stringtranslate.com

Dinoflagelado

Los dinoflagelados (del griego antiguo δῖνος ( dînos )  'giratorio' y del latín flagellum  'látigo, azote') son un grupo monofilético de eucariotas unicelulares que constituyen el filo Dinoflagellata [5] y generalmente se consideran protistas . Los dinoflagelados son en su mayoría plancton marino , pero también son comunes en hábitats de agua dulce . Sus poblaciones varían con la temperatura de la superficie del mar , la salinidad y la profundidad. Muchos dinoflagelados son fotosintéticos , pero una gran fracción de estos son de hecho mixotróficos , combinando la fotosíntesis con la ingestión de presas ( fagotrofia y myzocitosis ). [6] [7]

En términos de número de especies, los dinoflagelados son uno de los grupos más grandes de eucariotas marinos, aunque sustancialmente más pequeños que las diatomeas . [8] Algunas especies son endosimbiontes de animales marinos y juegan un papel importante en la biología de los arrecifes de coral . Otros dinoflagelados son depredadores no pigmentados de otros protozoos, y algunas formas son parásitas (por ejemplo, Oodinium y Pfiesteria ). Algunos dinoflagelados producen etapas de reposo, llamadas quistes de dinoflagelados o dinoquistes , como parte de sus ciclos de vida; esto ocurre en 84 de las 350 especies de agua dulce descritas y un poco más del 10% de las especies marinas conocidas. [9] [10] Los dinoflagelados son alveolados que poseen dos flagelos , la condición ancestral de los bikontes .

En la actualidad se han descrito alrededor de 1.555 especies de dinoflagelados marinos de vida libre. [11] Otra estimación sugiere que hay alrededor de 2.000 especies vivas, de las cuales más de 1.700 son marinas (de vida libre y bentónicas) y alrededor de 220 son de agua dulce. [12] Las últimas estimaciones sugieren un total de 2.294 especies de dinoflagelados vivos, que incluyen dinoflagelados marinos, de agua dulce y parásitos. [2]

Una rápida acumulación de ciertos dinoflagelados puede provocar una coloración visible del agua, conocida coloquialmente como marea roja (una floración de algas nocivas ), que puede causar intoxicación por mariscos si los humanos comen mariscos contaminados. Algunos dinoflagelados también presentan bioluminiscencia , emitiendo principalmente luz azul verdosa, que puede ser visible en áreas oceánicas bajo ciertas condiciones.

Etimología

El término "dinoflagelado" es una combinación del griego dinos y del latín flagellum . Dinos significa "girando" y hace referencia a la forma distintiva en la que se observó que los dinoflagelados nadaban. Flagellum significa "látigo" y esto se refiere a sus flagelos . [13]

Historia

En 1753, los primeros dinoflagelados modernos fueron descritos por Henry Baker como "Animálculos que causan la luz brillante en el agua del mar", [14] y nombrados por Otto Friedrich Müller en 1773. [15] El término deriva de la palabra griega δῖνος ( dînos ), que significa giratorio, y del latín flagellum , un término diminutivo para un látigo o flagelo.

En la década de 1830, el microscopista alemán Christian Gottfried Ehrenberg examinó muchas muestras de agua y plancton y propuso varios géneros de dinoflagelados que todavía se utilizan hoy en día, incluidos Peridinium, Prorocentrum y Dinophysis . [16]

Estos mismos dinoflagelados fueron definidos por primera vez por Otto Bütschli en 1885 como el orden flagelado Dinoflagellida. [17] Los botánicos los trataron como una división de las algas, llamadas Pyrrophyta o Pyrrhophyta ("algas de fuego"; griego pyrr(h)os , fuego) por las formas bioluminiscentes, o Dinophyta . En varias ocasiones, las criptomonas , los ebriidos y los ellobiopsidos se han incluido aquí, pero solo los últimos se consideran ahora parientes cercanos. Los dinoflagelados tienen una capacidad conocida de transformarse de estrategias de no formación de quistes a formación de quistes, lo que hace que recrear su historia evolutiva sea extremadamente difícil.

Morfología

Representación de un dinoflagelado
  1. Membranas de plástidos (3, rojo secundario)
  2. Tilacoides , lugar de las reacciones de la fotosíntesis dependientes de la luz .
  3. Pirenoide , centro de fijación del carbono
  4. Tricocisto
  5. Alvéolo, cavidad o fosa superficial
  6. Placa tecal
  7. Saco pusular
  8. Vacío
  9. Aparato de Golgi ; modifica las proteínas y las envía fuera de la célula.
  10. Retículo endoplásmico , la red de transporte de moléculas que van a partes específicas de la célula.
  11. Flagelo transversal
  12. Hebra estriada
  13. Acumulación de pústulas
  14. Mitocondria , crea ATP (energía) para la célula.
  15. Núcleo
  16. Nucleolo
  17. Cromosoma condensado
  18. Granulado de almidón
  19. Lisosoma , contiene enzimas
  20. Fagosoma , vesícula formada alrededor de una partícula.
  21. Mastigonema , "pelos" que se adhieren al flagelo
  22. Flagelo longitudinal

Los dinoflagelados son unicelulares y poseen dos flagelos diferentes que surgen del lado ventral de la célula (flagelación dinokont). Tienen un flagelo transversal en forma de cinta con múltiples ondas que late hacia la izquierda de la célula, y uno más convencional, el flagelo longitudinal, que late posteriormente. [18] [19] [20] El flagelo transversal es una cinta ondulada en la que solo el borde exterior ondula desde la base hasta la punta, debido a la acción del axonema que corre a lo largo de él. El borde axonemal tiene pelos simples que pueden ser de longitudes variables. El movimiento flagelar produce propulsión hacia adelante y también una fuerza de giro. El flagelo longitudinal es relativamente convencional en apariencia, con pocos o ningún pelo. Bate con solo uno o dos períodos por onda. Los flagelos se encuentran en surcos superficiales: el transversal en el cíngulo y el longitudinal en el surco, aunque su porción distal se proyecta libremente detrás de la célula. En las especies de dinoflagelados con flagelación desmoconte (por ejemplo, Prorocentrum ), los dos flagelos están diferenciados como en los dinocontes, pero no están asociados con surcos.

Los dinoflagelados tienen una cubierta celular compleja llamada anfiesma o corteza, compuesta por una serie de membranas, vesículas aplanadas llamadas alvéolos (= vesículas anfiesmales) y estructuras relacionadas. [21] [22] En los dinoflagelados tecatos ("acorazados"), estos sostienen placas de celulosa superpuestas para crear una especie de armadura llamada teca o lorica , a diferencia de los dinoflagelados atecatos ("desnudos"). Estos se presentan en varias formas y disposiciones, dependiendo de la especie y, a veces, de la etapa del dinoflagelado. Convencionalmente, el término tabulación se ha utilizado para referirse a esta disposición de placas tecales . La configuración de la placa se puede denotar con la fórmula de placa o fórmula de tabulación. Los extrusomas fibrosos también se encuentran en muchas formas. [23] [24]

Alrededor de la célula corre un surco transversal, el llamado cígulo (o cigulum), que la divide en una parte anterior (episoma) y una parte posterior (hiposoma). Si y solo si hay una teca, las partes se denominan epiteca e hipoteca, respectivamente. Posteriormente, a partir del surco transversal, hay un surco longitudinal llamado surco. El flagelo transversal golpea en el cígulo, el flagelo longitudinal en el surco. [25] [24]

Junto con varios otros detalles estructurales y genéticos, esta organización indica una estrecha relación entre los dinoflagelados, los Apicomplexa y los ciliados , denominados colectivamente alveolados . [23]

Las tabulaciones de dinoflagelados se pueden agrupar en seis "tipos de tabulación": gimnodinoides , suesoides, goniaulacoides-peridinioides, nannoceratopsiosoides, dinofisioides y prorocentroides. [26]

La mayoría de los dinoflagelados tienen un plástido derivado de la endosimbiosis secundaria de algas rojas, sin embargo, también se han descubierto dinoflagelados con plástidos derivados de algas verdes y endosimbiosis terciaria de diatomeas. [27] Al igual que otros organismos fotosintéticos, los dinoflagelados contienen clorofilas a y c2 y el carotenoide betacaroteno. Los dinoflagelados también producen xantofilas que incluyen peridinina , dinoxantina y diadinoxantina . Estos pigmentos dan a muchos dinoflagelados su típico color marrón dorado. Sin embargo, los dinoflagelados Karenia brevis , Karenia mikimotoi y Karlodinium micrum han adquirido otros pigmentos a través de la endosimbiosis, incluida la fucoxantina . [28] Esto sugiere que sus cloroplastos fueron incorporados por varios eventos endosimbióticos que involucraron formas ya coloreadas o secundariamente incoloras. El descubrimiento de plástidos en Apicomplexa ha llevado a algunos a sugerir que fueron heredados de un ancestro común a los dos grupos, pero ninguna de las líneas más basales los tiene. De todos modos, la célula dinoflagelada consta de los orgánulos más comunes, como el retículo endoplasmático rugoso y liso , el aparato de Golgi , las mitocondrias , los granos de lípidos y almidón y las vacuolas alimenticias . Algunos incluso se han encontrado con un orgánulo sensible a la luz, la mancha ocular o estigma , o un núcleo más grande que contiene un nucléolo prominente . El dinoflagelado Erythropsidinium tiene el ojo más pequeño conocido. [29]

Algunas especies de atecatos tienen un esqueleto interno que consiste en dos elementos silíceos en forma de estrella que tienen una función desconocida y pueden encontrarse como microfósiles . Tappan [30] realizó un estudio de los dinoflagelados con esqueletos internos . Esto incluyó la primera descripción detallada de los pentasteros en Actiniscus pentasterias , basada en microscopía electrónica de barrido . Se ubican dentro del orden Gymnodiniales , suborden Actiniscineae. [5]

Estructura y formación de la teca

La formación de placas tecales se ha estudiado en detalle a través de estudios ultraestructurales. [22]

El núcleo de dinoflagelado: dinokaryon

Los 'dinoflagelados centrales' ( dinocariotas ) tienen una forma peculiar de núcleo , llamado dinocarión , en el que los cromosomas están unidos a la membrana nuclear . Estos llevan un número reducido de histonas . En lugar de histonas, los núcleos de los dinoflagelados contienen una nueva familia dominante de proteínas nucleares que parecen ser de origen viral, por lo que se denominan nucleoproteínas virales de dinoflagelados (DVNP), que son altamente básicas, se unen al ADN con una afinidad similar a las histonas y se presentan en múltiples formas modificadas postraduccionalmente. [31] Los núcleos de los dinoflagelados permanecen condensados ​​durante la interfase en lugar de solo durante la mitosis , que es cerrada e involucra un huso mitótico exclusivamente extranuclear . [32] Este tipo de núcleo se consideró en el pasado como un intermedio entre la región nucleoide de los procariotas y los núcleos verdaderos de los eucariotas , por lo que se denominaron " mesocariotas ", pero ahora se consideran rasgos derivados en lugar de primitivos (es decir, los ancestros de los dinoflagelados tenían núcleos eucariotas típicos). Además de los dinocariotas, los DVNP se pueden encontrar en un grupo de dinoflagelados basales (conocidos como alveolados marinos , "MALV") que se ramifican como hermanos de los dinocariotas ( Syndiniales ). [33]

Clasificación

Generalidad

1. Ornitocerco ; 2. diagrama; 3. Exuviaella ; 4. Prorocentro ; 5, 6. Cerato ; 7. Warnovia ; 8. Citaristas ; 9. Polikrikos

Los dinoflagelados son protistas y se han clasificado utilizando tanto el Código Internacional de Nomenclatura Botánica (ICBN, ahora rebautizado como ICN) como el Código Internacional de Nomenclatura Zoológica (ICZN). Aproximadamente la mitad de las especies de dinoflagelados actuales son autótrofos que poseen cloroplastos y la otra mitad son heterótrofos que no realizan la fotosíntesis.

