofílico un residuo de aminoácido que tiene la cisteína y la treonina (proteasas) o una molécula de agua (aspártico, glutámico y metaloproteasas) para que pueda atacar al grupo carbonilo del péptido. Una forma de crear un nucleófilo es mediante una tríada catalítica , donde se utiliza un residuo de histidina para activar la serina , la cisteína o la treonina como nucleófilo. Sin embargo, esta no es una agrupación evolutiva, ya que los tipos de nucleófilos han evolucionado de manera convergente en diferentes superfamilias , y algunas superfamilias muestran una evolución divergente hacia múltiples nucleófilos diferentes. Las metaloproteasas, las proteasas aspárticas y glutámicas utilizan los residuos de su sitio activo para activar una molécula de agua, que luego ataca el enlace escindible. [8]

péptido liasas

Un séptimo tipo catalítico de enzimas proteolíticas, la asparagina péptido liasa , se describió en 2011. Su mecanismo proteolítico es inusual ya que, en lugar de hidrólisis , realiza una reacción de eliminación . [9] Durante esta reacción, la asparagina catalítica forma una estructura química cíclica que se escinde en los residuos de asparagina en las proteínas en las condiciones adecuadas. Dado su mecanismo fundamentalmente diferente, su inclusión como peptidasa puede ser discutible. [9]

Basado en la filogenia evolutiva

En la base de datos MEROPS se encuentra una clasificación actualizada de las superfamilias evolutivas de proteasas. [10] En esta base de datos, las proteasas se clasifican en primer lugar por 'clan' ( superfamilia ) según la estructura, el mecanismo y el orden de los residuos catalíticos (por ejemplo, el clan PA , donde P indica una mezcla de familias de nucleófilos). Dentro de cada 'clan', las proteasas se clasifican en familias según la similitud de secuencia (por ejemplo, las familias S1 y C3 dentro del clan PA). Cada familia puede contener cientos de proteasas relacionadas (por ejemplo , tripsina , elastasa , trombina y estreptogrisina dentro de la familia S1).

Actualmente se conocen más de 50 clanes, cada uno de los cuales indica un origen evolutivo independiente de la proteólisis. [10]

Basado en el pH óptimo

Alternativamente, las proteasas pueden clasificarse según el pH óptimo en el que están activas:

Función y mecanismo enzimático.

"Una comparación de los dos mecanismos hidrolíticos utilizados para la proteólisis ". La enzima se muestra en negro, la proteína sustrato en rojo y el agua en azul. El panel superior muestra la hidrólisis en 1 paso donde la enzima usa un ácido para polarizar el agua, que luego hidroliza el sustrato. El panel inferior muestra una hidrólisis en dos pasos donde un residuo dentro de la enzima se activa para actuar como nucleófilo (Nu) y atacar el sustrato. Esto forma un intermedio donde la enzima está unida covalentemente a la mitad N-terminal del sustrato. En un segundo paso, se activa agua para hidrolizar este intermedio y completar la catálisis. Otros residuos de enzimas (no mostrados) donan y aceptan hidrógenos y estabilizan electrostáticamente la acumulación de carga a lo largo del mecanismo de reacción.

Las proteasas participan en la digestión de largas cadenas de proteínas en fragmentos más cortos mediante la división de los enlaces peptídicos que unen los residuos de aminoácidos . Algunas separan los aminoácidos terminales de la cadena proteica ( exopeptidasas , como aminopeptidasas , carboxipeptidasa A ); otros atacan los enlaces peptídicos internos de una proteína ( endopeptidasas , como tripsina , quimotripsina , pepsina , papaína , elastasa ).

