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Fosfolipasa D

La fosfolipasa D (EC 3.1.4.4, lipofosfodiesterasa II, lecitinasa D, colina fosfatasa, PLD ; nombre sistemático fosfatidilcolina fosfatidohidrolasa ) es una enzima de la superfamilia de las fosfolipasas que cataliza la siguiente reacción

una fosfatidilcolina + H2O = colina + un fosfatidato

Las fosfolipasas se encuentran ampliamente distribuidas y pueden encontrarse en una amplia variedad de organismos, incluidas bacterias, levaduras, plantas, animales y virus. [1] [2] El sustrato principal de la fosfolipasa D es la fosfatidilcolina , que hidroliza para producir la molécula señal ácido fosfatídico (PA) y colina soluble en un proceso dependiente del colesterol llamado presentación del sustrato . [3] Las plantas contienen numerosos genes que codifican varias isoenzimas PLD , con pesos moleculares que van desde 90 a 125 kDa . [4] Las células de mamíferos codifican dos isoformas de la fosfolipasa D: PLD1 y PLD2 . [5] La fosfolipasa D es un actor importante en muchos procesos fisiológicos , incluidos el tráfico de membrana , la reorganización del citoesqueleto , la endocitosis mediada por receptores , la exocitosis y la migración celular . [6] A través de estos procesos, se ha implicado aún más en la fisiopatología de múltiples enfermedades : en particular, la progresión del Parkinson y el Alzheimer , así como varios tipos de cáncer . [4] [6] La PLD también puede ayudar a establecer el umbral de sensibilidad a la anestesia y la fuerza mecánica. [7] [8]

Descubrimiento

La actividad de tipo PLD fue reportada por primera vez en 1947 por Donald J. Hanahan e IL Chaikoff. [1] Sin embargo, no fue hasta 1975 que se dilucidó el mecanismo de acción hidrolítico en células de mamíferos . Las isoformas vegetales de PLD se purificaron por primera vez a partir de repollo y ricino ; PLDα finalmente se clonó y caracterizó a partir de una variedad de plantas, incluido el arroz, el maíz y el tomate. [1] Las PLD vegetales se han clonado en tres isoformas: PLDα, PLDβ y PLDγ. [9] Más de medio siglo de estudios bioquímicos han implicado la actividad de la fosfolipasa D y PA en una amplia gama de procesos fisiológicos y enfermedades , incluida la inflamación , la diabetes , la fagocitosis , la señalización neuronal y cardíaca y la oncogénesis . [10]

Función

Estrictamente hablando, la fosfolipasa D es una transfosfatidilasa: media el intercambio de grupos de cabeza polares unidos covalentemente a lípidos unidos a la membrana . Utilizando agua como nucleófilo , esta enzima cataliza la escisión del enlace fosfodiéster en fosfolípidos estructurales como la fosfatidilcolina y la fosfatidiletanolamina . [4] Los productos de esta hidrólisis son el lípido unido a la membrana ácido fosfatídico (PA) y colina , que se difunde en el citosol . Como la colina tiene poca actividad de segundo mensajero , la actividad de PLD se transduce principalmente por la producción de PA. [6] [11] El PA está muy involucrado en la transducción de señales intracelulares . [12] Además, algunos miembros de la superfamilia PLD pueden emplear alcoholes primarios como el etanol o el 1-butanol en la escisión del fosfolípido , catalizando eficazmente el intercambio del grupo de cabeza de lípidos polares . [4] [9] Otros miembros de esta familia pueden hidrolizar otros sustratos de fosfolípidos, como la cardiolipina , o incluso el enlace fosfodiéster que constituye la estructura principal del ADN . [5]

Ácido fosfatídico

Muchas de las funciones celulares de la fosfolipasa D están mediadas por su producto principal, el ácido fosfatídico (PA). El PA es un fosfolípido cargado negativamente , cuyo pequeño grupo de cabeza promueve la curvatura de la membrana . [5] Por lo tanto, se cree que facilita la fusión y fisión de la membrana - vesícula de una manera análoga a la endocitosis mediada por clatrina . [5] El PA también puede reclutar proteínas que contienen su dominio de unión correspondiente , una región caracterizada por regiones ricas en aminoácidos básicos . Además, el PA se puede convertir en varios otros lípidos , como el ácido lisofosfatídico (liso-PA) o el diacilglicerol , moléculas de señal que tienen una multitud de efectos en las vías celulares descendentes . [9] El PA y sus derivados lipídicos están implicados en una miríada de procesos que incluyen el tráfico de vesículas intracelulares , la endocitosis , la exocitosis , la dinámica del citoesqueleto de actina , la proliferación, diferenciación y migración celular . [5]