Los dinoflagelados peridinínicos , llamados así por sus plástidos peridinínicos, parecen ser los ancestros del linaje de los dinoflagelados. Casi la mitad de todas las especies conocidas tienen cloroplastos, que son los plástidos peridinínicos originales o plástidos nuevos adquiridos de otros linajes de algas unicelulares mediante endosimbiosis. Las especies restantes han perdido sus capacidades fotosintéticas y se han adaptado a un estilo de vida heterotrófico, parasitario o cleptoplásico . [34] [35]

La mayoría de los dinoflagelados (pero no todos) tienen un dinocarion , que se describe a continuación (ver: Ciclo de vida, a continuación). Los dinoflagelados con un dinocarion se clasifican en Dinokaryota , mientras que los dinoflagelados sin un dinocarion se clasifican en Syndiniales .

Aunque se clasifican como eucariotas , los núcleos de los dinoflagelados no son característicamente eucariotas, ya que algunos de ellos carecen de histonas y nucleosomas , y mantienen cromosomas continuamente condensados ​​durante la mitosis . El núcleo de los dinoflagelados fue denominado "mesocariota" por Dodge (1966), [36] debido a su posesión de características intermedias entre las áreas de ADN enrollado de las bacterias procariotas y el núcleo eucariota bien definido. Este grupo, sin embargo, contiene orgánulos típicamente eucariotas , como los cuerpos de Golgi, las mitocondrias y los cloroplastos. [37]

Microalga dinofítica aislada de sedimentos de la bahía de Amur

Jakob Schiller (1931-1937) proporcionó una descripción de todas las especies, tanto marinas como de agua dulce, conocidas en ese momento. [38] Más tarde, Alain Sournia (1973, 1978, 1982, 1990, 1993) enumeró las nuevas entradas taxonómicas publicadas después de Schiller (1931-1937). [39] [40] [41] [42] [43] Sournia (1986) proporcionó descripciones e ilustraciones de los géneros marinos de dinoflagelados, excluyendo información a nivel de especie. [44] El último índice está escrito por Gómez. [2]

Identificación

Se han publicado monografías taxonómicas en inglés que abarcan un gran número de especies para el Golfo de México, [45] el Océano Índico, [46] las Islas Británicas, [47] el Mediterráneo [48] y el Mar del Norte. [49]

La principal fuente para la identificación de dinoflagelados de agua dulce es la Flora de Süsswasser . [50]

El blanco de calcoflúor se puede utilizar para teñir las placas tecales de los dinoflagelados acorazados. [51]

Ecología y fisiología

Hábitats

Los dinoflagelados se encuentran en todos los ambientes acuáticos: marinos, salobres y dulces, incluso en la nieve o el hielo. También son comunes en ambientes bentónicos y en el hielo marino.

Endosimbiontes

Todas las Zooxanthellae son dinoflagelados y la mayoría de ellos son miembros dentro de Symbiodiniaceae (por ejemplo, el género Symbiodinium ). [52] La asociación entre Symbiodinium y los corales constructores de arrecifes es ampliamente conocida. Sin embargo, las Zooxanthellae endosimbióticas habitan en un gran número de otros invertebrados y protistas, por ejemplo, muchas anémonas de mar , medusas , nudibranquios , la almeja gigante Tridacna y varias especies de radiolarios y foraminíferos . [53] Muchos dinoflagelados existentes son parásitos (aquí definidos como organismos que comen a sus presas desde el interior, es decir, endoparásitos , o que permanecen unidos a sus presas durante períodos de tiempo más largos, es decir, ectoparásitos). Pueden parasitar huéspedes animales o protistas. Protoodinium, Crepidoodinium, Piscinoodinium y Blastodinium retienen sus plástidos mientras se alimentan de sus huéspedes zooplanctónicos o peces. En la mayoría de los dinoflagelados parásitos, la etapa infecciosa se asemeja a una célula de dinoflagelado móvil típica.

Estrategias nutricionales

En los dinoflagelados se observan tres estrategias nutricionales: fototrofia , mixotrofia y heterotrofia . Los fotótrofos pueden ser fotoautótrofos o auxótrofos . Los dinoflagelados mixotróficos son fotosintéticamente activos, pero también son heterótrofos. Los mixotrofos facultativos, en los que la autotrofia o la heterotrofia son suficientes para la nutrición, se clasifican como anfitróficos. Si se requieren ambas formas, los organismos son mixotróficos sensu stricto . Algunos dinoflagelados de vida libre no tienen cloroplastos, pero albergan un endosimbionte fototrófico. Algunos dinoflagelados pueden utilizar cloroplastos ajenos (cleptocloroplastos), obtenidos de los alimentos ( cleptoplastia ). Algunos dinoflagelados pueden alimentarse de otros organismos como depredadores o parásitos. [54]

Las inclusiones alimentarias contienen bacterias, algas verdeazuladas, diatomeas, ciliados y otros dinoflagelados. [55] [56] [57] [58] [59] [60] [61]

Los mecanismos de captura e ingestión en dinoflagelados son bastante diversos. Varios dinoflagelados, tanto tecatos (p. ej. Ceratium hirundinella , [60] Peridinium globulus [58] ) como no tecatos (p. ej. Oxyrrhis marina , [56] Gymnodinium sp. [62] y Kofoidinium spp. [63] ), atraen a sus presas hacia la región sulcal de la célula (ya sea a través de corrientes de agua creadas por los flagelos o a través de extensiones pseudopodiales) e ingieren la presa a través del surco. En varias Protoperidinium spp., p. ej. P. conicum , se extruye un gran velo de alimentación, un pseudópodo llamado palio, para capturar presas que posteriormente se digieren extracelularmente (= alimentación por palio). [64] [65] Oblea , Zygabikodinium y Diplopsalis son los únicos otros géneros de dinoflagelados conocidos que utilizan este mecanismo de alimentación particular. [65] [66] [67] Katodinium (Gymnodinium) fungiforme , que se encuentra comúnmente como contaminante en cultivos de algas o ciliados, se alimenta adhiriéndose a su presa e ingiriendo su citoplasma a través de un pedúnculo extensible. [68] Dos especies relacionadas, polykrikos kofoidii y neatodinium, disparan un orgánulo similar a un arpón para capturar presas. [69]

Algunos dinoflagelados mixotróficos son capaces de producir neurotoxinas que tienen efectos anti-pastoreo en copépodos más grandes y mejoran la capacidad del dinoflagelado para depredar copépodos más grandes. Las cepas tóxicas de K. veneficum producen karlotoxina que mata a los depredadores que las ingieren, reduciendo así las poblaciones depredadoras y permitiendo la proliferación de cepas tóxicas y no tóxicas de K. veneficum . Además, la producción de karlotoxina mejora la capacidad depredadora de K. veneficum al inmovilizar a sus presas más grandes. [70] K. arminger es más propenso a depredar copépodos al liberar una potente neurotoxina que inmoviliza a su presa al contacto. Cuando K. arminger está presente en cantidades suficientemente grandes, puede eliminar poblaciones enteras de sus presas copépodos. [71]

Los mecanismos de alimentación de los dinoflagelados oceánicos siguen siendo desconocidos, aunque se observaron extensiones pseudopodiales en Podolampas bipes . [72]

Floraciones

Introducción

Las floraciones de dinoflagelados son generalmente impredecibles, cortas, con baja diversidad de especies y con poca sucesión de especies. [73] La baja diversidad de especies puede deberse a múltiples factores. Una forma en que puede ocurrir una falta de diversidad en una floración es a través de una reducción en la depredación y una disminución de la competencia. La primera puede lograrse haciendo que los depredadores rechacen al dinoflagelado, por ejemplo, disminuyendo la cantidad de alimento que puede comer. Esto además ayuda a prevenir un aumento futuro en la presión de depredación al hacer que los depredadores que lo rechazan carezcan de la energía para reproducirse. Una especie puede entonces inhibir el crecimiento de sus competidores, logrando así el dominio. [74]

Floraciones de algas nocivas

Los dinoflagelados a veces florecen en concentraciones de más de un millón de células por mililitro. En tales circunstancias, pueden producir toxinas (generalmente llamadas dinotoxinas ) en cantidades capaces de matar a los peces y acumularse en los animales filtradores como los mariscos , que a su vez pueden transmitirse a las personas que los comen. Este fenómeno se llama marea roja , por el color que la floración imparte al agua. Algunos dinoflagelados incoloros también pueden formar floraciones tóxicas, como Pfiesteria . Algunas floraciones de dinoflagelados no son peligrosas. Los destellos azulados visibles en el agua del océano por la noche a menudo provienen de floraciones de dinoflagelados bioluminiscentes , que emiten destellos cortos de luz cuando se les molesta.

Floración de algas ( akasio ) por Noctiluca spp. en Nagasaki

La marea roja se produce porque los dinoflagelados pueden reproducirse rápidamente y en abundancia como resultado de los abundantes nutrientes en el agua. Aunque las olas rojas resultantes son un fenómeno visual interesante, contienen toxinas que no solo afectan a toda la vida marina en el océano, sino también a las personas que las consumen. [75] Un portador específico son los mariscos . Estos pueden introducir enfermedades tanto no fatales como fatales. Uno de estos venenos es la saxitoxina , una potente neurotoxina paralizante . [76] [77] [78]

Los aportes humanos de fosfato fomentan aún más estas mareas rojas, por lo que existe un gran interés en aprender más sobre los dinoflagelados, tanto desde perspectivas médicas como económicas. Se sabe que los dinoflagelados son particularmente capaces de depurar el fósforo orgánico disuelto para obtener nutrientes P; se ha descubierto que varias especies de HAS son muy versátiles y se diversifican mecánicamente en el uso de diferentes tipos de DOP. [76] [77] [78] La ecología de las floraciones de algas nocivas se ha estudiado ampliamente. [79]

Bioluminiscencia

Imagen de larga exposición de la bioluminiscencia de N. scintillans en el puerto deportivo de Zeebrugge , Bélgica
Kayak en la Bahía Bioluminiscente , Vieques, Puerto Rico

