stringtranslate.com

Proteína quinasa activada por AMP

La proteína quinasa activada por 5' AMP o AMPK o la proteína quinasa activada por monofosfato de adenosina 5' es una enzima (EC 2.7.11.31) que desempeña un papel en la homeostasis de la energía celular, en gran medida para activar la absorción y oxidación de glucosa y ácidos grasos cuando la energía celular es bajo. Pertenece a una familia de proteínas eucariotas altamente conservada y sus ortólogos son SNF1 en levaduras y SnRK1 en plantas. Consta de tres proteínas ( subunidades ) que juntas forman una enzima funcional, conservada desde la levadura hasta los humanos. Se expresa en varios tejidos, incluidos el hígado , el cerebro y el músculo esquelético . En respuesta a la unión de AMP y ADP , [1] el efecto neto de la activación de AMPK es la estimulación de la oxidación de ácidos grasos hepáticos , cetogénesis , estimulación de la oxidación de ácidos grasos del músculo esquelético y la captación de glucosa, inhibición de la síntesis de colesterol , lipogénesis y síntesis de triglicéridos , inhibición. de la lipogénesis de los adipocitos, la inhibición de la lipólisis de los adipocitos y la modulación de la secreción de insulina por las células β pancreáticas . [2]

No debe confundirse con la proteína quinasa activada por AMP cíclico ( proteína quinasa A ). [3]

Estructura

AMPK es un complejo proteico heterotrimérico formado por subunidades α, β y γ. Cada una de estas tres subunidades asume un papel específico tanto en la estabilidad como en la actividad de AMPK. [4] [5] Específicamente, la subunidad γ incluye cuatro dominios particulares de cistationina-β-sintasa (CBS) , lo que le da a AMPK su capacidad para detectar cambios con sensibilidad en la relación AMP / ATP . AMPK se desactiva tras el desplazamiento de AMP por ATP en el sitio 3 de CBS, lo que sugiere que CBS3 es el sitio regulador alostérico principal. [6] [7] [8] Los cuatro dominios CBS crean dos sitios de unión para AMP comúnmente denominados dominios Bateman. La unión de un AMP a un dominio Bateman aumenta cooperativamente la afinidad de unión del segundo AMP al otro dominio Bateman. [9] [ verificación fallida ] A medida que AMP se une a ambos dominios Bateman, la subunidad γ sufre un cambio conformacional que expone el dominio catalítico que se encuentra en la subunidad α. Es en este dominio catalítico donde la AMPK se activa cuando tiene lugar la fosforilación en la treonina -172 (en la isoforma α1) o Thr-174 (en la isoforma α2) por una AMPK quinasa aguas arriba (AMPKK). [10] [6] Las subunidades α, β y γ también se pueden encontrar en diferentes isoformas: la subunidad γ puede existir como isoforma γ1, γ2 o γ3 ; la subunidad β puede existir como isoforma β1 o β2; y la subunidad α puede existir como isoforma α1 o α2. Aunque las isoformas más comunes expresadas en la mayoría de las células son las isoformas α1, β1 y γ1, se ha demostrado que las isoformas α2, β2, γ2 y γ3 también se expresan en el músculo cardíaco y esquelético . [4] [11] [12]

Los siguientes genes humanos codifican subunidades AMPK:

La estructura cristalina del dominio central regulador de AMPK de mamíferos (α C terminal, β C terminal, γ) se ha resuelto en complejo con AMP, [13] ADP [14] o ATP. [15]

Regulación

Debido a la presencia de isoformas de sus componentes, existen 12 versiones de AMPK en mamíferos, cada una de las cuales puede tener diferentes localizaciones tisulares y diferentes funciones en diferentes condiciones. [16] AMPK está regulado alostéricamente y mediante modificación postraduccional, que funcionan en conjunto. [dieciséis]

Si el residuo Thr-172 de la subunidad α1 de AMPK (o Thr-174 de la subunidad α2 de AMPK) está fosforilado, AMPK se activa aproximadamente 100 veces; [6] el acceso a ese residuo por parte de las fosfatasas se bloquea si AMP o ADP pueden bloquear el acceso y ATP puede desplazar a AMP y ADP. [16] Ese residuo es fosforilado por al menos tres quinasas ( quinasa hepática B1 (LKB1), [17] que funciona en un complejo con STRAD y MO25 , proteína quinasa quinasa II-( CAMKK2 ) dependiente de calcio/calmodulina y TGFβ- quinasa 1 activada (TAK1)) y es desfosforilada por tres fosfatasas ( proteína fosfatasa 2A (PP2A); proteína fosfatasa 2C (PP2C) y proteína fosfatasa 1E dependiente de Mg 2+ -/Mn 2+ (PPM1E)). [dieciséis]

La regulación de AMPK por CaMKK2 requiere una interacción directa de estas dos proteínas a través de sus dominios quinasa. La interacción de CaMKK2 con AMPK solo involucra las subunidades α y β de AMPK (AMPK γ está ausente del complejo CaMKK2), lo que hace que la regulación de AMPK en este contexto dependa de cambios en los niveles de calcio, pero no de AMP o ADP.

Proteína quinasa activada por monofosfato de adenosina activa (AMPK, izquierda) y AMPK inactiva (derecha). AMPK es un complejo proteico compuesto por tres subunidades: α (verde), β (marrón) y γ (azul). Cuando se une al monofosfato de adenosina (AMP), la AMPK se activa y el bucle activo queda protegido contra las fosfatasas. Cuando se une al trifosfato de adenosina (ATP), la AMPK sufre un gran cambio conformacional en el que parte de la subunidad α se asocia débilmente con la subunidad γ a aproximadamente 100 Å de distancia, el bucle activo se expone a las fosfatasas y la AMPK se desactiva. ID de PDB: 4RER (izquierda) y 7M74 (derecha)