Figura 1. Un modelo de la activación dependiente de ARF de la fosfolipasa D, y un esquema propuesto para la endocitosis de vesículas . En este modelo, ARF activa la fosfolipasa D ( PLD ), reclutándola a la membrana plasmática . La hidrólisis de la fosfatidilcolina ( PC ) por la PLD activada por ARF produce ácido fosfatídico ( PA ). Posteriormente, el PA recluta moléculas que dan forma a la cara interna de la bicapa lipídica , facilitando la formación de vesículas . El enriquecimiento local de fosfolípidos ácidos ayuda a reclutar proteínas adaptadoras ( AP ) y proteínas de la cubierta ( CP ) a la membrana , iniciando la gemación de la vesícula . La fisión de la vesícula está mediada en última instancia por la dinamina , que en sí misma es un efector descendente del PA.

La PLD de mamíferos interactúa directamente con quinasas como PKC , ERK y TYK y controla la señalización, lo que indica que la PLD es activada por estas quinasas. [13] Como la colina es muy abundante en la célula, la actividad de la PLD no afecta significativamente los niveles de colina, y es poco probable que la colina desempeñe algún papel en la señalización.

El ácido fosfatídico es una molécula señalizadora que actúa para reclutar SK1 a las membranas . El ácido fosfatídico tiene una vida extremadamente corta y la enzima fosfatidato fosfatasa lo hidroliza rápidamente para formar diacilglicerol (DAG). La DAG quinasa también puede convertir el DAG en ácido fosfatídico . Aunque el ácido fosfatídico y el DAG son interconvertibles, no actúan en las mismas vías . Los estímulos que activan la PLD no activan las enzimas posteriores al DAG y viceversa.

Es posible que, aunque el PA y el DAG sean interconvertibles, se mantengan grupos separados de lípidos señalizadores y no señalizadores. Los estudios han sugerido que la señalización del DAG está mediada por el DAG poliinsaturado , mientras que el PA derivado de PLD es monoinsaturado o saturado . Por lo tanto, el PA saturado/monoinsaturado funcional se puede degradar hidrolizándolo para formar DAG saturado/monoinsaturado no funcional, mientras que el DAG poliinsaturado funcional se puede degradar convirtiéndolo en PA poliinsaturado no funcional. [14] [15] [16]

Recientemente se identificó una lisofosfolipasa D llamada autotaxina que tiene un papel importante en la proliferación celular a través de su producto, el ácido lisofosfatídico (LPA).

Estructura

Las PLD de plantas y animales tienen una estructura molecular consistente , caracterizada por sitios de catálisis rodeados por una variedad de secuencias reguladoras . [4] El sitio activo de las PLD consta de cuatro secuencias de aminoácidos altamente conservadas (I-IV), de las cuales los motivos II y IV están particularmente conservados. Estos dominios estructurales contienen la secuencia catalítica distintiva HxKxxxxD (HKD), donde H , K y D son los aminoácidos histidina (H), lisina (K), ácido aspártico (D), mientras que x representa aminoácidos no conservativos . [4] [5] Estos dos motivos HKD confieren actividad hidrolítica a la PLD y son críticos para su actividad enzimática tanto in vitro como in vivo . [5] [10] La hidrólisis del enlace fosfodiéster ocurre cuando estas secuencias HKD están en la proximidad correcta .

Las proteínas humanas que contienen este motivo incluyen:

La PLD hidrolizante de PC es un homólogo de la cardiolipina sintasa , [17] [18] la fosfatidilserina sintasa , las PLD bacterianas y las proteínas virales . Cada una de ellas parece poseer una duplicación de dominio que es evidente por la presencia de dos motivos HKD que contienen residuos de histidina , lisina y asparagina bien conservados que pueden contribuir al sitio activo del ácido aspártico . Una endonucleasa de Escherichia coli (nuc) y proteínas similares parecen ser homólogas de la PLD pero poseen solo uno de estos motivos. [19] [20] [21] [22]