Por la noche, el agua puede tener una apariencia de luz brillante debido a la bioluminiscencia de los dinoflagelados. [80] [81] Más de 18 géneros de dinoflagelados son bioluminiscentes, [82] y la mayoría de ellos emiten una luz azul verdosa. [83] Estas especies contienen centelleos , cuerpos citoplasmáticos individuales (de aproximadamente 0,5 μm de diámetro) distribuidos principalmente en la región cortical de la célula, bolsas de la vacuola celular principal. Contienen luciferasa de dinoflagelados , la principal enzima involucrada en la bioluminiscencia de los dinoflagelados, y luciferina , un anillo de tetrapirrol derivado de la clorofila que actúa como sustrato para la reacción productora de luz. La luminiscencia ocurre como un breve destello azul (0,1 s) (máximo 476 nm) cuando se estimula, generalmente por una perturbación mecánica. Por lo tanto, cuando se estimula mecánicamente (por un barco, nadando o con las olas, por ejemplo) se puede ver una luz azul brillante emanando de la superficie del mar. [84]

La bioluminiscencia de los dinoflagelados está controlada por un reloj circadiano y solo ocurre durante la noche. [85] En la misma especie pueden existir cepas luminiscentes y no luminiscentes. La cantidad de centelleos es mayor durante la noche que durante el día y se descompone al final de la noche, en el momento de máxima bioluminiscencia. [86]

La reacción luciferina-luciferasa responsable de la bioluminiscencia es sensible al pH. [84] Cuando el pH baja, la luciferasa cambia su forma, permitiendo que la luciferina, más específicamente el tetrapirrol, se una. [84] Los dinoflagelados pueden usar la bioluminiscencia como un mecanismo de defensa. Pueden asustar a sus depredadores con su luz intermitente o pueden alejar a los depredadores potenciales mediante un efecto indirecto como la "alarma antirrobo". La bioluminiscencia atrae la atención hacia el dinoflagelado y su atacante, haciendo que el depredador sea más vulnerable a la depredación de niveles tróficos superiores. [84]

Las bahías con ecosistemas de dinoflagelados bioluminiscentes se encuentran entre las más raras y frágiles, [87] siendo las más famosas la Bahía Bioluminiscente en La Parguera, Lajas , Puerto Rico; Mosquito Bay en Vieques, Puerto Rico ; y Las Cabezas de San Juan Reserva Natural Fajardo, Puerto Rico . Además, hay una laguna bioluminiscente cerca de Montego Bay, Jamaica, y puertos bioluminiscentes rodean Castine, Maine. [88] Dentro de los Estados Unidos, Florida Central alberga la Laguna Indian River , que abunda en dinoflagelados en el verano y ctenóforos bioluminiscentes en el invierno. [89]

Producción de lípidos y esteroles

Los dinoflagelados producen lípidos y esteroles característicos. [90] Uno de estos esteroles es típico de los dinoflagelados y se llama dinosterol .

Transporte

La teca dinoflagelada puede hundirse rápidamente hasta el fondo marino en la nieve marina . [91]

Ciclo vital

Introducción

Los dinoflagelados tienen un ciclo de vida haplóntico , con la posible excepción de Noctiluca y sus parientes. [5] El ciclo de vida generalmente implica reproducción asexual por medio de mitosis, ya sea a través de desmosquisis o eleuterosquisis . Se producen ciclos de vida más complejos, más particularmente con dinoflagelados parásitos. También ocurre la reproducción sexual, [92] aunque este modo de reproducción solo se conoce en un pequeño porcentaje de dinoflagelados. [93] Esto tiene lugar por la fusión de dos individuos para formar un cigoto , que puede permanecer móvil en la forma típica de los dinoflagelados y luego se llama planocigoto. Este cigoto puede formar más tarde una etapa de reposo o hipnocigoto , que se llama quiste de dinoflagelado o dinoquiste . Después (o antes) de la germinación del quiste, la cría experimenta meiosis para producir nuevas células haploides . Los dinoflagelados parecen ser capaces de llevar a cabo varios procesos de reparación del ADN que pueden abordar diferentes tipos de daño al ADN . [94]

Ciclo de vida de los dinoflagelados: 1-mitosis, 2-reproducción sexual, 3-planocigoto, 4-hipnocigoto, 5-planomeiocito
El ciclo de vida de los dinoflagelados, incluidas las posibles transiciones descritas  [95]

Quistes de dinoflagelados

El ciclo de vida de muchos dinoflagelados incluye al menos una etapa bentónica no flagelada, que es el quiste . Los diferentes tipos de quistes de dinoflagelados se definen principalmente en función de diferencias morfológicas (número y tipo de capas en la pared celular) y funcionales (resistencia a largo o corto plazo). Inicialmente se pensó que estas características diferenciaban claramente los quistes peliculares (de pared delgada) de los quistes de dinoflagelados en reposo (de pared doble). Los primeros se consideraban quistes de corto plazo (temporales) y los segundos de largo plazo (en reposo). Sin embargo, durante las últimas dos décadas, un mayor conocimiento ha puesto de relieve la gran complejidad de las historias de vida de los dinoflagelados. [95]

Quistes en reposo de Scripsiella sp. (a), Alexandrium pseudogoniaulax (b), Protoceratium reticulatum (c), A. taylori (d), A. tamarense (e), Protoperidinium oblongum (f), Kryptoperidinium triquetrum (g) y Gymnodinium catenatum (h). Barra de escala: 10 μm. [95]

Más del 10% de las aproximadamente 2000 especies conocidas de dinoflagelados marinos producen quistes como parte de su ciclo de vida (ver diagrama a la derecha). Estas fases bentónicas juegan un papel importante en la ecología de las especies, como parte de un vínculo planctónico-bentónico en el que los quistes permanecen en la capa de sedimento durante condiciones desfavorables para el crecimiento vegetativo y, desde allí, reinoculan la columna de agua cuando se restablecen las condiciones favorables. [95]

De hecho, durante la evolución de los dinoflagelados se cree que la necesidad de adaptarse a entornos fluctuantes y/o a la estacionalidad ha impulsado el desarrollo de esta etapa del ciclo de vida. La mayoría de los protistas forman quistes latentes para resistir la inanición y el daño de los rayos UV. [96] Sin embargo, existen enormes diferencias en las principales propiedades fenotípicas, fisiológicas y de resistencia de los quistes de cada especie de dinoflagelado. A diferencia de lo que ocurre en las plantas superiores, aún no se ha demostrado que la mayor parte de esta variabilidad, por ejemplo en los períodos de latencia , se atribuya a la adaptación a la latitud o dependa de otros rasgos del ciclo de vida. [97] [98] Por lo tanto, a pesar de los recientes avances en la comprensión de las historias de vida de muchas especies de dinoflagelados, incluido el papel de las etapas de quistes, aún quedan muchas lagunas en el conocimiento sobre su origen y funcionalidad. [95]

El reconocimiento de la capacidad de los dinoflagelados para enquistarse se remonta a principios del siglo XX, en estudios bioestratigráficos de quistes de dinoflagelados fósiles. Paul Reinsch fue el primero en identificar los quistes como los restos fosilizados de dinoflagelados. [99] Más tarde, se informó de la formación de quistes a partir de la fusión de gametos, lo que llevó a la conclusión de que el enquistamiento está asociado con la reproducción sexual. [92] Estas observaciones también dieron crédito a la idea de que el enquistamiento de microalgas es esencialmente un proceso por el cual los cigotos se preparan para un período de latencia. [100] Debido a que los quistes en reposo estudiados hasta ese momento provenían de procesos sexuales, la latencia se asoció con la sexualidad, una presunción que se mantuvo durante muchos años. Esta atribución coincidió con las teorías evolutivas sobre el origen de la fusión de células eucariotas y la sexualidad, que postulaban ventajas para las especies con etapas de reposo diploide, en su capacidad de soportar el estrés nutricional y la radiación UV mutacional a través de la reparación recombinacional, y para aquellas con etapas vegetativas haploides, ya que la división asexual duplica el número de células. [96] No obstante, ciertas condiciones ambientales pueden limitar las ventajas de la recombinación y la sexualidad, [101] de modo que en los hongos, por ejemplo, han evolucionado combinaciones complejas de ciclos haploides y diploides que incluyen etapas de reposo asexuales y sexuales. [102] [95]

Sin embargo, en el ciclo de vida general de los dinoflagelados productores de quistes, como se describió en los años 1960 y 1970, se asumió que los quistes en reposo eran el destino de la sexualidad, [92] [103] que en sí misma se consideraba una respuesta al estrés o condiciones desfavorables. La sexualidad implica la fusión de gametos haploides de etapas vegetativas planctónicas móviles para producir planocigotos diploides que eventualmente forman quistes, o hipnocigotos , cuya germinación está sujeta a controles tanto endógenos como exógenos . Endógenamente, un período mínimo de maduración fisiológica específico de la especie (latencia) es obligatorio antes de que pueda ocurrir la germinación. Por lo tanto, los hipnocigotos también fueron denominados quistes "en reposo" o "resistentes", en referencia a este rasgo fisiológico y su capacidad después de la latencia para permanecer viables en los sedimentos durante largos períodos de tiempo. Exógenamente, la germinación solo es posible dentro de una ventana de condiciones ambientales favorables. [95]

Sin embargo, con el descubrimiento de que los planocigotos también eran capaces de dividirse, se hizo evidente que la complejidad de los ciclos de vida de los dinoflagelados era mayor de lo que se pensaba originalmente. [104] [105] Tras la corroboración de este comportamiento en varias especies, la capacidad de las fases sexuales de los dinoflagelados para restaurar la fase vegetativa, evitando la formación de quistes, llegó a ser bien aceptada. [106] [107] Además, en 2006 Kremp y Parrow demostraron que los quistes de reposo latentes de los dinoflagelados de agua fría del Báltico Scrippsiella hangoei y Gymnodinium sp. se formaron por el enquistamiento directo de células vegetativas haploides, es decir, asexualmente. [108] Además, para los quistes cigóticos de Pfiesteria piscicida la latencia no era esencial. [109] [95]

Genómica

Una de las características más llamativas de los dinoflagelados es la gran cantidad de ADN celular que contienen. La mayoría de las algas eucariotas contienen en promedio alrededor de 0,54 pg de ADN/célula, mientras que las estimaciones del contenido de ADN de los dinoflagelados varían de 3 a 250 pg/célula [32] , lo que corresponde aproximadamente a 3000–215 000 Mb (en comparación, el genoma humano haploide es de 3180 Mb y el trigo Triticum hexaploide es de 16 000 Mb). La poliploidía o politenia puede explicar este gran contenido de ADN celular, [110] pero estudios anteriores de cinética de reasociación de ADN y análisis recientes del genoma no respaldan esta hipótesis. [111] Más bien, esto se ha atribuido, hipotéticamente, a la retroposición desenfrenada encontrada en los genomas de los dinoflagelados. [112] [113]

Además de sus genomas desproporcionadamente grandes, los núcleos de los dinoflagelados son únicos en su morfología, regulación y composición. Su ADN está tan compactado que aún no se sabe exactamente cuántos cromosomas tienen. [114]

Los dinoflagelados comparten una organización genómica mitocondrial inusual con sus parientes, los Apicomplexa . [115] Ambos grupos tienen genomas mitocondriales muy reducidos (alrededor de 6 kilobases (kb) en los Apicomplexa frente a ~16 kb para las mitocondrias humanas). Una especie, Amoebophrya ceratii , ha perdido su genoma mitocondrial por completo, pero todavía tiene mitocondrias funcionales. [116] Los genes de los genomas de los dinoflagelados han sufrido una serie de reorganizaciones, incluida la amplificación y recombinación masiva del genoma, que han dado lugar a múltiples copias de cada gen y fragmentos de genes unidos en numerosas combinaciones. Se ha producido la pérdida de los codones de parada estándar, el transempalme de los ARNm para el ARNm de cox3 y una extensa recodificación de la edición del ARN de la mayoría de los genes. [117] [118] Se desconocen las razones de esta transformación. En un pequeño grupo de dinoflagelados, llamados «dinotomos» (Durinskia y Kryptoperidinium), los endosimbiontes (diatomeas) todavía tienen mitocondrias, lo que los convierte en los únicos organismos con dos mitocondrias evolutivamente distintas. [119]

En la mayoría de las especies, el genoma del plástido consta de sólo 14 genes. [120]

El ADN del plástido en los dinoflagelados que contienen peridinina está contenido en una serie de pequeños círculos llamados minicírculos . [121] Cada círculo contiene uno o dos genes polipeptídicos. Los genes para estos polipéptidos son específicos del cloroplasto porque sus homólogos de otros eucariotas fotosintéticos están codificados exclusivamente en el genoma del cloroplasto. Dentro de cada círculo hay una región "central" distinguible. Los genes siempre están en la misma orientación con respecto a esta región central.