Catálisis

La catálisis se logra mediante uno de dos mecanismos:

Especificidad

La proteólisis puede ser muy promiscua, de modo que se hidroliza una amplia gama de sustratos proteicos. Este es el caso de las enzimas digestivas como la tripsina , que deben poder escindir el conjunto de proteínas ingeridas en fragmentos peptídicos más pequeños. Las proteasas promiscuas normalmente se unen a un solo aminoácido del sustrato y, por lo tanto, solo tienen especificidad por ese residuo. Por ejemplo, la tripsina es específica para las secuencias ...K\... o ...R\... ('\'=sitio de escisión). [12]

Por el contrario, algunas proteasas son muy específicas y sólo escinden sustratos con una secuencia determinada. La coagulación sanguínea (como la trombina ) y el procesamiento de poliproteínas virales (como la proteasa TEV ) requieren este nivel de especificidad para lograr eventos de escisión precisos. Esto se logra mediante proteasas que tienen una hendidura o túnel de unión larga con varias bolsas que se unen a residuos específicos. Por ejemplo, la proteasa TEV es específica para la secuencia ...ENLYFQ\S... ('\'=sitio de escisión). [13]

Degradación y autólisis.

Las proteasas, al ser proteínas, son escindidas por otras moléculas de proteasa, a veces de la misma variedad. Esto actúa como un método de regulación de la actividad de las proteasas. Algunas proteasas son menos activas después de la autólisis (por ejemplo, proteasa TEV ), mientras que otras son más activas (por ejemplo, tripsinógeno ).

Biodiversidad de proteasas.

Las proteasas se encuentran en todos los organismos, desde procariotas hasta eucariotas y virus . Estas enzimas participan en una multitud de reacciones fisiológicas, desde la simple digestión de proteínas alimentarias hasta cascadas altamente reguladas (p. ej., la cascada de coagulación sanguínea , el sistema del complemento , las vías de apoptosis y la cascada activadora de la profenoloxidasa de invertebrados). Las proteasas pueden romper enlaces peptídicos específicos ( proteólisis limitada ), dependiendo de la secuencia de aminoácidos de una proteína, o descomponer completamente un péptido en aminoácidos ( proteólisis ilimitada ). La actividad puede ser un cambio destructivo (abolir la función de una proteína o digerirla en sus componentes principales), puede ser una activación de una función o puede ser una señal en una vía de señalización.

Plantas

Los genomas de las plantas codifican cientos de proteasas, en gran parte de función desconocida. Aquellos con función conocida participan en gran medida en la regulación del desarrollo . [14] Las proteasas vegetales también desempeñan un papel en la regulación de la fotosíntesis . [15]

animales

Las proteasas se utilizan en todo el organismo para diversos procesos metabólicos. Las proteasas ácidas secretadas en el estómago (como la pepsina ) y las serina proteasas presentes en el duodeno ( tripsina y quimotripsina ) nos permiten digerir las proteínas de los alimentos. Las proteasas presentes en el suero sanguíneo ( trombina , plasmina , factor de Hageman , etc.) juegan un papel importante en la coagulación de la sangre, así como en la lisis de los coágulos y en la correcta acción del sistema inmunológico. Otras proteasas están presentes en los leucocitos ( elatasa , catepsina G ) y desempeñan varias funciones diferentes en el control metabólico. Algunos venenos de serpiente también son proteasas, como la hemotoxina de la víbora , e interfieren en la cascada de coagulación sanguínea de la víctima. Las proteasas determinan la vida útil de otras proteínas que desempeñan funciones fisiológicas importantes, como hormonas, anticuerpos u otras enzimas. Éste es uno de los mecanismos reguladores de "encendido" y "apagado" más rápidos en la fisiología de un organismo.

Mediante una acción cooperativa compleja, las proteasas pueden catalizar reacciones en cascada , que dan como resultado una amplificación rápida y eficiente de la respuesta de un organismo a una señal fisiológica.

bacterias

Las bacterias secretan proteasas para hidrolizar los enlaces peptídicos de las proteínas y, por lo tanto, descomponerlas en sus aminoácidos constituyentes . Las proteasas bacterianas y fúngicas son particularmente importantes para los ciclos globales del carbono y el nitrógeno en el reciclaje de proteínas, y dicha actividad tiende a estar regulada por señales nutricionales en estos organismos. [16] El impacto neto de la regulación nutricional de la actividad de las proteasas entre las miles de especies presentes en el suelo se puede observar a nivel general de la comunidad microbiana a medida que las proteínas se descomponen en respuesta a la limitación de carbono, nitrógeno o azufre. [17]

Las bacterias contienen proteasas responsables del control general de la calidad de las proteínas (por ejemplo, el proteasoma AAA+ ) al degradar las proteínas desplegadas o mal plegadas .