Los genes PLD también codifican dominios reguladores altamente conservados : la secuencia de consenso phox (PX) , el dominio de homología de pleckstrina (PH) y un sitio de unión para el fosfatidilinositol 4,5-bisfosfato (PIP 2 ). [2]

Mecanismo de catálisis

Se ha propuesto que la hidrólisis catalizada por PLD ocurre en dos etapas a través de un mecanismo de " ping-pong ". En este esquema, los residuos de histidina de cada motivo HKD atacan sucesivamente al sustrato fosfolípido . Al funcionar como nucleófilos , las fracciones de imidazol constituyentes de las histidinas forman enlaces covalentes transitorios con el fosfolípido , produciendo un intermediario de corta duración que puede ser fácilmente hidrolizado por agua en un paso posterior . [4] [12]

Presentación del sustrato ; la PLD (óvalo azul) se secuestra en dominios lipídicos dependientes del colesterol (lípidos verdes) mediante palmitoilación . La PLD también se une a los dominios PIP2 (hexágono rojo) (sombreado gris) ubicados en la región desordenada de la célula con fosfatidilcolina (PC). Cuando la PIP2 aumenta en la célula, la PLD se transloca a PIP2, donde se expone a PC y lo hidroliza a ácido fosfatídico (lípido esférico rojo).

Mecanismo de activación

Presentación del sustrato Para PLD2 de mamíferos, la base molecular de la activación es la presentación del sustrato. La enzima reside inactiva en microdominios lipídicos ricos en esfingomielina y desprovistos de sustrato PC. [23] El aumento de PIP2 o una disminución del colesterol hace que la enzima se transloque a microdominios PIP2 cerca de su sustrato PC. Por lo tanto, PLD puede activarse principalmente por localización dentro de la membrana plasmática en lugar de un cambio conformacional de la proteína. Alteración de los dominios lipídicos por anestésicos. [24] o fuerza mecánica. [23] La proteína también puede sufrir un cambio conformacional tras la unión de PIP2, pero esto no se ha demostrado experimentalmente y constituiría un mecanismo de activación distinto de la presentación del sustrato.

Isoformas

Se han identificado dos isoformas principales de la fosfolipasa D en células de mamíferos : PLD1 y PLD2 (53% de homología de secuencia ), [25] cada una codificada por genes distintos . [5] La actividad de PLD parece estar presente en la mayoría de los tipos de células , con las posibles excepciones de los leucocitos periféricos y otros linfocitos . [10] Ambas isoformas de PLD requieren PIP 2 como cofactor para la actividad . [5] PLD1 y PLD2 exhiben diferentes localizaciones subcelulares que cambian dinámicamente en el curso de la transducción de señales . La actividad de PLD se ha observado dentro de la membrana plasmática , el citosol , el RE y el complejo de Golgi . [10]

PLD1

PLD1 es una proteína de 120 kDa que se encuentra principalmente en las membranas internas de las células. Está presente principalmente en el complejo de Golgi , endosomas , lisosomas y gránulos secretores . [5] Tras la unión de un estímulo extracelular , PLD1 se transporta a la membrana plasmática . Sin embargo, la actividad basal de PLD1 es baja y, para transducir la señal extracelular, primero debe ser activada por proteínas como Arf , Rho , Rac y la proteína quinasa C. [ 5] [6] [11]

Regulación

La actividad de la fosfolipasa D está ampliamente regulada por hormonas , neurotransmisores , lípidos , pequeñas GTPasas monoméricas y otras moléculas pequeñas que se unen a sus dominios correspondientes en la enzima. [4] En la mayoría de los casos, la transducción de señales está mediada por la producción de ácido fosfatídico , que funciona como mensajero secundario . [4]

Los fosfolípidos específicos son reguladores de la actividad de PLD en células vegetales y animales. [1] [4] La mayoría de los PLD requieren fosfatidilinositol 4,5-bisfosfato (PIP 2 ), como cofactores para la actividad. [2] [4] PIP 2 y otros fosfoinosítidos son modificadores importantes de la dinámica del citoesqueleto y el transporte de membrana y pueden transportar PLD a su sustrato PC. [26] Los PLD regulados por estos fosfolípidos suelen estar implicados en la transducción de señales intracelulares . [4] Su actividad depende de la unión de estos fosfoinosítidos cerca del sitio activo . [4] En plantas y animales, este sitio de unión se caracteriza por la presencia de una secuencia conservada de aminoácidos básicos y aromáticos . [4] [12] En plantas como Arabidopsis thaliana , esta secuencia está constituida por un motivo RxxxxxKxR junto con su repetición invertida , donde R es arginina y K es lisina . Su proximidad al sitio activo asegura un alto nivel de actividad de PLD1 y PLD2 , y promueve la translocación de PLD1 a membranas objetivo en respuesta a señales extracelulares . [4]