En términos de códigos de barras de ADN , las secuencias ITS se pueden utilizar para identificar especies, [122] donde una distancia genética de p≥0,04 se puede utilizar para delimitar especies, [123] lo que se ha aplicado con éxito para resolver confusiones taxonómicas de larga data como en el caso de la resolución del complejo Alexandrium tamarense en cinco especies. [124] Un estudio reciente [125] reveló que una proporción sustancial de genes de dinoflagelados codifican funciones desconocidas, y que estos genes podrían estar conservados y ser específicos del linaje.

Historia evolutiva

Los dinoflagelados están representados principalmente como fósiles por dinocistos , que tienen un largo registro geológico con ocurrencias más bajas durante el Triásico medio , [126] mientras que los marcadores geoquímicos sugieren una presencia en el Cámbrico temprano. [127] Algunas evidencias indican que los dinoesteroides en muchas rocas paleozoicas y precámbricas podrían ser el producto de dinoflagelados ancestrales (protodinoflagelados). [128] [129] Los dinoflagelados muestran una radiación clásica de morfologías durante el Triásico tardío hasta el Jurásico medio . [130] [131] [132] Las formas de aspecto más moderno proliferan durante el Jurásico tardío y el Cretácico . [130] Esta tendencia continúa en el Cenozoico , aunque con cierta pérdida de diversidad. [130] [126]

La filogenia molecular muestra que los dinoflagelados se agrupan con los ciliados y los apicomplejos (=esporozoos) en un clado bien sustentado, los alveolados . Los parientes más cercanos a los dinoflagelados dinocariotas parecen ser los apicomplejos , Perkinsus, Parvilucifera , los sindinos y Oxyrrhis . [133] Las filogenias moleculares son similares a las filogenias basadas en la morfología. [134] [135]

Las primeras etapas de la evolución de los dinoflagelados parecen estar dominadas por linajes parásitos, como los perkinsidos y los sindinios (por ejemplo, Amoebophrya y Hematodinium ). [136] [137] [138] [139]

Todos los dinoflagelados contienen plastidios de algas rojas u orgánulos remanentes (no fotosintéticos) de origen de algas rojas. [140] Sin embargo, el dinoflagelado parásito Hematodinium carece por completo de un plastidio. [141] Algunos grupos que han perdido las propiedades fotosintéticas de sus plastidios de algas rojas originales han obtenido nuevos plastidios fotosintéticos (cloroplastos) a través de la llamada endosimbiosis serial, tanto secundaria como terciaria. Al igual que sus plastidios originales, los nuevos cloroplastos en estos grupos se pueden rastrear hasta las algas rojas, excepto aquellos en los miembros del género Lepidodinium, que poseen plastidios derivados de algas verdes, posiblemente Trebouxiophyceae o Ulvophyceae . [142] [143] Los linajes con endosimbiosis terciaria son Dinophysis, con plástidos de una criptomonad , [144] Karenia , Karlodinium y Takayama , que poseen plástidos de origen haptofito , y Kryptoperidiniaceae, Durinskia y Kryptoperidinium , que tienen plástidos derivados de diatomeas [145] [146] Algunas especies también realizan cleptoplastia . [147]

La evolución de los dinoflagelados se ha resumido en cinco tipos organizativos principales: prorocentroide, dinofisoide, goniaulacoide, peridinioideo y gimnodinoideo. [148] Las transiciones de especies marinas a agua dulce han sido eventos frecuentes durante la diversificación de los dinoflagelados y han ocurrido recientemente. [149]

Muchos dinoflagelados también tienen una relación simbiótica con las cianobacterias, llamadas cianobiontes, que tienen un genoma reducido y no se han encontrado fuera de sus hospedadores. Los dinoflagelados dinofisoides tienen dos géneros, Amphisolenia y Triposolenia, que contienen cianobiontes intracelulares, y cuatro géneros; Citharistes, Histioneis, Parahistioneis y Ornithocercus, que contienen cianobiontes extracelulares. [150] La mayoría de los cianobiontes se utilizan para la fijación de nitrógeno, no para la fotosíntesis, pero algunos no tienen la capacidad de fijar nitrógeno. El dinoflagelado Ornithocercus magnificus es un hospedador de simbiontes que reside en una cámara extracelular. Si bien no se sabe completamente cómo se beneficia el dinoflagelado de esto, se ha sugerido que cultiva las cianobacterias en cámaras especializadas y digiere regularmente algunas de ellas. [151]

Recientemente, se encontró el fósil viviente Dapsilidinium pastielsii habitando la cuenca cálida del Indopacífico , que sirvió como refugio para dinoflagelados termófilos, [152] y otros como Calciodinellum operosum y Posoniella tricarinelloides también fueron descritos a partir de fósiles antes de ser encontrados vivos más tarde. [153] [154]