Una proteasa bacteriana secretada también puede actuar como exotoxina y ser un ejemplo de factor de virulencia en la patogénesis bacteriana (por ejemplo, toxina exfoliativa ). Las proteasas exotóxicas bacterianas destruyen las estructuras extracelulares.

Virus

Los genomas de algunos virus codifican una poliproteína masiva , que necesita una proteasa para dividirla en unidades funcionales (por ejemplo, el virus de la hepatitis C y los picornavirus ). [18] Estas proteasas (por ejemplo, proteasa TEV ) tienen una alta especificidad y solo escinden un conjunto muy restringido de secuencias de sustrato. Por tanto, son un objetivo común para los inhibidores de proteasa . [19] [20]

arqueas

Archaea utiliza proteasas para regular diversos procesos celulares, desde la señalización celular , el metabolismo , la secreción y el control de la calidad de las proteínas. [21] [22] Sólo dos proteasas dependientes de ATP se encuentran en las arqueas: la proteasa LonB asociada a la membrana y un complejo de proteosoma soluble 20S . [21]

Usos

El campo de la investigación de las proteasas es enorme. Desde 2004, cada año se publicaron aproximadamente 8.000 artículos relacionados con este campo. [23] Las proteasas se utilizan en la industria, la medicina y como herramienta básica de investigación biológica. [24] [25]

Las proteasas digestivas forman parte de muchos detergentes para ropa y también se utilizan ampliamente en la industria del pan como mejorantes del pan . En medicina se utilizan diversas proteasas tanto para su función nativa (p. ej., control de la coagulación sanguínea) como para funciones completamente artificiales ( p. ej., para la degradación selectiva de proteínas patógenas). Proteasas altamente específicas como la proteasa TEV y la trombina se usan comúnmente para escindir proteínas de fusión y etiquetas de afinidad de forma controlada. Las soluciones vegetales que contienen proteasa llamadas cuajo vegetariano se han utilizado durante cientos de años en Europa y Oriente Medio para elaborar quesos kosher y halal . El cuajo vegetariano de Withania coagulans se utiliza desde hace miles de años como remedio ayurvédico para la digestión y la diabetes en el subcontinente indio. También se utiliza para hacer Paneer .

Inhibidores

La actividad de las proteasas es inhibida por los inhibidores de proteasas . [26] Un ejemplo de inhibidores de proteasa es la superfamilia de serpinas . Incluye alfa 1-antitripsina (que protege al cuerpo de los efectos excesivos de sus propias proteasas inflamatorias ), alfa 1-antiquimotripsina (que hace lo mismo), inhibidor de C1 (que protege al cuerpo de la activación excesiva de su propio sistema del complemento desencadenada por proteasas ), antitrombina (que protege al cuerpo de una coagulación excesiva ), inhibidor-1 del activador del plasminógeno (que protege al cuerpo de una coagulación inadecuada al bloquear la fibrinólisis desencadenada por proteasas ) y neuroserpina . [27]

Los inhibidores de proteasas naturales incluyen la familia de proteínas lipocalinas , que desempeñan un papel en la regulación y diferenciación celular. Se ha descubierto que los ligandos lipofílicos , unidos a proteínas lipocalinas, poseen propiedades inhibidoras de proteasas tumorales. Los inhibidores de proteasa naturales no deben confundirse con los inhibidores de proteasa utilizados en la terapia antirretroviral. Algunos virus , entre ellos el VIH/SIDA , dependen de proteasas en su ciclo reproductivo. Por tanto, los inhibidores de proteasa se desarrollan como agentes terapéuticos antivirales .

Otros inhibidores de proteasas naturales se utilizan como mecanismos de defensa. Ejemplos comunes son los inhibidores de tripsina que se encuentran en las semillas de algunas plantas, siendo los más notables para los humanos la soja, un cultivo alimentario importante, donde actúan para disuadir a los depredadores. La soja cruda es tóxica para muchos animales, incluidos los humanos, hasta que los inhibidores de proteasa que contienen se desnaturalizan.