Dominio C2

El calcio actúa como cofactor en las isoformas de PLD que contienen el dominio C2 . La unión de Ca 2+ al dominio C2 conduce a cambios conformacionales en la enzima que fortalecen la unión enzima-sustrato , al tiempo que debilitan la asociación con los fosfoinosítidos . En algunas isoenzimas vegetales , como PLDβ, el Ca 2+ puede unirse directamente al sitio activo , aumentando indirectamente su afinidad por el sustrato al fortalecer la unión del activador PIP 2. [4 ]

Dominio PX

Se cree que la secuencia de consenso pbox (PX) media la unión de fosfatos de fosfatidilinositol adicionales, en particular, el fosfatidilinositol 5-fosfato (PtdIns5P), un lípido que se cree que es necesario para la endocitosis , puede ayudar a facilitar la reinternalización de PLD1 desde la membrana plasmática . [1]

Dominio PH

El dominio de homología de pleckstrina (PH) altamente conservado es un dominio estructural de aproximadamente 120 aminoácidos de longitud. Se une a fosfatidilinositoles como el fosfatidilinositol (3,4,5)-trifosfato (PIP 3 ) y el fosfatidilinositol (4,5)-bisfosfato (PIP 2 ). También puede unirse a proteínas G heterotriméricas a través de su subunidad βγ . También se cree que la unión a este dominio facilita la re-internalización de la proteína al aumentar su afinidad por las balsas lipídicas endocíticas . [1]

Interacciones con GTPasas pequeñas

En las células animales , los factores proteicos pequeños son importantes reguladores adicionales de la actividad de la PLD. Estas pequeñas GTPasas monoméricas son miembros de las familias Rho y ARF de la superfamilia Ras . Algunas de estas proteínas, como Rac1 , Cdc42 y RhoA , activan alostéricamente la PLD1 de mamíferos , aumentando directamente su actividad. En particular, la translocación del factor de ADP-ribosilación (ARF) citosólico a la membrana plasmática es esencial para la activación de la PLD. [1] [4]

Funciones fisiológicas y patofisiológicas

Intoxicación por alcohol

La fosfolipasa D metaboliza el etanol en fosfatidiletanol (PEtOH) en un proceso denominado transfosfatidilación. Utilizando la genética de las moscas, se ha demostrado que el PEtOH media la respuesta hiperactiva del alcohol en las moscas de la fruta. [27] Y se ha demostrado que la transfosfatidilación del etanol está regulada positivamente en los alcohólicos y en los miembros de la familia de los alcohólicos. [28] Este mecanismo de transfosfatidilación del etanol ha surgido recientemente como una teoría alternativa para el efecto del alcohol sobre los canales iónicos. Muchos canales iónicos están regulados por lípidos aniónicos. [29] Y se cree que la competencia del PEtOH con los lípidos de señalización endógenos media el efecto del etanol sobre los canales iónicos en algunos casos y no la unión directa del etanol libre al canal. [27]

Mecanosensación

PLD2 es un mecanosensor y directamente sensible a la disrupción mecánica de los lípidos GM1 agrupados. [3] La disrupción mecánica (corte de fluido) envía señales a la célula para que se diferencie. PLD2 también activa los canales TREK-1, un canal de potasio en la vía analgésica. [30]

En el cáncer

La fosfolipasa D es un regulador de varios procesos celulares críticos, incluyendo el transporte de vesículas , endocitosis , exocitosis , migración celular y mitosis . [6] La desregulación de estos procesos es común en la carcinogénesis , [6] y a su vez, las anormalidades en la expresión de PLD han sido implicadas en la progresión de varios tipos de cáncer . [2] [5] Se ha observado una mutación impulsora que confiere una actividad elevada de PLD2 en varios cánceres de mama malignos . [5] La expresión elevada de PLD también se ha correlacionado con el tamaño del tumor en el carcinoma colorrectal , el carcinoma gástrico y el cáncer renal . [5] [6] Sin embargo, las vías moleculares a través de las cuales la PLD impulsa la progresión del cáncer siguen sin estar claras. [5] Una posible hipótesis arroja un papel crítico para la fosfolipasa D en la activación de mTOR , un supresor de la apoptosis de las células cancerosas . [5] La capacidad de PLD para suprimir la apoptosis en células con actividad elevada de tirosina quinasa lo convierte en un candidato a oncogén en cánceres donde dicha expresión es típica. [6]