AMPK se regula alostéricamente principalmente mediante unión competitiva a los sitios CBS en su subunidad γ entre ATP (que permite el acceso de la fosfatasa a Thr-172) y AMP o ADP (cada uno de los cuales bloquea el acceso a las fosfatasas). [1] Por lo tanto, parece que AMPK es un sensor de las proporciones AMP/ATP o ADP/ATP y, por tanto, del nivel de energía celular. [16] AMPK sufre un gran cambio conformacional tras la unión de ATP. Una región de la subunidad α conocida como dominio quinasa (KD) se disocia de su conformación de estado activo y se asocia libremente con la subunidad γ a aproximadamente 100 Å de distancia. El KD también gira ~180° en el cambio conformacional. Tras la disociación de KD, el bucle activo (AL) de la subunidad α que contiene el residuo Thr fosforilado crítico queda completamente expuesto a las fosfatasas aguas arriba. Este cambio conformacional representa un mecanismo plausible para la modulación de AMPK. Cuando los estados de energía celular son bajos (niveles altos de AMP/ATP o ADP/ATP), la AMPK adopta la conformación asociada a KD y la AMPK queda protegida de la desfosforilación y permanece activada. Cuando los estados de energía celular son altos, AMPK adopta la conformación KD desplazada, la AL se expone a fosfatasas aguas arriba y la AMPK se desactiva. [6]

Los compuestos farmacológicos Merck Compound 991 y Abbott A769662 se unen al sitio alostérico del metabolismo y del fármaco (ADaM) en la subunidad β y se ha demostrado que activan la AMPK hasta 10 veces. [6] [18] La unión al sitio ADaM puede tener funciones en la activación de AMPK, así como en la protección contra la desfosforilación. [19]

Existen otros mecanismos mediante los cuales la AMPK es inhibida o activada por la insulina, la leptina y el diacilglicerol al inducir otras fosforilaciones. [16] [un]

La AMPK puede inhibirse o activarse mediante diversas ubiquitinaciones específicas de tejido . [dieciséis]

También está regulado por varias interacciones proteína-proteína y puede ser activado o inhibido por factores oxidativos; el papel de la oxidación en la regulación de AMPK fue controvertido en 2016. [16]

Función

Cuando la AMPK fosforila la acetil-CoA carboxilasa 1 (ACC1) o la proteína de unión al elemento regulador de esteroles 1c (SREBP1c), inhibe la síntesis de ácidos grasos, colesterol y triglicéridos, y activa la absorción de ácidos grasos y la β-oxidación. [dieciséis]

AMPK estimula la captación de glucosa en el músculo esquelético mediante la fosforilación de la proteína activadora de Rab-GTPasa TBC1D1 , que finalmente induce la fusión de las vesículas de GLUT1 con la membrana plasmática. [16] AMPK estimula la glucólisis activando la fosforilación de la 6-fosfofructo-2-quinasa/fructosa-2,6-bisfosfatasa 2/3 y activando la fosforilación de la glucógeno fosforilasa, e inhibe la síntesis de glucógeno mediante la fosforilación inhibidora de la glucógeno sintasa. [16] En el hígado, AMPK inhibe la gluconeogénesis al inhibir factores de transcripción, incluido el factor nuclear de hepatocitos 4 (HNF4) y el coactivador de transcripción 2 regulado por CREB (CRTC2). [dieciséis]

AMPK inhibe el proceso de biosíntesis de proteínas que consume mucha energía y también puede forzar un cambio de una traducción dependiente de cap a una traducción independiente de cap, que requiere menos energía, mediante la fosforilación de TSC2 , RPTOR , el factor de iniciación de la transcripción 1A.66 y eEF2K . [16] Cuando se activa TSC2, inhibe mTORC1. Como resultado de la inhibición de mTORC1 por parte de AMPK, la síntesis de proteínas se detiene. La activación de AMPK significa poca energía dentro de la célula, por lo que todas las vías que consumen energía, como la síntesis de proteínas, se inhiben y las vías que generan energía se activan para restaurar los niveles de energía adecuados en la célula. [20]

AMPK activa la autofagia activando directa e indirectamente ULK1 . [16] AMPK también parece estimular la biogénesis mitocondrial mediante la regulación de PGC-1α, que a su vez promueve la transcripción de genes en las mitocondrias. [16] AMPK también activa las defensas antioxidantes. [dieciséis]

Significación clínica

Entrenamiento de ejercicio

Muchas adaptaciones bioquímicas del músculo esquelético que tienen lugar durante una sola sesión de ejercicio o una duración prolongada del entrenamiento , como el aumento de la biogénesis y la capacidad mitocondrial , [21] [22] el aumento del glucógeno muscular , [23] y un aumento de las enzimas que se especializan Se cree que la absorción de glucosa en células como GLUT4 y hexoquinasa II [24] [25] está mediada en parte por AMPK cuando se activa. [26] [27] Además, descubrimientos recientes posiblemente puedan sugerir un papel directo de AMPK en el aumento del suministro de sangre a las células musculares ejercitadas/entrenadas al estimular y estabilizar tanto la vasculogénesis como la angiogénesis . [28] En conjunto, estas adaptaciones probablemente ocurren como resultado de aumentos tanto temporales como mantenidos en la actividad de AMPK provocados por aumentos en la relación AMP:ATP durante series únicas de ejercicio y entrenamiento a largo plazo.

Durante una sola sesión de ejercicio agudo , AMPK permite que las células musculares en contracción se adapten a los desafíos energéticos al aumentar la expresión de la hexoquinasa II, [23] la translocación de GLUT4 a la membrana plasmática , [29] [30] [31] [32] para la captación de glucosa y estimulando la glucólisis. [33] Si los episodios de ejercicio continúan a través de un régimen de entrenamiento a largo plazo , la AMPK y otras señales facilitarán las adaptaciones de los músculos en contracción al acompañar la actividad de las células musculares a una transición metabólica que resulta en un enfoque de oxidación de ácidos grasos para la generación de ATP en lugar de un enfoque glicolítico. acercarse. AMPK logra esta transición al modo oxidativo del metabolismo regulando y activando enzimas oxidativas como la hexoquinasa II , PPAR-α , PPAR-δ , PGC-1 , UCP-3 , citocromo C y TFAM . [26] [23] [25] [34] [35] [36] [37]

Las mutaciones en el canal de liberación de calcio del músculo esquelético ( RYR1 ) son la base de una respuesta al calor potencialmente mortal en pacientes con susceptibilidad a la hipertermia maligna (MHS). Tras la exposición aguda al calor, estas mutaciones provocan una liberación incontrolada de Ca 2+ desde el retículo sarcoplásmico , lo que provoca contracturas musculares sostenidas, hipertermia grave y muerte súbita. [38] En condiciones basales, la fuga de Ca 2+ dependiente de la temperatura también conduce a una mayor demanda de energía y a la activación de la AMP quinasa sensora de energía (AMPK) en el músculo esquelético. [38] La AMPK activada aumenta la actividad metabólica muscular, incluida la glucólisis, lo que conduce a una marcada elevación del lactato circulante . [38]