Ver también

Referencias

  1. ^ "Enzima proteolítica | Descripción, tipos y funciones | Britannica".
  2. ^ López-Otín C, Bond JS (noviembre de 2008). "Proteasas: enzimas multifuncionales en la vida y la enfermedad". La Revista de Química Biológica . 283 (45): 30433–30437. doi : 10.1074/jbc.R800035200 . PMC 2576539 . PMID  18650443. 
  3. ^ ab King JV, Liang WG, Scherpelz KP, Schilling AB, Meredith SC, Tang WJ (julio de 2014). "Base molecular del reconocimiento y degradación de sustratos por proteasa de presecuencia humana". Estructura . 22 (7): 996–1007. doi :10.1016/j.str.2014.05.003. PMC 4128088 . PMID  24931469. 
  4. ^ ab Shen Y, Joachimiak A, Rosner MR, Tang WJ (octubre de 2006). "Las estructuras de la enzima que degrada la insulina humana revelan un nuevo mecanismo de reconocimiento de sustrato". Naturaleza . 443 (7113): 870–874. Código Bib :2006Natur.443..870S. doi : 10.1038/naturaleza05143. PMC 3366509 . PMID  17051221. 
  5. ^ Radzicka A, Wolfenden R (julio de 1996). "Tasas de hidrólisis de enlaces peptídicos no catalizados en solución neutra y las afinidades del estado de transición de las proteasas". Revista de la Sociedad Química Estadounidense . 118 (26): 6105–6109. doi :10.1021/ja954077c. Evaluar las competencias relativas de las enzimas que catalizan la hidrólisis de los enlaces peptídicos internos y C-terminales [...]
  6. ^ Oda K (enero de 2012). "Nuevas familias de carboxil peptidasas: serina-carboxil peptidasas y peptidasas glutámicas". Revista de Bioquímica . 151 (1): 13-25. doi : 10.1093/jb/mvr129 . PMID  22016395.
  7. ^ Rawlings ND, Barrett AJ (febrero de 1993). "Familias evolutivas de peptidasas". La revista bioquímica . 290 (Parte 1): 205–218. doi :10.1042/bj2900205. PMC 1132403 . PMID  8439290. 
  8. ^ Sanman, Laura E. (junio de 2014). "Perfiles de proteasas basados ​​en actividades". Revista Anual de Bioquímica . 83 : 249–273. doi : 10.1146/annurev-biochem-060713-035352. PMID  24905783.
  9. ^ ab Rawlings ND, Barrett AJ, Bateman A (noviembre de 2011). "Péptido liasas de asparagina: un séptimo tipo catalítico de enzimas proteolíticas". La Revista de Química Biológica . 286 (44): 38321–38328. doi : 10.1074/jbc.M111.260026 . PMC 3207474 . PMID  21832066. 
  10. ^ ab Rawlings ND, Barrett AJ, Bateman A (enero de 2010). "MEROPS: la base de datos de peptidasas". Investigación de ácidos nucleicos . 38 (Problema de la base de datos): D227–D233. doi : 10.1093/nar/gkp971. PMC 2808883 . PMID  19892822. 
  11. ^ Mitchell RS, Kumar V, Abbas AK, Fausto N (2007). Patología básica de Robbins (8ª ed.). Filadelfia: Saunders. pag. 122.ISBN 978-1-4160-2973-1.
  12. ^ Rodríguez J, Gupta N, Smith RD, Pevzner PA (enero de 2008). "¿La tripsina se corta antes que la prolina?". Revista de investigación del proteoma . 7 (1): 300–305. doi :10.1021/pr0705035. PMID  18067249.
  13. ^ Renicke C, Spadaccini R, Taxis C (24 de junio de 2013). "Una proteasa del virus del grabado del tabaco con mayor tolerancia al sustrato en la posición P1 '". MÁS UNO . 8 (6): e67915. Código Bib : 2013PLoSO...867915R. doi : 10.1371/journal.pone.0067915 . PMC 3691164 . PMID  23826349. 