En enfermedades neurodegenerativas

La fosfolipasa D también puede desempeñar un papel fisiopatológico importante en la progresión de enfermedades neurodegenerativas , principalmente a través de su capacidad como transductor de señales en procesos celulares indispensables como la reorganización del citoesqueleto y el tráfico de vesículas . [25] Se ha demostrado que la desregulación de PLD por la proteína α-sinucleína conduce a la pérdida específica de neuronas dopaminérgicas en mamíferos . La α-sinucleína es el componente estructural primario de los cuerpos de Lewy , agregados de proteínas que son el sello distintivo de la enfermedad de Parkinson . [5] La desinhibición de PLD por α-sinucleína puede contribuir al fenotipo deletéreo del Parkinson . [5]

También se ha sospechado una actividad anormal de PLD en la enfermedad de Alzheimer , donde se ha observado que interactúa con la presenilina 1 (PS-1), el componente principal del complejo γ-secretasa responsable de la escisión enzimática de la proteína precursora amiloide (APP). Las placas extracelulares del producto β-amiloide son una característica definitoria de los cerebros con enfermedad de Alzheimer . [5] Se ha demostrado que la acción de PLD1 sobre PS-1 afecta el tráfico intracelular del precursor amiloide a este complejo . [5] [25] La fosfolipasa D3 (PLD3), un miembro no clásico y poco caracterizado de la superfamilia PLD , también se ha asociado con la patogénesis de esta enfermedad. [31]