Ejemplos

Véase también

Referencias

  1. ^ Parfrey LW, Lahr DJ, Knoll AH, Katz LA (agosto de 2011). "Estimación del momento de la diversificación eucariota temprana con relojes moleculares multigénicos". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 108 (33): 13624–13629. Bibcode :2011PNAS..10813624P. doi : 10.1073/pnas.1110633108 . PMC  3158185 . PMID  21810989.
  2. ^ abc Gómez F (2012). "Lista de verificación y clasificación de los dinoflagelados vivos (Dinoflagellata, Alveolata)". CICIMAR Oceánides . 27 (1): 65–140. doi : 10.37543/oceanides.v27i1.111 .
  3. ^ Ruggiero MA, Gordon DP, Orrell TM, Bailly N, Bourgoin T, Brusca RC, et al. (2015). "Una clasificación de nivel superior de todos los organismos vivos". PLOS ONE . ​​10 (4): e0119248. Bibcode :2015PLoSO..1019248R. doi : 10.1371/journal.pone.0119248 . PMC 4418965 . PMID  25923521. 
  4. ^ Silar P (2016). "Protistes Eucaryotes: origen, evolución y biología de los microbios eucariotes". Archivos abiertos de HAL. Comunes creativos. págs. 1–462. ISBN 9782955584101. OCLC  1019558675. Archivado desde el original el 13 de mayo de 2016. Consultado el 4 de septiembre de 2016 .
  5. ^ abc Fensome RA, Taylor RJ, Norris G, Sarjeant WA, Wharton DI, Williams GL (1993). Una clasificación de dinoflagelados vivos y fósiles . Publicación especial sobre micropaleontología. Vol. 7. Hanover, PA: Sheridan Press. OCLC  263894965.
  6. ^ Stoecker DK (1999). "Mixotrofia entre dinoflagelados". Revista de microbiología eucariota . 46 (4): 397–401. doi :10.1111/j.1550-7408.1999.tb04619.x. S2CID  83885629.
  7. ^ Esser K, Lüttge U, Beyschlag W, Murata J (6 de diciembre de 2012). Progreso en botánica: genética, fisiología, sistemática, ecología. Springer. ISBN 978-3-6421-8819-0Archivado desde el original el 28 de enero de 2022. Consultado el 22 de octubre de 2020 .
  8. ^ Guiry MD (octubre de 2012). "¿Cuántas especies de algas existen?". Journal of Phycology . 48 (5): 1057–1063. Bibcode :2012JPcgy..48.1057G. doi :10.1111/j.1529-8817.2012.01222.x. PMID  27011267. S2CID  30911529.
  9. ^ Mertens KN, Rengefors K, Moestrup Ø, Ellegaard M (2012). "Una revisión de los quistes recientes de dinoflagelados de agua dulce: taxonomía, filogenia, ecología y paleocología". Phycologia . 51 (6): 612–619. Bibcode :2012Phyco..51..612M. doi :10.2216/11-89.1. S2CID  86845462.
  10. ^ Bravo I, Figueroa RI (enero de 2014). "Hacia una comprensión ecológica de las funciones de los quistes de dinoflagelados". Microorganismos . 2 (1): 11–32. doi : 10.3390/microorganisms2010011 . PMC 5029505 . PMID  27694774. 
  11. ^ Gómez F (2005). "Una lista de especies de dinoflagelados de vida libre en los océanos del mundo". Acta Botanica Croatica . 64 (1): 129–212.
  12. ^ Taylor FR, Hoppenrath M, Saldarriaga JF (febrero de 2008). "Diversidad y distribución de dinoflagelados". Biodivers. Conserv . 17 (2): 407–418. Bibcode :2008BiCon..17..407T. doi :10.1007/s10531-007-9258-3. S2CID  9810504.
  13. ^ Carty S, Parrow MW (2015). "Dinoflagelados". Algas de agua dulce de América del Norte . Prensa académica. págs. 773–807. doi :10.1016/B978-0-12-385876-4.00017-7. ISBN 978-0-12-385876-4.
  14. ^ Baker M (1753). Empleo del microscopio. Londres: Dodsley. doi :10.5962/bhl.title.45920. OCLC  722119426.
  15. ^ Müller, OF 1773. Vermium terrestrium et fluviatilium, seu Animalium Infusoriorum, Helmithicorum et Testaceorum, non marinorum, succincta historia, vol. 1. Pars prima. pag. 34, 135. Faber, Havniae y Lipsiae 1773.
  16. ^ Ehrenberg CG (1832) Beiträge zur Kenntnis der Organization der Infusorien und ihrer geographischer Verbreitung, besonders in Sibirien. — Abhandlungen der Königlichen Akademie der Wissenschaften zu Berlin. Aus dem Jahre 1830. Physikalische Abhandlungen 1830: 1–88, Pls 1–8.
  17. ^ Bütschli O. (1885) 3. Unterabtheilung (Ordnung) Dinoflagellata. – En: Klassen und Ordnungen des Thier-Reichs del Dr. HG Bronn, wissenschaftlich dargestellt in Wort und Bild. Protozoos de Erster Band. – CF Winter'sche Verlagshandlung, Leipzig y Heidelberg. Páginas. 906–1029; Pl.
  18. ^ Taylor FJR (marzo de 1975). "Flagelos transversales no helicoidales en dinoflagelados". Phycologia . 14 (1): 45–7. Bibcode :1975Phyco..14...45T. doi :10.2216/i0031-8884-14-1-45.1.
  19. ^ Leblond PH, Taylor FJ (abril de 1976). "Reconsideración del mecanismo propulsor del flagelo transversal de los dinoflagelados". Bio Systems . 8 (1): 33–39. Bibcode :1976BiSys...8...33L. doi :10.1016/0303-2647(76)90005-8. PMID  986199.
  20. ^ Gaines G, Taylor FJ (mayo de 1985). "Forma y función del flagelo transversal del dinoflagelado". J. Protozool . 32 (2): 290–6. doi :10.1111/j.1550-7408.1985.tb03053.x.
  21. ^ Morrill LC, Loeblich AR (1983). Ultraestructura del anfiesma dinoflagelado . Revista internacional de citología. Vol. 82. págs. 151–80. doi :10.1016/s0074-7696(08)60825-6. ISBN 978-0-1236-4482-4. Número de identificación personal  6684652.
  22. ^ ab Netzel H, Dürr G (2 de diciembre de 2012). Cap. 3: Corteza de células dinoflageladas. Prensa académica. págs. 43-106. ISBN 978-0-3231-3813-0Archivado desde el original el 7 de julio de 2014. Consultado el 5 de marzo de 2016 .En Spector 1984
  23. ^ ab Cavalier-Smith T (1991). "Diversificación celular en flagelados heterotróficos". En Patterson DJ, Larsen J (eds.). La biología de los flagelados heterotróficos de vida libre . Publicaciones de la Asociación Sistemática. Vol. 45. Clarendon Press. págs. 113–131. ISBN 978-0-1985-7747-8.
  24. ^ ab Freudenthal HD (1962). " Symbiodinium gen. Nov. y Symbiodinium microadriaticum sp. nov., una zooxantela: taxonomía, ciclo de vida y morfología". Revista de protozoología . 9 (1): 45–52. doi :10.1111/j.1550-7408.1962.tb02579.x.
  25. ^ Trench RK, Blank RJ (1987). " Symbiodinium microadriaticum Freudenthal, S. goreauii sp. nov., S. kawagutii sp. nov. y S. pilosum sp. nov.: simbiontes dinoflagelados gimnodinoides de invertebrados marinos". Revista de fisiología . 23 (3): 469–81. Código Bibliográfico :1987JPcgy..23..469T. doi :10.1111/j.1529-8817.1987.tb02534.x. S2CID  83712799.
  26. ^ Medlin LK, Fensome RA (2013). "Macroevolución de los dinoflagelados". Perspectivas biológicas y geológicas de los dinoflagelados . Sociedad Geológica de Londres. págs. 263-274. doi :10.1144/tms5.25. ISBN. 978-1-86239-368-4.
  27. ^ Keeling PJ (marzo de 2010). "El origen endosimbiótico, la diversificación y el destino de los plástidos". Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Serie B, Ciencias Biológicas . 365 (1541): 729–748. doi :10.1098/rstb.2009.0103. PMC 2817223 . PMID  20124341. 
  28. ^ Hackett JD, Anderson DM, Erdner DL, Bhattacharya D (octubre de 2004). "Dinoflagelados: un notable experimento evolutivo". American Journal of Botany . 91 (10): 1523–1534. doi :10.3732/ajb.91.10.1523. PMID  21652307.
  29. ^ Schwab IR (septiembre de 2004). "Eres lo que comes". The British Journal of Ophthalmology . 88 (9): 1113. doi :10.1136/bjo.2004.049510. PMC 1772300 . PMID  15352316. 
  30. ^ Tappan HN (1980). La paleobiología de los protistas vegetales . Geología. WH Freeman. ISBN 978-0-7167-1109-4.
  31. ^ Gornik SG, Ford KL, Mulhern TD, Bacic A, McFadden GI, Waller RF (diciembre de 2012). "La pérdida de la condensación del ADN nucleosómico coincide con la aparición de una nueva proteína nuclear en dinoflagelados". Current Biology . 22 (24): 2303–2312. Bibcode :2012CBio...22.2303G. doi : 10.1016/j.cub.2012.10.036 . PMID  23159597.
  32. ^ ab Spector DL ​​(2012-12-02). Núcleos de dinoflagelados. Academic Press. pp. 107–147. ISBN 978-0-3231-3813-0Archivado desde el original el 7 de julio de 2014. Consultado el 5 de marzo de 2016 .En Spector 1984
  33. ^ Strassert JF, Karnkowska A, Hehenberger E, Del Campo J, Kolisko M, Okamoto N, et al. (enero de 2018). "La genómica unicelular de alveolados marinos no cultivados muestra la parafilia de los dinoflagelados basales". The ISME Journal (manuscrito enviado). 12 (1): 304–308. Bibcode :2018ISMEJ..12..304S. doi :10.1038/ismej.2017.167. PMC 5739020 . PMID  28994824. Archivado desde el original el 2018-12-14 . Consultado el 2018-10-23 . 
  34. ^ Gabrielsen TM, Minge MA, Espelund M, Tooming-Klunderud A, Patil V, Nederbragt AJ, et al. (Abril de 2011). "Evolución del genoma de un plastidio dinoflagelado terciario". MÁS UNO . 6 (4): e19132. Código Bib : 2011PLoSO...619132G. doi : 10.1371/journal.pone.0019132 . PMC 3082547 . PMID  21541332. 
  35. ^ Bodył A, Moszczyński K (2006). "¿Evolucionó el plástido de peridinina a través de la endosimbiosis terciaria? Una hipótesis". Revista Europea de Ficología . 41 (4): 435–448. Código Bibliográfico :2006EJPhy..41..435B. doi : 10.1080/09670260600961080 .
  36. ^ Dodge (1966). Citado pero no referenciado en Steidinger KA, Jangen K (1997). "Dinoflagellates". En Tomas CR (ed.). Identificación del fitoplancton marino . Academic Press. págs. 387–584. ISBN 978-0-0805-3442-8Archivado desde el original el 7 de julio de 2014. Consultado el 5 de marzo de 2016 .
  37. ^ Steidinger KA, Jangen K (1997). "Dinoflagelados". En Tomás CR (ed.). Identificación del fitoplancton marino . Prensa académica. págs. 387–584. ISBN 978-0-0805-3442-8Archivado desde el original el 7 de julio de 2014. Consultado el 5 de marzo de 2016 .
  38. ^ Schiller, J., 1931-1937: Dinoflagellatae (Peridinineae) en monographischer Behandlung. En: RABENHORST, L. (ed.), Kryptogamen-Flora von Deutschland, Österreichs und der Schweiz. Akád. Verlag., Leipzig. vol. 10 (3): Parte 1 (1–3) (1931–1933): Parte 2 (1–4)(1935–1937).
  39. ^ Surnia A (1973). "Catalogue des espèces et taxons infraspécifiques de dinoflagellés marins actuels publiés depuis la révision de J. Schiller. I. Dinoflagellés libres". Beih. Nueva Hedwigia . 48 : 1–92.
  40. ^ Surnia A (1978). "Catalogue des espèces et taxons infraspécifiques de dinoflagellésmarins actuels publiés depuis la révision de J. Schiller. III (Complément)". Reverendo Algol . 13 : 3–40 + errata 13, 186. ISSN  0035-0702.