  14. ^ van der Hoorn RA (2008). "Proteasas vegetales: de los fenotipos a los mecanismos moleculares". Revisión anual de biología vegetal . 59 : 191–223. doi : 10.1146/annurev.arplant.59.032607.092835. hdl : 11858/00-001M-0000-0012-37C7-9 . PMID  18257708.
  15. ^ Zelisko A, Jackowski G (octubre de 2004). "La degradación de Lhcb3 dependiente de la senescencia está mediada por una proteasa tilacoide unida a la membrana". Revista de fisiología vegetal . 161 (10): 1157-1170. doi :10.1016/j.jplph.2004.01.006. PMID  15535125.
  16. ^ Sims GK (2006). "La falta de nitrógeno promueve la biodegradación de compuestos N-heterocíclicos en el suelo". Biología y bioquímica del suelo . 38 (8): 2478–2480. doi :10.1016/j.soilbio.2006.01.006. Archivado desde el original el 28 de abril de 2021 . Consultado el 29 de diciembre de 2018 .
  17. ^ Sims GK, Wander MM (2002). "Actividad proteolítica bajo limitación de nitrógeno o azufre". Aplica. Ecología del suelo . 568 (3): 1–5. Código Bib : 2002AppSE..19..217S. doi :10.1016/S0929-1393(01)00192-5.
  18. ^ Tong L (diciembre de 2002). "Proteasas virales". Reseñas químicas . 102 (12): 4609–4626. doi :10.1021/cr010184f. PMID  12475203.
  19. ^ Skoreński M, Sieńczyk M (2013). "Proteasas virales como dianas para el diseño de fármacos". Diseño farmacéutico actual . 19 (6): 1126-1153. doi :10.2174/13816128130613. PMID  23016690.
  20. ^ Kurt Yilmaz N, Swanstrom R, Schiffer CA (julio de 2016). "Mejora de los inhibidores de proteasa viral para contrarrestar la resistencia a los medicamentos". Tendencias en Microbiología . 24 (7): 547–557. doi :10.1016/j.tim.2016.03.010. PMC 4912444 . PMID  27090931. 
  21. ^ ab Giménez MI, Cerletti M, De Castro RE (2015). "Proteasas asociadas a membranas de arqueas: conocimientos sobre Haloferax volcanii y otras haloarchaea". Fronteras en Microbiología . 6 : 39. doi : 10.3389/fmicb.2015.00039 . PMC 4343526 . PMID  25774151. 
  22. ^ Maupin-Furlow JA (diciembre de 2018). Robinson NP (ed.). "Sistemas proteolíticos de arqueas: rebanar, cortar en cubitos y picar al extremo". Temas emergentes en ciencias biológicas . 2 (4): 561–580. doi :10.1042/ETLS20180025. PMC 7497159 . PMID  32953999. 
  23. ^ Barrett AJ, Rawlings ND, Woessnerd JF (2004). Manual de enzimas proteolíticas (2ª ed.). Londres, Reino Unido: Elsevier Academic Press. ISBN 978-0-12-079610-6.
  24. ^ Hooper NM, ed. (2002). Proteasas en biología y medicina . Londres: Portland Press. ISBN 978-1-85578-147-4.
  25. ^ Feijoo-Siota L, Villa TG (28 de septiembre de 2010). "Proteasas vegetales nativas y diseñadas biotecnológicamente con aplicaciones industriales". Tecnología de Alimentos y Bioprocesos . 4 (6): 1066–1088. doi :10.1007/s11947-010-0431-4. S2CID  84748291.
  26. ^ Southan C (julio de 2001). "Una perspectiva genómica sobre las proteasas humanas como dianas farmacológicas". Descubrimiento de fármacos hoy . 6 (13): 681–688. doi :10.1016/s1359-6446(01)01793-7. PMID  11427378.
  27. ^ Puente XS, López-Otín C (abril de 2004). "Un análisis genómico de proteasas e inhibidores de proteasas de rata". Investigación del genoma . 14 (4): 609–622. doi :10.1101/gr.1946304. PMC 383305 . PMID  15060002. 

enlaces externos