Galería

Referencias

  1. ^ abcdefg Jenkins GM, Frohman MA (octubre de 2005). "Fosfolipasa D: una revisión centrada en los lípidos". Ciencias de la vida celular y molecular . 62 (19–20): 2305–16. doi :10.1007/s00018-005-5195-z. PMC  11139095 . PMID  16143829. S2CID  26447185.
  2. ^ abcd Exton JH (2002). "Estructura, regulación y función de la fosfolipasa D". Reseñas de fisiología, bioquímica y farmacología . 144 : 1–94. doi :10.1007/BFb0116585. ISBN. 978-3-540-42814-5. Número de identificación personal  11987824.
  3. ^ ab Petersen EN, Chung HW, Nayebosadri A, Hansen SB (diciembre de 2016). "La disrupción cinética de las balsas lipídicas es un mecanosensor para la fosfolipasa D". Nature Communications . 7 (1): 13873. Bibcode :2016NatCo...713873P. doi :10.1038/ncomms13873. PMC 5171650 . PMID  27976674. 
  4. ^ abcdefghijklmnopqrs Kolesnikov YS, Nokhrina KP, Kretynin SV, Volotovski ID, Martinec J, Romanov GA, Kravets VS (enero de 2012). "Estructura molecular de la fosfolipasa D y mecanismos reguladores de su actividad en células vegetales y animales". Bioquímica. Biokhimiia . 77 (1): 1–14. doi :10.1134/S0006297912010014. PMID  22339628. S2CID  14815405.
  5. ^ abcdefghijklmnopqrst Peng X, Frohman MA (febrero de 2012). "Funciones fisiológicas y patológicas de la fosfolipasa D en mamíferos". Acta Physiologica . 204 (2): 219–26. doi :10.1111/j.1748-1716.2011.02298.x. PMC 3137737 . PMID  21447092. 
  6. ^ abcdefghi Foster DA, Xu L (septiembre de 2003). "Fosfolipasa D en la proliferación celular y el cáncer". Molecular Cancer Research . 1 (11): 789–800. PMID  14517341.
  7. ^ Petersen EN, Gudheti M, Pavel MA, Murphy KR, William WJ, Jorgensen EM, Hansen SB (5 de septiembre de 2019). "La fosfolipasa D transduce fuerza a los canales TREK-1 en una membrana biológica". bioRxiv : 758896. doi : 10.1101/758896 .
  8. ^ Pavel MA, Petersen EN, Wang H, Lerner RA, Hansen SB (junio de 2020). "Estudios sobre el mecanismo de la anestesia general". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 117 (24): 13757–13766. Bibcode :2020PNAS..11713757P. bioRxiv 10.1101/313973 . doi : 10.1073/pnas.2004259117 . PMC 7306821 . PMID  32467161.  
  9. ^ abc Banno Y (marzo de 2002). "Regulación y posible papel de la fosfolipasa D de mamíferos en las funciones celulares". Journal of Biochemistry . 131 (3): 301–6. doi :10.1093/oxfordjournals.jbchem.a003103. PMID  11872157. S2CID  24389113.
  10. ^ abcd McDermott M, Wakelam MJ, Morris AJ (febrero de 2004). "Fosfolipasa D". Bioquímica y biología celular . 82 (1): 225–53. doi :10.1139/o03-079. PMID  15052340.
  11. ^ ab Balboa MA, Firestein BL, Godson C, Bell KS, Insel PA (abril de 1994). "La proteína quinasa C alfa media la activación de la fosfolipasa D por nucleótidos y ésteres de forbol en células renales caninas Madin-Darby. La estimulación de la fosfolipasa D es independiente de la activación de la fosfolipasa C y la fosfolipasa A2 específicas de polifosfoinosítidos". The Journal of Biological Chemistry . 269 (14): 10511–6. doi : 10.1016/S0021-9258(17)34089-9 . PMID  8144636.
  12. ^ abc Leiros I, Secundo F, Zambonelli C, Servi S, Hough E (junio de 2000). "La primera estructura cristalina de una fosfolipasa D". Structure . 8 (6): 655–67. doi : 10.1016/S0969-2126(00)00150-7 . PMID  10873862.
  13. ^ Paruch S, El-Benna J, Djerdjouri B, Marullo S, Périanin A (enero de 2006). "Un papel de las quinasas de proteína activadas por mitógeno p44/42 en la actividad de la fosfolipasa D mediada por el receptor de péptidos formil y la producción de oxidantes". Revista FASEB . 20 (1): 142–4. doi : 10.1096/fj.05-3881fje . PMID  16253958. S2CID  28348537.
  14. ^ Bocckino SB, Blackmore PF, Wilson PB, Exton JH (noviembre de 1987). "Acumulación de fosfatidato en hepatocitos tratados con hormonas a través de un mecanismo de fosfolipasa D". The Journal of Biological Chemistry . 262 (31): 15309–15. doi : 10.1016/S0021-9258(18)48176-8 . PMID  3117799.
  15. ^ Bocckino SB, Wilson PB, Exton JH (diciembre de 1987). "Las hormonas movilizadoras de Ca2+ provocan la acumulación de fosfatidiletanol a través de la activación de la fosfolipasa D". FEBS Letters . 225 (1–2): 201–4. doi : 10.1016/0014-5793(87)81157-2 . PMID  3319693. S2CID  10674790.
  16. ^ Hodgkin MN, Pettitt TR, Martin A, Michell RH, Pemberton AJ, Wakelam MJ (junio de 1998). "Diacilgliceroles y fosfatidatos: ¿qué especies moleculares son mensajeros intracelulares?". Tendencias en ciencias bioquímicas . 23 (6): 200–4. doi :10.1016/S0968-0004(98)01200-6. PMID  9644971.