  41. ^ Surnia A (1982). "Catalogue des espèces et taxons infraspécifiques de dinoflagellésmarins actuels publiés depuis la révision de J. Schiller. IV. (Complément)". Arco. Protistenkd . 126 (2): 151-168. doi :10.1016/S0003-9365(82)80046-8.
  42. ^ Surnia A (1990). "Catalogue des espèces et taxons infraspécifiques de dinoflagellésmarins actuels publiés depuis la révision de J. Schiller. V. (Complément)". Acta Protozool . 29 : 321–346. ISSN  0065-1583.
  43. ^ Surnia A (1993). "Catalogue des espèces et taxons infraspécifiques de dinoflagellésmarins actuels publiés depuis la révision de J. Schiller. VI. (Complément)". Criptog. Algol . 14 : 133-144. doi : 10.5962/p.309374. ISSN  0181-1568.
  44. ^ SOURNIA, A., 1986: Atlas du Phytoplancton Marin. vol. I: Introducción, Cyanophycées,Dictyochophycées, Dinophycées et Raphidophycées. Ediciones del CNRS, París.
  45. ^ Steidinger KA, Williams J (1970). Dinoflagelados . Memorias de los cruceros Hourglass. Vol. 2. Florida: Laboratorio de investigación marina. OCLC  6206528.
  46. ^ Taylor FJ, Hart-Jones B (1976). Dinoflagelados de la expedición internacional al océano Índico: un informe sobre el material recopilado por el RV "Anton Bruun" 1963-1964 . Biblioteca Botanica. Vol. 132. E. Schweizerbart. ISBN 978-3-5104-8003-6.OCLC 3026853  .
  47. ^ Dodge JD (1982). Dinoflagelados marinos de las Islas Británicas. Londres: Her Majesty's Stationery Office. ISBN 9780112411963.OCLC 681855348  .
  48. ^ Gómez F (abril de 2003). "Lista de dinoflagelados de vida libre mediterráneos". Botanica Marina . 46 (3): 215–242. doi :10.1515/BOT.2003.021. S2CID  84744638.
  49. ^ Hoppenrath M, Elbrächter M, Drebes G (2009). Fitoplancton marino: especies de microfitoplancton seleccionadas del Mar del Norte alrededor de Helgoland y Sylt . Stuttgart: E. Schweizerbart'sche Verlagsbuchhandlung (Nägele und Obermiller). ISBN 978-3-5106-1392-2.
  50. ^ Popovský J, Pfiester LA (1990). Dinofíceas (Dinoflagellida). Süßwasserflora von Mitteleuropa. vol. 6. Fischer. ISBN 978-3-3340-0247-6.[ enlace muerto permanente ]
  51. ^ Fritz L, Triemer R (diciembre de 1985). "Una técnica rápida y sencilla que utiliza blanco de calcoflúor M2R para la visualización de placas tecales de dinoflagelados". J. Phycol . 21 (4): 662–664. Bibcode :1985JPcgy..21..662F. doi :10.1111/j.0022-3646.1985.00662.x. S2CID  85004940.
  52. ^ Freudenthal y otros, 2007
  53. ^ Trench RK (1997). "Diversidad de dinoflagelados simbióticos y la evolución de simbiosis entre microalgas e invertebrados". En Lessios HA, MacIntyre IG (eds.). Actas del octavo Simposio Internacional sobre Arrecifes de Coral, Panamá, 24-29 de junio de 1996. Vol. 2. Balboa, Panamá: Instituto Smithsonian de Investigaciones Tropicales. págs. 1275-86. OCLC  833272061.
  54. ^ Schnepf E, Elbrächter M (febrero de 1992). "Estrategias nutricionales en dinoflagelados: una revisión con énfasis en los aspectos biológicos celulares". Revista Europea de Protistología . 28 (1): 3–24. doi :10.1016/S0932-4739(11)80315-9. PMID  23194978.
  55. ^ Kofoid CA, Swezy O (1921). "Los dinoflagelados de vida libre y sin armadura". Mere. Univ. Calif . 5 : 1–538. doi :10.5962/bhl.title.24995. Archivado (PDF) desde el original el 2022-05-15 . Consultado el 2019-09-24 .
  56. ^ ab Barker HA (1935). "La cultura y fisiología de los dinoflagelados marinos". Arch. Mikrobiol . 6 (1–5): 157–181. Código Bibliográfico :1935ArMic...6..157B. doi :10.1007/BF00407285. S2CID  44657010.
  57. ^ Biecheler B (1952). "Recherches sur les Peridiniens". Toro. Biol. P. Belga . 36 (suplementario): 1–149. ISSN  0994-575X.
  58. ^ ab Bursa AS (1961). "El ciclo oceanográfico anual en Igloolik en el Ártico canadiense. II. El fitoplancton". J. Fish. Res. Board Can . 18 (4): 563–615. doi :10.1139/f61-046.
  59. ^ Norris DR (1969). "Posible alimentación fagotrófica en Ceratium lunula Schimper". Limnol. Oceanogr . 14 (3): 448–9. Código bibliográfico : 1969LimOc..14..448N. doi : 10.4319/lo.1969.14.3.0448 .
  60. ^ ab Dodge JD, Crawford RM (junio de 1970). "La morfología y la estructura fina de Ceratium hirundinella (Dinophyceae)". J. Phycol . 6 (2): 137–149. Bibcode :1970JPcgy...6..137D. doi :10.1111/j.1529-8817.1970.tb02372.x. S2CID  84034844.
  61. ^ Elbrachter M (1979). "Sobre la taxonomía de los dinófitos no blindados (Dinophyta) de la región de afloramiento del noroeste de África". Meteor Forschungsergebnisse . 30 : 1–22.
  62. ^ Frey LC, Stoermer EF (1980). "Fagotrofia de dinoflagelados en los Grandes Lagos superiores". Trans. Am. Microsc. Soc . 99 (4): 439–444. doi :10.2307/3225654. JSTOR  3225654.
  63. ^ Cachon PJ, Cachon M. "Le systeme stomatopharyngien de Kofoidinium Pavillard. Comparaciones con celui divers Peridiniens fibras y parásitos". Protistológica . 10 : 217–222.
  64. ^ Gaines G, Taylor FJ (1984). "Digestión extracelular en dinoflagelados marinos". J. Plankton Res . 6 (6): 1057–61. doi :10.1093/plankt/6.6.1057.
  65. ^ ab Jacobson DM, Anderson DM (septiembre de 1986). "Dinoflagelados heterótrofos teca: mecanismos y comportamiento de alimentación". J. Phycol . 22 (3): 249–258. doi :10.1111/j.1529-8817.1986.tb00021.x. S2CID  84321400.
  66. ^ Strom SL, Buskey EJ (1993). "Alimentación, crecimiento y comportamiento del dinoflagelado heterótrofo teca Oblea rotunda". Limnol. Oceanogr . 38 (5): 965–977. Código bibliográfico : 1993LimOc..38..965S. doi : 10.4319/lo.1993.38.5.0965 .
  67. ^ Naustvoll LJ (enero de 1998). "Crecimiento y pastoreo por parte de los dinoflagelados heterotróficos tecate Diplopsalis lenticula (Diplopsalidaceae, Dinophyceae)". Phycologia . 37 (1): 1–9. Bibcode :1998Phyco..37....1N. doi :10.2216/i0031-8884-37-1-1.1.
  68. ^ Spero HJ (septiembre de 1982). "Fagotrofia en Gymnodinium fungiforme (Pyrrophyta): el pedúnculo como organelo de ingestión". J. Phycol . 18 (3): 356–360. Bibcode :1982JPcgy..18..356S. doi :10.1111/j.1529-8817.1982.tb03196.x. S2CID  85988790.
  69. ^ "Investigadores capturan en video a un dinoflagelado disparando arpones a sus presas". Archivado desde el original el 28 de diciembre de 2019. Consultado el 19 de mayo de 2019 .
  70. ^ Adolf JE, Krupatkina D, Bachvaroff T, Place AR (2007). "Karlotoxin media el pastoreo de Oxyrrhis marina en cepas de Karlodinium veneficum ". Harmful Algae . 6 (3): 400–412. Bibcode :2007HAlga...6..400A. doi :10.1016/j.hal.2006.12.003.
  71. ^ Berge T, Poulsen LK, Moldrup M, Daugbjerg N, Juel Hansen P (octubre de 2012). "Las microalgas marinas atacan y se alimentan de metazoos". La Revista ISME . 6 (10): 1926-1936. Código Bib : 2012ISMEJ...6.1926B. doi :10.1038/ismej.2012.29. PMC 3446796 . PMID  22513533. 
  72. ^ Schütt F (1895). "2. Teil, Studien über die Zellen der Peridineen". Die Peridineen der Plankton-Expedition . Ergebnisse der Plankton-Expedition der Humboldt-Stiftung. Allgemeiner Theil. págs. 1–170. OCLC  69377189.
  73. ^ Smayda TJ (2002). "Ecología adaptativa, estrategias de crecimiento y expansión global de la floración de dinoflagelados". Revista de Oceanografía . 58 (2): 281–294. Bibcode :2002JOce...58..281S. doi :10.1023/A:1015861725470. ISSN  0916-8370. S2CID  55024118.
  74. ^ Huntley M, Sykes P, Rohan S, Marin V (1986). "Rechazo de presas dinoflageladas mediado químicamente por los copépodos Calanus pacificus y Paracalanus parvus: mecanismo, ocurrencia y significado". Marine Ecology Progress Series . 28 : 105–120. Bibcode :1986MEPS...28..105H. doi : 10.3354/meps028105 .
  75. ^ Faust M, Gulledge, RA (2002). Identificación de dinoflagelados marinos nocivos. Contribuciones del Herbario Nacional de los Estados Unidos. Vol. 42. Washington, DC: Departamento de Biología Sistemática, Botánica, Museo Nacional de Historia Natural. ISSN  0097-1618. Archivado desde el original el 2007-04-30 . Consultado el 2007-05-18 .
  76. ^ ab Lin S, Litaker RW, Sunda WG (febrero de 2016). "Ecología fisiológica del fósforo y mecanismos moleculares en el fitoplancton marino". Journal of Phycology . 52 (1): 10–36. Bibcode :2016JPcgy..52...10L. doi :10.1111/jpy.12365. PMID  26987085. S2CID  206147416.
  77. ^ ab Zhang C, Luo H, Huang L, Lin S (julio de 2017). "Mecanismo molecular de la utilización de glucosa-6-fosfato en el dinoflagelado Karenia mikimotoi". Harmful Algae . 67 : 74–84. Bibcode :2017HAlga..67...74Z. doi :10.1016/j.hal.2017.06.006. PMID  28755722.
  78. ^ ab Luo H, Lin X, Li L, Lin L, Zhang C, Lin S (noviembre de 2017). "Los análisis transcriptómicos y fisiológicos del dinoflagelado Karenia mikimotoi revelan una maquinaria molecular de utilización de ATP basada en fosfatasa no alcalina". Microbiología ambiental . 19 (11): 4506–4518. Bibcode :2017EnvMi..19.4506L. doi : 10.1111/1462-2920.13899 . PMID  28856827. S2CID  3598741.
  79. ^ Granéli E, Turner JT (2007). Ecología de algas nocivas. Estudios ecológicos: análisis y síntesis. Vol. 189. Springer. ISBN 978-3-5407-4009-4. ISSN  0070-8356. Archivado desde el original el 7 de julio de 2014. Consultado el 5 de marzo de 2016 .
  80. ^ Castro P, Huber ME (2010). Biología marina (8.ª ed.). McGraw Hill. pág. 95. ISBN 978-0-0711-1302-1.
  81. ^ Hastings JW (1996). "Químicas y colores de las reacciones bioluminiscentes: una revisión". Gene . 173 (1 Spec No): 5–11. doi :10.1016/0378-1119(95)00676-1. PMID  8707056.
  82. ^ Poupin, J., A.-S. Cussatlegras y P. Geistdoerfer. 1999. Plancton marin bioluminiscente. Rapport scientifique du Laboratoire d'Océanographie de l'École Navale LOEN, Brest, Francia, 83 págs.
  83. ^ Sweeney B. Bioluminiscencia y ritmos circadianos .En: Taylor 1987, págs. 269–281
  84. ^ abcd Haddock SH, Moline MA, Case JF (1 de octubre de 2009). "Bioluminiscencia en el mar". Revista anual de ciencias marinas . 2 : 443–493. Bibcode :2010ARMS....2..443H. doi :10.1146/annurev-marine-120308-081028. PMID  21141672. S2CID  3872860.
  85. ^ Knaust R, Urbig T, Li L, Taylor W, Hastings JW (febrero de 1998). "El ritmo circadiano de la bioluminiscencia en Pyrocystis no se debe a diferencias en la cantidad de luciferasa: un estudio comparativo de tres dinoflagelados marinos bioluminiscentes". J. Phycol . 34 (1): 167–172. Bibcode :1998JPcgy..34..167K. doi :10.1046/j.1529-8817.1998.340167.x. S2CID  84990824.