La actividad de AMPK aumenta con el ejercicio y el complejo LKB1/MO25/STRAD se considera el principal AMPKK aguas arriba de la proteína quinasa activada por 5'-AMP que fosforila la subunidad α de AMPK en Thr-172. [10] [39] [40] [17] Este hecho es desconcertante considerando que aunque se ha demostrado que la abundancia de la proteína AMPK aumenta en el tejido esquelético con el entrenamiento de resistencia , se ha demostrado que su nivel de actividad disminuye con el entrenamiento de resistencia tanto en personas entrenadas como en personas. tejido no entrenado. [41] [42] [43] [44] Actualmente, la actividad de AMPK inmediatamente después de una sesión de ejercicio de 2 horas de una rata entrenada en resistencia no está clara. Es posible que exista un vínculo directo entre la disminución observada en la actividad de AMPK en el músculo esquelético entrenado en resistencia y la aparente disminución en la respuesta de AMPK al ejercicio con entrenamiento de resistencia.

Aunque se ha pensado que la activación de AMPKα2 es importante para las adaptaciones mitocondriales al entrenamiento físico, un estudio reciente que investiga la respuesta al entrenamiento físico en ratones knockout para AMPKα2 se opone a esta idea. [45] Su estudio comparó la respuesta al entrenamiento físico de varias proteínas y enzimas en ratones de tipo salvaje y knockout para AMPKα2. Y aunque los ratones knockout tenían marcadores basales más bajos de densidad mitocondrial (COX-1, CS y HAD), estos marcadores aumentaron de manera similar a los ratones de tipo salvaje después del entrenamiento físico. Estos hallazgos están respaldados por otro estudio que tampoco muestra diferencias en las adaptaciones mitocondriales al entrenamiento físico entre ratones de tipo salvaje y knockout. [46]

Vida útil máxima

Michael Ristow y sus colegas han demostrado que el homólogo de AMPK en C. elegans , aak-2, es necesario para prolongar la vida en estados de restricción de glucosa que median un proceso llamado mitohormesis . [47]

Metabolismo lipídico

Uno de los efectos del ejercicio es un aumento en el metabolismo de los ácidos grasos , lo que proporciona más energía a la célula. Una de las vías clave en la regulación de la oxidación de ácidos grasos por parte de AMPK es la fosforilación e inactivación de la acetil-CoA carboxilasa . [28] La acetil-CoA carboxilasa (ACC) convierte la acetil-CoA en malonil-CoA , un inhibidor de la carnitina palmitoiltransferasa 1 ( CPT-1 ). CPT-1 transporta ácidos grasos a las mitocondrias para su oxidación . Por lo tanto, la inactivación de ACC da como resultado un aumento del transporte de ácidos grasos y la posterior oxidación. También se cree que la disminución de malonil-CoA se produce como resultado de la malonil-CoA descarboxilasa (MCD), que puede estar regulada por AMPK. [21] MCD es un antagonista de ACC, descarboxilando malonil-CoA a acetil-CoA, lo que resulta en una disminución de malonil-CoA y un aumento de CPT-1 y oxidación de ácidos grasos. AMPK también juega un papel importante en el metabolismo de los lípidos en el hígado . Se sabe desde hace mucho tiempo que la ACC hepática se regula en el hígado mediante fosforilación . [22] AMPK también fosforila e inactiva la 3-hidroxi-3-metilglutaril-CoA reductasa (HMGCR), una enzima clave en la síntesis de colesterol . [29] La HMGR convierte la 3-hidroxi-3-metilglutaril-CoA, que se elabora a partir de acetil-CoA, en ácido mevalónico , que luego desciende por varios pasos metabólicos más para convertirse en colesterol . La AMPK, por tanto, ayuda a regular la oxidación de los ácidos grasos y la síntesis del colesterol.

Transporte de glucosa

La insulina es una hormona que ayuda a regular los niveles de glucosa en el cuerpo. Cuando la glucosa en sangre es alta, los islotes de Langerhans liberan insulina . La insulina, entre otras cosas, facilitará la absorción de glucosa en las células mediante una mayor expresión y translocación del transportador de glucosa GLUT-4 . [27] Sin embargo, en condiciones de ejercicio, los niveles de azúcar en la sangre no son necesariamente altos y la insulina no necesariamente se activa; sin embargo, los músculos aún pueden producir glucosa. AMPK parece ser responsable en parte de esta absorción de glucosa inducida por el ejercicio . Goodyear y cols. [24] observaron que con el ejercicio, la concentración de GLUT-4 aumentaba en la membrana plasmática , pero disminuía en las membranas microsomales , lo que sugiere que el ejercicio facilita la translocación de GLUT-4 vesicular a la membrana plasmática . Mientras que el ejercicio intenso aumenta la translocación de GLUT-4, el entrenamiento de resistencia aumentará la cantidad total de proteína GLUT-4 disponible. [25] Se ha demostrado que tanto la contracción eléctrica como el tratamiento con ribonucleótido AICA (AICAR) aumentan la activación de AMPK, la captación de glucosa y la translocación de GLUT-4 en el músculo perfundido de las extremidades posteriores de ratas , vinculando la captación de glucosa inducida por el ejercicio con AMPK. [48] ​​[23] [34] Las inyecciones crónicas de AICAR, que simulan algunos de los efectos del entrenamiento de resistencia , también aumentan la cantidad total de proteína GLUT-4 en la célula muscular . [35]

Dos proteínas son esenciales para la regulación de la expresión de GLUT-4 a nivel transcripcional: el factor potenciador de miocitos 2 ( MEF2 ) y el factor potenciador de GLUT4 (GEF). Las mutaciones en las regiones de unión al ADN de cualquiera de estas proteínas dan como resultado la ablación de la expresión del transgén GLUT-4. [30] [31] Estos resultados impulsaron un estudio en 2005 que demostró que AMPK fosforila directamente a GEF, pero no parece activar directamente MEF2. [32] Sin embargo, se ha demostrado que el tratamiento con AICAR aumenta el transporte de ambas proteínas al núcleo , así como también aumenta la unión de ambas a la región promotora GLUT-4 . [32]