  17. ^ Nowicki M, Müller F, Frentzen M (abril de 2005). "Sintasa de cardiolipina de Arabidopsis thaliana". FEBS Letters . 579 (10): 2161–5. doi : 10.1016/j.febslet.2005.03.007 . PMID  15811335. S2CID  21937549.
  18. ^ Nowicki M (2006). Caracterización de la cardiolipina sintasa de Arabidopsis thaliana (tesis doctoral). Universidad RWTH-Aachen. Archivado desde el original el 5 de octubre de 2011. Consultado el 11 de julio de 2011 .
  19. ^ Ponting CP, Kerr ID (mayo de 1996). "Una nueva familia de homólogos de la fosfolipasa D que incluye fosfolípidos sintetasas y supuestas endonucleasas: identificación de repeticiones duplicadas y potenciales residuos del sitio activo". Protein Science . 5 (5): 914–22. doi :10.1002/pro.5560050513. PMC 2143407 . PMID  8732763. 
  20. ^ Koonin EV (julio de 1996). "Un motivo catalítico duplicado en una nueva superfamilia de fosfohidrolasas y fosfolípidos sintetasas que incluye proteínas de la envoltura del poxvirus". Tendencias en ciencias bioquímicas . 21 (7): 242–3. doi :10.1016/0968-0004(96)30024-8. PMID  8755242.
  21. ^ Wang X, Xu L, Zheng L (agosto de 1994). "Clonación y expresión de la fosfolipasa D hidrolizante de fosfatidilcolina de Ricinus communis L". Revista de química biológica . 269 (32): 20312–7. doi : 10.1016/S0021-9258(17)31993-2 . ​​PMID  8051126.
  22. ^ Singer WD, Brown HA, Sternweis PC (1997). "Regulación de la fosfolipasa C y la fosfolipasa D específicas de la fosfatidilinositol eucariota". Revisión anual de bioquímica . 66 : 475–509. doi :10.1146/annurev.biochem.66.1.475. PMID  9242915.
  23. ^ ab Petersen EN, Chung HW, Nayebosadri A, Hansen SB (diciembre de 2016). "La disrupción cinética de las balsas lipídicas es un mecanosensor para la fosfolipasa D". Nature Communications . 7 (13873): 13873. Bibcode :2016NatCo...713873P. doi :10.1038/ncomms13873. PMC 5171650 . PMID  27976674. 
  24. ^ Pavel MA, Petersen EN, Wang H, Lerner RA, Hansen SB (4 de mayo de 2018). "Estudios sobre el mecanismo de la anestesia general". bioRxiv . 117 (24): 13757–13766. doi : 10.1101/313973 . PMC 7306821 . PMID  32467161. 
  25. ^ abc Lindsley CW, Brown HA (enero de 2012). "La fosfolipasa D como diana terapéutica en trastornos cerebrales". Neuropsicofarmacología . 37 (1): 301–2. doi :10.1038/npp.2011.178. PMC 3238067 . PMID  22157867. 
  26. ^ Petersen EN, Chung HW, Nayebosadri A, Hansen SB (diciembre de 2016). "La disrupción cinética de las balsas lipídicas es un mecanosensor para la fosfolipasa D". Nature Communications . 7 : 13873. Bibcode :2016NatCo...713873P. doi :10.1038/ncomms13873. PMC 5171650 . PMID  27976674. 
  27. ^ ab Chung HW, Petersen EN, Cabanos C, Murphy KR, Pavel MA, Hansen AS, et al. (enero de 2019). "Un objetivo molecular para un límite de longitud de cadena de alcohol". Revista de biología molecular . 431 (2): 196–209. doi :10.1016/j.jmb.2018.11.028. PMC 6360937 . PMID  30529033. 
  28. ^ Mueller GC, Fleming MF, LeMahieu MA, Lybrand GS, Barry KJ (diciembre de 1988). "Síntesis de fosfatidiletanol: un marcador potencial para varones adultos en riesgo de alcoholismo". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 85 (24): 9778–82. Bibcode :1988PNAS...85.9778M. doi : 10.1073/pnas.85.24.9778 . PMC 282864 . PMID  3200856. 
  29. ^ Hansen SB (mayo de 2015). "Agonismo lipídico: el paradigma PIP2 de los canales iónicos controlados por ligando". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biología molecular y celular de los lípidos . 1851 (5): 620–8. doi : 10.1016 /j.bbalip.2015.01.011. PMC 4540326. PMID  25633344. 
  30. ^ Comoglio Y, Levitz J, Kienzler MA, Lesage F, Isacoff EY, Sandoz G (septiembre de 2014). "La fosfolipasa D2 regula específicamente los canales de potasio TREK a través de la interacción directa y la producción local de ácido fosfatídico". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 111 (37): 13547–52. Bibcode :2014PNAS..11113547C. doi : 10.1073/pnas.1407160111 . PMC 4169921 . PMID  25197053. 
  31. ^ Cruchaga C, Karch CM, Jin SC, Benítez BA, Cai Y, Guerreiro R, et al. (Enero de 2014). "Las variantes de codificación raras en el gen de la fosfolipasa D3 confieren riesgo de enfermedad de Alzheimer". Naturaleza . 505 (7484): 550–554. Bibcode :2014Natur.505..550.. doi :10.1038/nature12825. PMC 4050701 . PMID  24336208. 

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