  86. ^ Fritz L, Morse D, Hastings JW (febrero de 1990). "El ritmo circadiano de bioluminiscencia de Gonyaulax está relacionado con las variaciones diarias en el número de orgánulos emisores de luz". Journal of Cell Science . 95 (Pt 2): 321–328. doi :10.1242/jcs.95.2.321. PMID  2196272.
  87. ^ Dybas CL (mayo de 2012). "Bright Microbes—Scientists uncover new clues to bioluminescence" (Microbios brillantes: los científicos descubren nuevas pistas sobre la bioluminiscencia). Scientific American . 360 (5): 19. Bibcode :2012SciAm.306e..19D. doi :10.1038/scientificamerican0512-19.
  88. ^ Castine Kayak (2015). "Excursión nocturna en kayak por la bahía bioluminiscente de Castine Kayak". visitmaine.com . Archivado desde el original el 2 de julio de 2015. Consultado el 1 de julio de 2015 .
  89. ^ Kennedy Duckett M (10 de febrero de 2015). «Florida por agua: experimente la bioluminiscencia». National Geographic Society . Archivado desde el original el 31 de julio de 2018. Consultado el 31 de julio de 2018 .
  90. ^ Withers N. Esteroles dinoflagelados .En: Taylor 1987, págs. 316–359
  91. ^ Alldredge AL, Passow U, Haddock SH (1998). "Características y contenido de partículas de exopolímero transparente (TEP) de la nieve marina formada a partir de dinoflagelados tecate". J. Plankton Res . 20 (3): 393–406. doi : 10.1093/plankt/20.3.393 .
  92. ^ abc von Stosch HA (1973). "Observaciones sobre la reproducción vegetativa y los ciclos de vida sexual de dos dinoflagelados de agua dulce, Gymnodinium pseudopalustre Schiller y Woloszynskia apiculata sp. nov". British Phycological Journal . 8 (2): 105–34. doi :10.1080/00071617300650141. Archivado desde el original el 13 de febrero de 2019 . Consultado el 13 de mayo de 2014 .
  93. ^ Pfiester, Anderson (1987). "Cap. 14" . En Taylor F (ed.). La biología de los dinoflagelados . Monografías botánicas. Vol. 21. Blackwell Scientific. ISBN. 978-0-6320-0915-2.
  94. ^ Li C, Wong JT (julio de 2019). "Vías de respuesta al daño del ADN en dinoflagelados". Microorganismos . 7 (7): 191. doi : 10.3390/microorganisms7070191 . PMC 6680887 . PMID  31284474. 
  95. ^ abcdefgh Bravo I, Figueroa RI (enero de 2014). "Hacia una comprensión ecológica de las funciones de los quistes de dinoflagelados". Microorganismos . 2 (1): 11–32. doi : 10.3390/microorganisms2010011 . PMC 5029505 . PMID  27694774.  El material fue copiado de esta fuente, que está disponible bajo una Licencia Creative Commons Atribución 3.0 Internacional Archivada el 23 de febrero de 2011 en Wayback Machine .
  96. ^ ab Cavalier-Smith T (febrero de 2002). "Orígenes de la maquinaria de recombinación y sexo". Heredity . 88 (2): 125–141. doi : 10.1038/sj.hdy.6800034 . PMID  11932771. S2CID  13213957.
  97. ^ Wagmann K, Hautekèete NC, Piquot Y, Meunier C, Schmitt SE, Van Dijk H (noviembre de 2012). "Distribución de la latencia de las semillas: factores ecológicos explicativos". Anales de botánica . 110 (6): 1205-1219. doi : 10.1093/aob/mcs194. PMC 3478053 . PMID  22952378. 
  98. ^ Debieu M, Tang C, Stich B, Sikosek T, Effgen S, Josephs E, et al. (2013). "Covariación entre la latencia de las semillas, la tasa de crecimiento y los cambios en el tiempo de floración con la latitud en Arabidopsis thaliana". PLOS ONE . ​​8 (5): e61075. Bibcode :2013PLoSO...861075D. doi : 10.1371/journal.pone.0061075 . PMC 3662791 . PMID  23717385. 
  99. ^ Reinsch, PF (1905) "Die palinosphärien, ein mikroskopischer vegetabile organismosus in der mukronatenkreide". ..Centavo. Minero. Geol. Paleontolio..., 402–407.
  100. ^ Loeblich A, Loeblich L (2012) [1984]. "Quistes de dinoflagelados". En Spector D (ed.). Dinoflagelados . Academic Press. págs. 444–474. ISBN 978-0-323-13813-0.
  101. ^ Lenormand T, Otto SP (septiembre de 2000). "La evolución de la recombinación en un entorno heterogéneo". Genética . 156 (1): 423–438. doi :10.1093/genetics/156.1.423. PMC 1461255 . PMID  10978305. 
  102. ^ Lee SC, Ni M, Li W, Shertz C, Heitman J (junio de 2010). "La evolución del sexo: una perspectiva desde el reino fúngico". Microbiology and Molecular Biology Reviews . 74 (2): 298–340. doi :10.1128/MMBR.00005-10. PMC 2884414 . PMID  20508251. 
  103. ^ Anderson DM, Wall D (1978). "Importancia potencial de los quistes bentónicos de Gonyaulax Tamarensis y G. Excavata en el inicio de floraciones tóxicas de dinoflagelados1, 2, 3". Revista de fisiología . 14 (2): 224–234. Código Bibliográfico :1978JPcgy..14..224A. doi :10.1111/j.1529-8817.1978.tb02452.x. S2CID  85372383.
  104. ^ Uchida T, Yoshikawa K, Arai A, Arai S (1991). "Ciclo de vida y su control de Sargassum muticum (Phaeophyta) en cultivos por lotes". Nippon Suisan Gakkaishi . 57 (12): 2249–2253. doi : 10.2331/suisan.57.2249 .
  105. ^ Uchida T, Matsuyama Y, Yamaguchi M, Honjo T (1996). "El ciclo de vida de Gyrodinium instriatum (Dinophyceae) en cultivo". Phycological Research . 44 (3): 119–123. doi :10.1111/j.1440-1835.1996.tb00040.x. S2CID  84051080.
  106. ^ Figueroa RI, Bravo I (2005). "Reproducción sexual y dos estrategias de enquistamiento diferentes de Lingulodinium Polyedrum (Dinophyceae) en cultivo1". Revista de Ficología . 41 (2): 370–379. Bibcode :2005JPcgy..41..370F. doi :10.1111/j.1529-8817.2005.04150.x. hdl : 10508/11133 . S2CID  85652450.
  107. ^ Figueroa RI, Bravo I, Garcés E (2006). "Múltiples rutas de sexualidad en Alexandrium Taylori (Dinophyceae) en la cultura". Revista de Ficología . 42 (5): 1028-1039. Código Bib : 2006JPcgy..42.1028F. doi :10.1111/j.1529-8817.2006.00262.x. S2CID  85188678.
  108. ^ Kremp A, Parrow MW (2006). "Evidencia de quistes asexuales en reposo en el ciclo de vida del dinoflagelado peridinoide marino, Scrippsiella Hangoei1". Journal of Phycology . 42 (2): 400–409. Bibcode :2006JPcgy..42..400K. doi :10.1111/j.1529-8817.2006.00205.x. S2CID  84228384.
  109. ^ Parrow MW, Burkholder JM (2004). "Los ciclos de vida sexual de Pfiesteria Piscicida y Cryptoperidinopsoids (Dinophyceae)1". Revista de Ficología . 40 (4): 664–673. Código Bibliográfico :2004JPcgy..40..664P. doi :10.1111/j.1529-8817.2004.03202.x. S2CID  83695348.
  110. ^ Beam CA, Himes M (2 de diciembre de 2012). Cap. 8: Genética de los dinoflagelados. Academic Press. págs. 263–298. ISBN 978-0-3231-3813-0Archivado desde el original el 7 de julio de 2014. Consultado el 5 de marzo de 2016 .En Spector 1984
  111. ^ Lin S, Cheng S, Song B, Zhong X, Lin X, Li W, et al. (noviembre de 2015). "El genoma de Symbiodinium kawagutii ilumina la expresión génica de los dinoflagelados y la simbiosis de los corales". Science . 350 (6261): 691–694. Bibcode :2015Sci...350..691L. doi : 10.1126/science.aad0408 . PMID  26542574.
  112. ^ Song B, Morse D, Song Y, Fu Y, Lin X, Wang W, et al. (agosto de 2017). "La genómica comparativa revela dos episodios importantes de retroposición genética que coinciden con períodos cruciales de la evolución de Symbiodinium". Genome Biology and Evolution . 9 (8): 2037–2047. doi :10.1093/gbe/evx144. PMC 5585692 . PMID  28903461. 
  113. ^ Hou Y, Ji N, Zhang H, Shi X, Han H, Lin S (febrero de 2019). "Número de copias del gen pcna dependiente del tamaño del genoma en dinoflagelados y evidencia molecular de la retroposición como un mecanismo evolutivo importante". Journal of Phycology . 55 (1): 37–46. Bibcode :2019JPcgy..55...37H. doi : 10.1111/jpy.12815 . PMID  30468510.
  114. ^ Universidad de Queensland (13 de mayo de 2019). «Comprender las rupturas de relaciones para proteger el arrecife». ScienceDaily . Archivado desde el original el 13 de mayo de 2019. Consultado el 16 de mayo de 2019 .
  115. ^ Jackson CJ, Gornik SG, Waller RF (2012). "El genoma mitocondrial y el transcriptoma del dinoflagelado basal Hematodinium sp.: evolución de caracteres dentro de los genomas mitocondriales altamente derivados de dinoflagelados". Genome Biology and Evolution . 4 (1): 59–72. doi :10.1093/gbe/evr122. PMC 3268668 . PMID  22113794. 
  116. ^ John U, Lu Y, Wohlrab S, Groth M, Janouškovec J, Kohli GS, et al. (abril de 2019). "Un parásito eucariota aeróbico con mitocondrias funcionales que probablemente carece de un genoma mitocondrial". Science Advances . 5 (4): eaav1110. Bibcode :2019SciA....5.1110J. doi :10.1126/sciadv.aav1110. PMC 6482013 . PMID  31032404. 
  117. ^ Lin S, Zhang H, Spencer DF, Norman JE, Gray MW (julio de 2002). "Edición generalizada y extensa de ARNm mitocondriales en dinoflagelados". Journal of Molecular Biology . 320 (4): 727–739. doi :10.1016/S0022-2836(02)00468-0. PMID  12095251.
  118. ^ Lin S, Zhang H, Gray MW (2008). "Edición de ARN en dinoflagelados y sus implicaciones para la historia evolutiva de la maquinaria de edición". En Smith H (ed.). Edición de ARN y ADN: mecanismos moleculares y su integración en sistemas biológicos . Wiley. págs. 280–309. ISBN 978-0-470-26225-2.
  119. ^ Imanian B, Pombert JF, Dorrell RG, Burki F, Keeling PJ (2012). "La endosimbiosis terciaria en dos dinotomos ha generado pocos cambios en los genomas mitocondriales de sus huéspedes dinoflagelados y endosimbiontes diatomeas". PLOS ONE . ​​7 (8): e43763. Bibcode :2012PLoSO...743763I. doi : 10.1371/journal.pone.0043763 . PMC 3423374 . PMID  22916303. 
  120. ^ Das B (2019). "Un parásito marino sobrevive sin genes clave". Nature Middle East . doi :10.1038/nmiddleeast.2019.63. S2CID  149458671.
  121. ^ Laatsch T, Zauner S, Stoebe-Maier B, Kowallik KV, Maier UG (julio de 2004). "Los minicírculos de un solo gen derivados de plástidos del dinoflagelado Ceratium horridum se localizan en el núcleo". Biología molecular y evolución . 21 (7): 1318–1322. doi : 10.1093/molbev/msh127 . PMID  15034134.
  122. ^ Stern RF, Andersen RA, Jameson I, Küpper FC, Coffroth MA , Vaulot D, et al. (2012). "Evaluación del espaciador transcrito interno ribosomal (ITS) como candidato a marcador de código de barras de dinoflagelados". PLOS ONE . ​​7 (8): e42780. Bibcode :2012PLoSO...742780S. doi : 10.1371/journal.pone.0042780 . PMC 3420951 . PMID  22916158. 