Existe otra proteína implicada en el metabolismo de los carbohidratos que merece la pena mencionar junto con el GLUT-4. La enzima hexoquinasa fosforila un azúcar de seis carbonos, sobre todo la glucosa , que es el primer paso de la glucólisis . Cuando la glucosa se transporta al interior de la célula, la hexoquinasa la fosforila. Esta fosforilación evita que la glucosa salga de la célula y, al cambiar la estructura de la glucosa mediante la fosforilación, disminuye la concentración de moléculas de glucosa, manteniendo un gradiente para que se transporte más glucosa al interior de la célula. La transcripción de la hexoquinasa II aumenta en el músculo esquelético rojo y blanco tras el tratamiento con AICAR. [36] Con inyecciones crónicas de AICAR, el contenido total de proteínas de la hexoquinasa II aumenta en el músculo esquelético de rata . [49]

mitocondrias

Las enzimas mitocondriales, como el citocromo c , la succinato deshidrogenasa , la malato deshidrogenasa , la α-cetoglutarato deshidrogenasa y la citrato sintasa , aumentan su expresión y actividad en respuesta al ejercicio. [43] La estimulación AICAR de AMPK aumenta el citocromo c y la δ-aminolevulinato sintasa ( ALAS ), una enzima limitante de la velocidad involucrada en la producción de hemo . La malato deshidrogenasa y la succinato deshidrogenasa también aumentan, así como la actividad de la citrato sintasa, en ratas tratadas con inyecciones de AICAR. [44] Por el contrario, en ratones knockout para LKB1, hay disminuciones en la actividad del citocromo c y de la citrato sintasa, incluso si los ratones están "entrenados" mediante ejercicio voluntario. [50]

La AMPK es necesaria para aumentar la expresión del coactivador γ-1α ( PGC-1α ) del receptor activado por proliferador de peroxisomas en el músculo esquelético en respuesta al agotamiento de creatina . [51] PGC-1α es un regulador transcripcional de genes implicados en la oxidación de ácidos grasos y la gluconeogénesis , y se considera el regulador maestro de la biogénesis mitocondrial . [52]

Para ello, mejora la actividad de factores de transcripción como el factor respiratorio nuclear 1 ( NRF-1 ), el factor potenciador de miocitos 2 (MEF2), el factor de la célula huésped (HCF) y otros. [9] [33] También tiene un circuito de retroalimentación positiva , mejorando su propia expresión. [53] Tanto el elemento de respuesta MEF2 como el AMPc ( CRE ) son esenciales para la actividad del promotor PGC-1α inducida por la contracción . [33] Los ratones knockout para LKB1 muestran una disminución en PGC-1α, así como en proteínas mitocondriales. [50] [54]

hormona tiroidea

La AMPK y la hormona tiroidea regulan algunos procesos similares. Conociendo estas similitudes, Winder y Hardie et al. diseñó un experimento para ver si la AMPK estaba influenciada por la hormona tiroidea . [55] [56] [57] Descubrieron que todas las subunidades de AMPK aumentaban en el músculo esquelético , especialmente en el sóleo y el cuádriceps rojo, con el tratamiento con hormona tiroidea. También hubo un aumento en el fosfo-ACC, un marcador de la actividad de AMPK. [55]

Sistemas de detección de glucosa

Se ha informado que la pérdida de AMPK altera la sensibilidad de las células sensibles a la glucosa, a través de mecanismos mal definidos. La pérdida de la subunidad AMPKα2 en las células β pancreáticas y las neuronas hipotalámicas disminuye la sensibilidad de estas células a los cambios en la concentración de glucosa extracelular. [58] [59] [60] [61] Además, la exposición de ratas a episodios recurrentes de hipoglucemia /glucopenia inducida por insulina reduce la activación de AMPK dentro del hipotálamo , al tiempo que suprime la respuesta contrarreguladora a la hipoglucemia. [62] [63] La activación farmacológica de AMPK mediante la administración del fármaco activador de AMPK AICAR, directamente en el hipotálamo, puede aumentar la respuesta contrarreguladora a la hipoglucemia. [64]

Daño lisosomal, enfermedades inflamatorias y metformina.

La AMPK se recluta en los lisosomas y se regula en los lisosomas a través de varios sistemas de importancia clínica. Esto incluye el complejo AXIN - LKB1 , que actúa en respuesta a las limitaciones de glucosa y funciona independientemente de la detección de AMP, que detecta niveles bajos de glucosa como ausencia de fructosa-1,6-bifosfato a través de un conjunto dinámico de interacciones entre V-ATPasa localizada lisosómicamente y aldolasa en contacto. con el retículo endoplásmico localizado TRPV . [65] Un segundo sistema de control de AMPK [66] localizado en los lisosomas depende del sistema Galectina-9 - TAK1 y de las respuestas de ubiquitinación controladas por enzimas desubiquitinantes como la USP9X , lo que lleva a la activación de AMPK en respuesta al daño lisosomal, [66] una condición que puede ocurrir bioquímicamente, físicamente a través de agregados de proteínas como la tau proteopática en la enfermedad de Alzheimer , [67] [68] sílice cristalina que causa silicosis , [68] cristales de colesterol que causan inflamación a través del inflamasoma NLRP3 y ruptura de lesiones ateroscleróticas, [69] cristales de urato asociados con gota o durante una invasión microbiana como Mycobacterium tuberculosis [68] [70] o coronavirus que causan el SARS . [71] Ambos sistemas localizados lisosómicamente mencionados anteriormente que controlan la AMPK la activan en respuesta a la metformina , [66] [72] un fármaco antidiabético ampliamente recetado .

Supresión y promoción de tumores.

Alguna evidencia indica que AMPK puede tener un papel en la supresión de tumores. Los estudios han encontrado que AMPK puede ejercer la mayoría, o incluso todas, las propiedades supresoras de tumores de la quinasa hepática B1 (LKB1). [17] Además, los estudios en los que se utilizó metformina, el activador de AMPK, para tratar la diabetes encontraron una correlación con un riesgo reducido de cáncer, en comparación con otros medicamentos. Los estudios de eliminación y desactivación de genes con ratones encontraron que los ratones sin el gen para expresar AMPK tenían mayores riesgos de desarrollar linfomas, aunque como el gen fue desactivado globalmente en lugar de solo en las células B , fue imposible concluir que la eliminación de AMP tuviera células autónomas. efectos dentro de las células progenitoras del tumor. [73]

Por el contrario, algunos estudios han relacionado la AMPK con un papel como promotor de tumores al proteger las células cancerosas del estrés. Por lo tanto, una vez que las células cancerosas se han formado en un organismo, la AMPK puede pasar de proteger contra el cáncer a proteger el cáncer mismo. Los estudios han encontrado que las células tumorales con desactivación de AMPK son más susceptibles a morir por falta de glucosa o desprendimiento de la matriz extracelular , lo que puede indicar que AMPK tiene un papel en la prevención de estos dos resultados. No hay evidencia directa de que la inhibición de AMPK sea un tratamiento eficaz contra el cáncer en humanos. [73]

Controversia sobre el papel en la adaptación al ejercicio/entrenamiento

Un papel aparentemente paradójico de la AMPK ocurre cuando observamos más de cerca la enzima sensora de energía en relación con el ejercicio y el entrenamiento a largo plazo. De manera similar a la escala de entrenamiento agudo a corto plazo, los estudios de entrenamiento de resistencia a largo plazo también revelan aumentos en las enzimas metabólicas oxidativas, GLUT-4, tamaño y cantidad mitocondrial, y una mayor dependencia de la oxidación de los ácidos grasos; sin embargo, Winder et al. informaron en 2002 que a pesar de observar estas mayores adaptaciones bioquímicas oxidativas al entrenamiento de resistencia a largo plazo (similares a las mencionadas anteriormente), la respuesta de AMPK (activación de AMPK con el inicio del ejercicio) a episodios agudos de ejercicio disminuyó en los cuádriceps rojos (RQ). con entrenamiento (3 – ver Fig.1). Por el contrario, el estudio no observó los mismos resultados en los músculos cuádriceps blancos (WQ) y sóleo (SOL) que en RQ. Las ratas entrenadas utilizadas para ese estudio de resistencia corrieron en cintas de correr 5 días a la semana en dos sesiones de 1 hora, por la mañana y por la tarde . Las ratas también corrían hasta 31 m/min (grado 15%). Finalmente, tras el entrenamiento, las ratas fueron sacrificadas en reposo o tras 10 minutos de ejercicio.

Debido a que la respuesta de AMPK al ejercicio disminuye con el aumento de la duración del entrenamiento, surgen muchas preguntas que desafiarían el papel de AMPK con respecto a las adaptaciones bioquímicas al ejercicio y al entrenamiento de resistencia. Esto se debe en parte a los marcados aumentos en la biogénesis mitocondrial , la regulación positiva de GLUT-4 , UCP-3 , hexoquinasa II junto con otras enzimas metabólicas y mitocondriales a pesar de las disminuciones en la actividad de AMPK con el entrenamiento. También surgen preguntas porque las células del músculo esquelético que expresan estas disminuciones en la actividad de AMPK en respuesta al entrenamiento de resistencia también parecen mantener un enfoque oxidativo dependiente del metabolismo, que también se cree que está regulado hasta cierto punto por la actividad de AMPK. [34] [35]

Si la respuesta de AMPK al ejercicio es responsable en parte de las adaptaciones bioquímicas al entrenamiento, ¿cómo pueden entonces mantenerse estas adaptaciones al entrenamiento si la respuesta de AMPK al ejercicio se atenúa con el entrenamiento? Se plantea la hipótesis de que estas funciones adaptativas al entrenamiento se mantienen mediante la actividad de AMPK y que los aumentos en la actividad de AMPK en respuesta al ejercicio en el músculo esquelético entrenado aún no se han observado debido a adaptaciones bioquímicas que el propio entrenamiento estimuló en el tejido muscular para reducir la Necesidad metabólica de activación de AMPK. En otras palabras, debido a adaptaciones previas al entrenamiento, AMPK no se activará y no se producirán más adaptaciones, hasta que los niveles intracelulares de ATP se agoten debido a un desafío energético de intensidad aún mayor que antes de esas adaptaciones previas.

Ver también

Notas

  1. ^ La leptina es secretada por el tejido adiposo ante el estímulo de la insulina e inhibe la AMPk en el hipotálamo (reduciendo el apetito) pero estimula la AMPk en los tejidos periféricos. [dieciséis]