  123. ^ Litaker RW, Vandersea MW, Kibler SR, Reece KS, Stokes NA, Lutzoni FM, et al. (abril de 2007). "Reconocimiento de especies de dinoflagelados mediante secuencias de ADNr de ITS". J. Phycol . 43 (2): 344–355. Bibcode :2007JPcgy..43..344W. doi :10.1111/j.1529-8817.2007.00320.x. S2CID  85929661.
  124. ^ Wang L, Zhuang Y, Zhang H, Lin X, Lin S (enero de 2014). "Codificación de ADN de especies en el complejo Alexandrium tamarense mediante ITS y propuesta de designación de cinco especies". Harmful Algae . 31 : 100–113. Bibcode :2014HAlga..31..100W. doi :10.1016/j.hal.2013.10.013. PMID  28040099.
  125. ^ Stephens TG, Ragan MA, Bhattacharya D, Chan CX (noviembre de 2018). "Los genes centrales en diversos linajes de dinoflagelados incluyen una gran cantidad de genes oscuros conservados con funciones desconocidas". Scientific Reports . 8 (1): 17175. Bibcode :2018NatSR...817175S. doi :10.1038/s41598-018-35620-z. PMC 6249206 . PMID  30464192. 
  126. ^ ab MacRae RA, Fensome RA, Williams GL (1996). "Diversidad, orígenes y extinciones de dinoflagelados fósiles y su importancia". Can. J. Bot . 74 (11): 1687–94. doi :10.1139/b96-205. ISSN  0008-4026.
  127. ^ Moldowan JM, Talyzina NM (agosto de 1998). "Evidencia biogeoquímica de ancestros dinoflagelados en el Cámbrico temprano". Science . 281 (5380): 1168–1170. Bibcode :1998Sci...281.1168M. doi :10.1126/science.281.5380.1168. PMID  9712575.
  128. ^ Moldowan JM, Dahl JE, Jacobson SR, Huizinga BJ, Fago FJ, Shetty R, et al. (febrero de 1996). "Reconstrucción quimioestratigráfica de biofacies: evidencia molecular que vincula a los dinoflagelados formadores de quistes con ancestros pretriásicos". Geología . 24 (2): 159–162. Bibcode :1996Geo....24..159M. doi :10.1130/0091-7613(1996)024<0159:CROBME>2.3.CO;2.
  129. ^ Talyzina NM, Moldowan JM, Johannisson A, Fago FJ (enero de 2000). "Afinidades de los acritarcos del Cámbrico temprano estudiadas mediante microscopía, citometría de flujo de fluorescencia y biomarcadores". Rev. Palaeobot. Palynol . 108 (1–2): 37–53. Bibcode :2000RPaPa.108...37T. doi :10.1016/S0034-6667(99)00032-9.
  130. ^ abc Fensome R (8 de junio de 2022). "Dinoflagelados". AASP-The Palynological Society .[ enlace muerto permanente ]
  131. ^ Fensome RA, MacRae RA, Moldowan JM, Taylor FJ, Williams GL (1996). "La radiación mesozoica temprana de los dinoflagelados". Paleobiología . 22 (3): 329–338. Bibcode :1996Pbio...22..329F. doi :10.1017/S0094837300016316. ISSN  0094-8373. JSTOR  2401092. S2CID  133043109.
  132. ^ Chacón J, Gottschling M (julio de 2020). "El amanecer de los dinófitos: un primer intento de datar el origen y la diversificación de las algas nocivas". Harmful Algae . 97 : 101871. Bibcode :2020HAlga..9701871C. doi :10.1016/j.hal.2020.101871. PMID  32732051. S2CID  220891202.
  133. ^ Saldarriaga J, Taylor MFJR, Cavalier-Smith T, Menden-Deuer S , Keeling PJ (2004). "Datos moleculares e historia evolutiva de los dinoflagelados". Eur J Protistol . 40 (1): 85–111. doi :10.1016/j.ejop.2003.11.003. hdl : 2429/16056 .
  134. ^ Fensome RA, Saldarriaga JF, Taylor FJ (1999). "Revisión de la filogenia de los dinoflagelados: reconciliación de las filogenias morfológicas y moleculares". Grana . 38 (2–3): 66–80. Bibcode :1999Grana..38...66F. doi : 10.1080/00173139908559216 .
  135. ^ Gottschling M, Chacón J, Žerdoner Čalasan A, Neuhaus S, Kretschmann J, Stibor H, et al. (2020). "La ubicación filogenética de secuencias ambientales utilizando bases de datos taxonómicamente confiables ayuda a evaluar rigurosamente la biodiversidad de dinófitos en lagos bávaros (Alemania)". Biología de agua dulce . 65 (2): 193–208. Bibcode :2020FrBio..65..193G. doi : 10.1111/fwb.13413 .
  136. ^ Gunderson JH, Goss SH, Coats DW (1999). "La posición filogenética de Amoebophrya sp. que infecta Gymnodinium sanguineum". Revista de microbiología eucariota . 46 (2): 194–197. doi :10.1111/j.1550-7408.1999.tb04603.x. PMID  10361739. S2CID  7836479.
    Gunderson JH, John SA, Boman WC, Coats DW (2002). "Existen múltiples cepas del dinoflagelado parásito Amoebophrya en la bahía de Chesapeake". The Journal of Eukaryotic Microbiology . 49 (6): 469–474. doi :10.1111/j.1550-7408.2002.tb00230.x. PMID  12503682. S2CID  30051291.
  137. ^ López-García P, Rodríguez-Valera F, Pedrós-Alió C, Moreira D (febrero de 2001). "Diversidad inesperada de pequeños eucariotas en el plancton antártico de aguas profundas". Naturaleza . 409 (6820): 603–607. Código Bib :2001Natur.409..603L. doi :10.1038/35054537. PMID  11214316. S2CID  11550698.
  138. ^ Moon-van der Staay SY, De Wachter R, Vaulot D (febrero de 2001). "Las secuencias de ADNr 18S oceánico del picoplancton revelan una diversidad eucariota insospechada". Nature . 409 (6820): 607–610. Bibcode :2001Natur.409..607M. doi :10.1038/35054541. PMID  11214317. S2CID  4362835.
  139. ^ Saldarriaga JF, Taylor FJ, Keeling PJ, Cavalier-Smith T (septiembre de 2001). "La filogenia del ARNr de la SSU nuclear de dinoflagelados sugiere múltiples pérdidas y reemplazos de plástidos". Journal of Molecular Evolution . 53 (3): 204–213. Bibcode :2001JMolE..53..204S. doi :10.1007/s002390010210. PMID  11523007. S2CID  28522930.
  140. ^ Janouskovec J, Horák A, Oborník M, Lukes J, Keeling PJ (junio de 2010). "Un origen común de algas rojas de los plástidos apicomplejos, dinoflagelados y heterocontos". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 107 (24): 10949–10954. Bibcode :2010PNAS..10710949J. doi : 10.1073/pnas.1003335107 . PMC 2890776 . PMID  20534454. 
  141. ^ Gornik SG, Cassin AM, MacRae JI, Ramaprasad A, Rchiad Z, McConville MJ, et al. (mayo de 2015). "Endosimbiosis anulada por eliminación gradual del plástido en un dinoflagelado parásito". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 112 (18): 5767–5772. Bibcode :2015PNAS..112.5767G. doi : 10.1073/pnas.1423400112 . PMC 4426444 . PMID  25902514. 
  142. ^ Dorrell RG, Howe CJ (agosto de 2015). "Integración de plástidos con sus hospedadores: lecciones aprendidas de los dinoflagelados". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 112 (33): 10247–10254. Bibcode :2015PNAS..11210247D. doi : 10.1073/pnas.1421380112 . PMC 4547248 . PMID  25995366. 
  143. ^ Tørresen OK (2010). Investigación del reemplazo de plástidos en el dinoflagelado verde Lepidodinium chlorophorum (tesis de maestría). Universidad de Oslo. hdl :10852/11559.
  144. ^ García-Cuetos L, Moestrup Ø, Hansen P, Daugbjerg N (2010). "El dinoflagelado tóxico Dinophysis acuminata alberga cloroplastos permanentes de origen criptomona, no cleptocloroplastos". Algas nocivas . 9 (1): 25–38. Código Bib : 2010HAlga...9...25G. doi :10.1016/j.hal.2009.07.002.
  145. ^ Kretschmann J, Žerdoner Čalasan A, Gottschling M (enero de 2018). "Filogenética molecular de dinófitos que albergan diatomeas como endosimbiontes (Kryptoperidiniaceae, Peridiniales), con interpretaciones evolutivas y un enfoque en la identidad de Durinskia oculata de Praga". Filogenética molecular y evolución . 118 : 392–402. Bibcode :2018MolPE.118..392K. doi :10.1016/j.ympev.2017.10.011. PMID  29066288.
  146. ^ Imanian B, Keeling PJ (septiembre de 2007). "Los dinoflagelados Durinskia baltica y Kryptoperidinium foliaceum conservan mitocondrias funcionalmente superpuestas de dos linajes evolutivamente distintos". BMC Evolutionary Biology . 7 (1): 172. Bibcode :2007BMCEE...7..172I. doi : 10.1186/1471-2148-7-172 . PMC 2096628 . PMID  17892581. .
  147. ^ Gast RJ, Moran DM, Dennett MR, Caron DA (enero de 2007). "Kleptoplastia en un dinoflagelado antártico: ¿atrapado en una transición evolutiva?". Microbiología ambiental . 9 (1): 39–45. Bibcode :2007EnvMi...9...39G. doi :10.1111/j.1462-2920.2006.01109.x. PMID  17227410.
  148. ^ Taylor FJ (1980). "Sobre la evolución de los dinoflagelados". Bio Systems . 13 (1–2): 65–108. Bibcode :1980BiSys..13...65T. doi :10.1016/0303-2647(80)90006-4. PMID  7002229.
  149. ^ Žerdoner Čalasan A, Kretschmann J, Gottschling M (noviembre de 2019). "Son jóvenes y son muchos: datación de linajes de agua dulce en dinófitos unicelulares". Microbiología ambiental . 21 (11): 4125–4135. Bibcode :2019EnvMi..21.4125Z. doi : 10.1111/1462-2920.14766 . PMID  31369197.
  150. ^ Kim M, Choi DH, Park MG (mayo de 2021). "Diversidad genética de cianobiontes y especificidad del hospedador del dinoflagelado portador de cianobiontes Ornithocercus en aguas costeras templadas". Scientific Reports . 11 (1): 9458. Bibcode :2021NatSR..11.9458K. doi :10.1038/s41598-021-89072-z. PMC 8097063 . PMID  33947914. 
  151. ^ Nakayama T, Nomura M, Takano Y, Tanifuji G, Shiba K, Inaba K, et al. (agosto de 2019). "La genómica unicelular reveló un linaje críptico de cianobacterias con una distribución mundial oculta por un huésped dinoflagelado". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 116 (32): 15973–15978. Bibcode :2019PNAS..11615973N. doi : 10.1073/pnas.1902538116 . PMC 6689939 . PMID  31235587. 
  152. ^ Mertens KN, Takano Y, Head MJ, Matsuoka K (2014). "Fósiles vivientes en la cuenca cálida del Indopacífico: un refugio para los dinoflagelados termófilos durante las glaciaciones". Geología . 42 (6): 531–534. Bibcode :2014Geo....42..531M. doi :10.1130/G35456.1.
  153. ^ Montresor M, Janofske D, Willems H (1997). "La relación quiste-teca en Calciodinellum operosum emend. (Peridiniales, Dinophyceae) y un nuevo enfoque para el estudio de los quistes calcáreos". Revista de Ficología . 33 (1): 122-131. Código Bib : 1997JPcgy..33..122M. doi :10.1111/j.0022-3646.1997.00122.x. S2CID  84169394.
  154. ^ Gu H, Kirsch M, Zinssmeister C, Soehner S, Meier KJ, Liu T, et al. (septiembre de 2013). "Despertando a los muertos: caracterización morfológica y molecular de la †Posoniella tricarinelloides (Thoracosphaeraceae, Dinophyceae) existente". Protist . 164 (5): 583–597. doi :10.1016/j.protis.2013.06.001. PMID  23850812.

Bibliografía

Enlaces externos

Wikimedia Commons tiene medios relacionados con Dinoflagellata .