Referencias

  1. ^ ab Suter M, Riek U, Tuerk R, Schlattner U, Wallimann T, Neumann D (octubre de 2006). "Disección del papel del 5'-AMP para la estimulación, activación y desactivación alostérica de la proteína quinasa activada por AMP". La Revista de Química Biológica . 281 (43): 32207–16. doi : 10.1074/jbc.M606357200 . PMID  16943194.
  2. ^ Winder WW, Hardie DG (julio de 1999). "Proteína quinasa activada por AMP, un interruptor maestro metabólico: posibles funciones en la diabetes tipo 2". La revista americana de fisiología . 277 (1): E1-10. doi :10.1152/ajpendo.1999.277.1.E1. PMID  10409121.
  3. ^ Hallows KR, Alzamora R, Li H, Gong F, Smolak C, Neumann D, Pastor-Soler NM (abril de 2009). "La proteína quinasa activada por AMP inhibe la acumulación de H + -ATPasa vacuolar apical inducida por pH alcalino y PKA en células claras del epidídimo". Revista americana de fisiología. Fisiología celular . 296 (4): C672-81. doi :10.1152/ajpcell.00004.2009. PMC 2670645 . PMID  19211918. 
  4. ^ ab Stapleton D, Mitchelhill KI, Gao G, Widmer J, Michell BJ, Teh T, et al. (Enero de 1996). "Subfamilia de proteína quinasa activada por AMP de mamíferos". La Revista de Química Biológica . 271 (2): 611–4. doi : 10.1074/jbc.271.2.611 . PMID  8557660.
  5. ^ Riek U, Scholz R, Konarev P, Rufer A, Suter M, Nazabal A, et al. (junio de 2008). "Propiedades estructurales de la proteína quinasa activada por AMP: dimerización, forma molecular y cambios tras la unión del ligando". La Revista de Química Biológica . 283 (26): 18331–18343. doi : 10.1074/jbc.M708379200 . PMID  18372250.
  6. ^ abcde Yan Y, Mukherjee S, Harikumar KG, Strutzenberg TS, Zhou XE, Suino-Powell K, et al. (julio de 2021). "Estructura de un complejo AMPK en estado inactivo unido a ATP". Ciencia . 373 (6553): 413–419. Código Bib : 2021 Ciencia... 373.. 413Y. doi : 10.1126/ciencia.abe7565. PMC 8428800 . PMID  34437114. 
  7. ^ Oakhill JS, Chen ZP, Scott JW, Steel R, Castelli LA, Ling N, et al. (noviembre de 2010). "La miristoilación de la subunidad β es el guardián para iniciar la detección del estrés metabólico mediante la proteína quinasa activada por AMP (AMPK)". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 107 (45): 19237–19241. Código Bib : 2010PNAS..10719237O. doi : 10.1073/pnas.1009705107 . PMC 2984171 . PMID  20974912. 
  8. ^ Chen L, Wang J, Zhang YY, Yan SF, Neumann D, Schlattner U, et al. (Junio ​​2012). "La proteína quinasa activada por AMP sufre cambios conformacionales dependientes de nucleótidos". Naturaleza Biología estructural y molecular . 19 (7): 716–718. doi :10.1038/nsmb.2319. PMID  22659875. S2CID  13591617.
  9. ^ ab Adams J, Chen ZP, Van Denderen BJ, Morton CJ, Parker MW, Witters LA, et al. (Enero de 2004). "Control intraestérico de AMPK a través del sitio regulador alostérico AMP de la subunidad gamma1". Ciencia de las proteínas . 13 (1): 155–65. doi :10.1110/ps.03340004. PMC 2286513 . PMID  14691231. 
  10. ^ ab Hawley SA, Davison M, Woods A, Davies SP, Beri RK, Carling D, Hardie DG (noviembre de 1996). "Caracterización de la proteína quinasa quinasa activada por AMP del hígado de rata e identificación de treonina 172 como el sitio principal en el que fosforila la proteína quinasa activada por AMP". La Revista de Química Biológica . 271 (44): 27879–87. doi : 10.1074/jbc.271.44.27879 . PMID  8910387.
  11. ^ Thornton C, Snowden MA, Carling D (mayo de 1998). "Identificación de una nueva isoforma de la subunidad beta de la proteína quinasa activada por AMP que se expresa altamente en el músculo esquelético". La Revista de Química Biológica . 273 (20): 12443–50. doi : 10.1074/jbc.273.20.12443 . PID  9575201.
  12. ^ Cheung PC, Salt IP, Davies SP, Hardie DG, Carling D (marzo de 2000). "Caracterización de las isoformas de la subunidad gamma de la proteína quinasa activada por AMP y su papel en la unión de AMP". La revista bioquímica . 346 (3): 659–69. doi :10.1042/0264-6021:3460659. PMC 1220898 . PMID  10698692. 
  13. ^ Xiao B, Heath R, Saiu P, Leiper FC, Leone P, Jing C, et al. (Septiembre de 2007). "Base estructural para la unión de AMP a la proteína quinasa activada por AMP de mamíferos". Naturaleza . 449 (7161): 496–500. Código Bib :2007Natur.449..496X. doi : 10.1038/naturaleza06161. PMID  17851531. S2CID  4345919.
  14. ^ Xiao B, Sanders MJ, Underwood E, Heath R, Mayer FV, Carmena D, et al. (Abril de 2011). "Estructura de la AMPK de mamíferos y su regulación por ADP". Naturaleza . 472 (7342): 230–3. Código Bib :2011Natur.472..230X. doi : 10.1038/naturaleza09932. PMC 3078618 . PMID  21399626. 
  15. ^ Chen L, Wang J, Zhang YY, Yan SF, Neumann D, Schlattner U, et al. (Junio ​​2012). "La proteína quinasa activada por AMP sufre cambios conformacionales dependientes de nucleótidos". Naturaleza Biología estructural y molecular . 19 (7): 716–8. doi :10.1038/nsmb.2319. PMID  22659875. S2CID  13591617.
  16. ^ abcdefghijklmnopq Jeon SM (julio de 2016). "Regulación y función de AMPK en fisiología y enfermedades". Medicina experimental y molecular . 48 (7): e245. doi : 10.1038/emm.2016.81. PMC 4973318 . PMID  27416781. 
  17. ^ abc Woods A, Johnstone SR, Dickerson K, Leiper FC, Fryer LG, Neumann D, et al. (noviembre de 2003). "LKB1 es la quinasa aguas arriba en la cascada de proteína quinasa activada por AMP". Biología actual . 13 (22): 2004–8. doi : 10.1016/j.cub.2003.10.031 . PMID  14614828.
  18. ^ Calabrese MF, Rajamohan F, Harris MS, Caspers NL, Magyar R, Withka JM, et al. (Agosto de 2014). "Base estructural para la activación de AMPK: ligandos naturales y sintéticos regulan la actividad quinasa desde polos opuestos mediante diferentes mecanismos moleculares". Estructura . 22 (8): 1161-1172. doi : 10.1016/j.str.2014.06.009 . PMID  25066137.
  19. ^ Xiao B, Sanders MJ, Carmena D, Bright NJ, Haire LF, Underwood E, et al. (Diciembre 2013). "Base estructural de la regulación de AMPK por activadores de moléculas pequeñas". Comunicaciones de la naturaleza . 4 (1): 3017. Código bibliográfico : 2013NatCo...4.3017X. doi : 10.1038/ncomms4017 . PMC 3905731 . PMID  24352254. 
  20. ^ Hardie DG, Ross FA, Hawley SA (marzo de 2012). "AMPK: un sensor de nutrientes y energía que mantiene la homeostasis energética". Reseñas de la naturaleza. Biología celular molecular . 13 (4): 251–62. doi :10.1038/nrm3311. PMC 5726489 . PMID  22436748. 
  21. ^ ab Bergeron R, Ren JM, Cadman KS, Moore IK, Perret P, Pypaert M, et al. (Diciembre de 2001). "La activación crónica de la AMP quinasa da como resultado la activación de NRF-1 y la biogénesis mitocondrial". Revista americana de fisiología. Endocrinología y Metabolismo . 281 (6): E1340-6. doi :10.1152/ajpendo.2001.281.6.e1340. PMID  11701451. S2CID  21577702.
  22. ^ ab Zong H, Ren JM, Young LH, Pypaert M, Mu J, Birnbaum MJ, Shulman GI (diciembre de 2002). "La AMP quinasa es necesaria para la biogénesis mitocondrial en el músculo esquelético en respuesta a la privación crónica de energía". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 99 (25): 15983–7. Código bibliográfico : 2002PNAS...9915983Z. doi : 10.1073/pnas.252625599 . PMC 138551 . PMID  12444247. 
  23. ^ abcd Holmes BF, Kurth-Kraczek EJ, Winder WW (noviembre de 1999). "La activación crónica de la proteína quinasa activada por 5'-AMP aumenta el GLUT-4, la hexoquinasa y el glucógeno en el músculo". Revista de fisiología aplicada . 87 (5): 1990–5. doi :10.1152/jappl.1999.87.5.1990. PMID  10562646. S2CID  9622267.
  24. ^ ab Ojuka EO, Jones TE, Nolte LA, Chen M, Wamhoff BR, Sturek M, Holloszy JO (mayo de 2002). "Regulación de la biogénesis de GLUT4 en el músculo: evidencia de la participación de AMPK y Ca (2+)". Revista americana de fisiología. Endocrinología y Metabolismo . 282 (5): E1008-13. doi :10.1152/ajpendo.00512.2001. PMID  11934664. S2CID  7891060.
  25. ^ abc Stoppani J, Hildebrandt AL, Sakamoto K, Cameron-Smith D, Goodyear LJ, Neufer PD (diciembre de 2002). "La proteína quinasa activada por AMP activa la transcripción de los genes UCP3 y HKII en el músculo esquelético de rata". Revista americana de fisiología. Endocrinología y Metabolismo . 283 (6): E1239-48. doi :10.1152/ajpendo.00278.2002. PMID  12388122. S2CID  27188844.
  26. ^ ab Ojuka EO (mayo de 2004). "Papel del calcio y la AMP quinasa en la regulación de la biogénesis mitocondrial y los niveles de GLUT4 en el músculo". Las actas de la Sociedad de Nutrición . 63 (2): 275–8. doi : 10.1079/PNS2004339 . hdl : 11427/35025 . PMID  15294043.
  27. ^ ab Winder WW, Holmes BF, Rubink DS, Jensen EB, Chen M, Holloszy JO (junio de 2000). "La activación de la proteína quinasa activada por AMP aumenta las enzimas mitocondriales en el músculo esquelético". Revista de fisiología aplicada . 88 (6): 2219–26. doi :10.1152/jappl.2000.88.6.2219. PMID  10846039. S2CID  5627995.
  28. ^ ab Ouchi N, Shibata R, Walsh K (abril de 2005). "La señalización de la proteína quinasa activada por AMP estimula la expresión de VEGF y la angiogénesis en el músculo esquelético". Investigación de circulación . 96 (8): 838–46. doi : 10.1161/01.RES.0000163633.10240.3b . PMID  15790954.
  29. ^ ab Hayashi T, Hirshman MF, Kurth EJ, Winder WW, Goodyear LJ (agosto de 1998). "Evidencia de la mediación de la proteína quinasa activada por 5 'AMP del efecto de la contracción muscular sobre el transporte de glucosa". Diabetes . 47 (8): 1369–73. doi :10.2337/diabetes.47.8.1369. PMID  9703344.
  30. ^ ab Hayashi T, Hirshman MF, Fujii N, Habinowski SA, Witters LA, Goodyear LJ (abril de 2000). "Estrés metabólico y transporte alterado de glucosa: activación de la proteína quinasa activada por AMP como mecanismo de acoplamiento unificador". Diabetes . 49 (4): 527–31. doi : 10.2337/diabetes.49.4.527 . PMID  10871188.
  31. ^ ab Kurth-Kraczek EJ, Hirshman MF, Goodyear LJ, Winder WW (agosto de 1999). "La activación de la proteína quinasa activada por 5 'AMP provoca la translocación de GLUT4 en el músculo esquelético". Diabetes . 48 (8): 1667–71. doi :10.2337/diabetes.48.8.1667. PMID  10426389. S2CID  29891424.
  32. ^ abc Merrill GF, Kurth EJ, Hardie DG, Winder WW (diciembre de 1997). "El ribósido de AICA aumenta la proteína quinasa activada por AMP, la oxidación de ácidos grasos y la absorción de glucosa en el músculo de rata". La revista americana de fisiología . 273 (6): E1107-12. doi :10.1152/ajpendo.1997.273.6.E1107. PMID  9435525.
  33. ^ abc Marsin AS, Bertrand L, Rider MH, Deprez J, Beauloye C, Vincent MF, et al. (octubre de 2000). "La fosforilación y activación del PFK-2 cardíaco por AMPK tiene un papel en la estimulación de la glucólisis durante la isquemia". Biología actual . 10 (20): 1247–55. doi : 10.1016/S0960-9822(00)00742-9 . PMID  11069105.
  34. ^ abc Lee WJ, Kim M, Park HS, Kim HS, Jeon MJ, Oh KS, et al. (febrero de 2006). "La activación de AMPK aumenta la oxidación de ácidos grasos en el músculo esquelético al activar PPARalfa y PGC-1". Comunicaciones de investigación bioquímica y biofísica . 340 (1): 291–5. doi :10.1016/j.bbrc.2005.12.011. PMID  16364253.
  35. ^ abc Suwa M, Egashira T, Nakano H, Sasaki H, Kumagai S (diciembre de 2006). "La metformina aumenta la proteína PGC-1alfa y las actividades de la enzima oxidativa posiblemente a través de la fosforilación de AMPK en el músculo esquelético in vivo". Revista de fisiología aplicada . 101 (6): 1685–92. doi :10.1152/japplphysiol.00255.2006. PMID  16902066. S2CID  17877895.
  36. ^ ab Ojuka EO, Nolte LA, Holloszy JO (marzo de 2000). "Aumento de la expresión de GLUT-4 y hexoquinasa en músculos epitrocleares de rata expuestos a AICAR in vitro". Revista de fisiología aplicada . 88 (3): 1072–5. doi :10.1152/jappl.2000.88.3.1072. PMID  10710405. S2CID  22504819.
  37. ^ Narkar VA, Downes M, Yu RT, Embler E, Wang YX, Banayo E, et al. (Agosto de 2008). "Los agonistas de AMPK y PPARdelta son miméticos del ejercicio". Celúla . 134 (3): 405–15. doi :10.1016/j.cell.2008.06.051. PMC 2706130 . PMID  18674809. 
  38. ^ abc Wang HJ, Lee CS, Yee RS, Groom L, Friedman I, Babcock L, et al. (octubre de 2020). "La termogénesis adaptativa mejora la respuesta al calor que pone en peligro la vida en ratones con una mutación Ryr1". Comunicaciones de la naturaleza . 11 (1): 5099. Código bibliográfico : 2020NatCo..11.5099W. doi :10.1038/s41467-020-18865-z. PMC 7547078 . PMID  33037202. 
  39. ^ Stein SC, Woods A, Jones NA, Davison MD, Carling D (febrero de 2000). "La regulación de la proteína quinasa activada por AMP mediante fosforilación". La revista bioquímica . 345 (3): 437–43. doi :10.1042/0264-6021:3450437. PMC 1220775 . PMID  10642499. 
  40. ^ Hawley SA, Boudeau J, Reid JL, Mustard KJ, Udd L, Mäkelä TP y otros. (2003). "Los complejos entre el supresor de tumores LKB1, STRAD alfa/beta y MO25 alfa/beta son quinasas aguas arriba en la cascada de proteína quinasa activada por AMP". Revista de biología . 2 (4): 28. doi : 10.1186/1475-4924-2-28 . PMC 333410 . PMID  14511394. 
  41. ^ Hurst D, Taylor EB, Cline TD, Greenwood LJ, Compton CL, Lamb JD, Winder WW (octubre de 2005). "Actividad de la proteína quinasa quinasa activada por AMP y fosforilación de la proteína quinasa activada por AMP en la contracción del músculo de ratas sedentarias y entrenadas en resistencia". Revista americana de fisiología. Endocrinología y Metabolismo . 289 (4): E710-5. doi :10.1152/ajpendo.00155.2005. PMID  15928023. S2CID  25296834.
  42. ^ Hutber CA, Hardie DG, Winder WW (febrero de 1997). "La estimulación eléctrica inactiva la acetil-CoA carboxilasa muscular y aumenta la proteína quinasa activada por AMP". La revista americana de fisiología . 272 (2 puntos 1): E262-6. doi :10.1152/ajpendo.1997.272.2.E262. PMID  9124333.
  43. ^ ab Taylor EB, Hurst D, Greenwood LJ, Lamb JD, Cline TD, Sudweeks SN, Winder WW (diciembre de 2004). "El entrenamiento de resistencia aumenta las proteínas LKB1 y MO25, pero no la actividad de la proteína quinasa quinasa activada por AMP en el músculo esquelético". Revista americana de fisiología. Endocrinología y Metabolismo . 287 (6): E1082-9. doi :10.1152/ajpendo.00179.2004. PMID  15292028.
  44. ^ ab Taylor EB, Lamb JD, Hurst RW, Chesser DG, Ellingson WJ, Greenwood LJ, et al. (Diciembre de 2005). "El entrenamiento de resistencia aumenta la abundancia de proteínas LKB1 y PGC-1alfa del músculo esquelético: efectos del tiempo y la intensidad". Revista americana de fisiología. Endocrinología y Metabolismo . 289 (6): E960-8. doi :10.1152/ajpendo.00237.2005. PMID  16014350. S2CID  14454264.
  45. ^ Jørgensen SB, Treebak JT, Viollet B, Schjerling P, Vaulont S, Wojtaszewski JF, Richter EA (enero de 2007). "Papel de AMPKalpha2 en la expresión de GLUT4, hexoquinasa II y proteínas mitocondriales basales, inducidas por entrenamiento y AICAR en músculo de ratón". Revista americana de fisiología. Endocrinología y Metabolismo . 292 (1): E331-9. doi :10.1152/ajpendo.00243.2006. PMID  16954334.
  46. ^ Röckl KS, Hirshman MF, Brandauer J, Fujii N, Witters LA, Goodyear LJ (agosto de 2007). "Adaptación del músculo esquelético al entrenamiento físico: la proteína quinasa activada por AMP media el cambio del tipo de fibra muscular". Diabetes . 56 (8): 2062–9. doi : 10.2337/db07-0255 . PMID  17513699.
  47. ^ Schulz TJ, Zarse K, Voigt A, Urban N, Birringer M, Ristow M (octubre de 2007). "La restricción de glucosa prolonga la vida útil de Caenorhabditis elegans al inducir la respiración mitocondrial y aumentar el estrés oxidativo". Metabolismo celular . 6 (4): 280–93. doi : 10.1016/j.cmet.2007.08.011 . PMID  17908557.
  48. ^ Winder WW (septiembre de 2001). "Señalización y detección de energía mediante proteína quinasa activada por AMP en el músculo esquelético". Revista de fisiología aplicada . 91 (3): 1017–28. doi :10.1152/jappl.2001.91.3.1017. PMID  11509493. S2CID  18290292.
  49. ^ Minokoshi Y, Kim YB, Peroni OD, Fryer LG, Müller C, Carling D, Kahn BB (enero de 2002). "La leptina estimula la oxidación de los ácidos grasos activando la proteína quinasa activada por AMP". Naturaleza . 415 (6869): 339–43. Código Bib :2002Natur.415..339M. doi :10.1038/415339a. PMID  11797013. S2CID  4409274.
  50. ^ ab Sakamoto K, Göransson O, Hardie DG, Alessi DR (agosto de 2004). "Actividad de las quinasas relacionadas con LKB1 y AMPK en el músculo esquelético: efectos de la contracción, fenformina y AICAR". Revista americana de fisiología. Endocrinología y Metabolismo . 287 (2): E310-7. doi :10.1152/ajpendo.00074.2004. PMID  15068958.
  51. ^ Minokoshi Y, Alquier T, Furukawa N, Kim YB, Lee A, Xue B, et al. (Abril de 2004). "La AMP-quinasa regula la ingesta de alimentos respondiendo a señales hormonales y de nutrientes en el hipotálamo". Naturaleza . 428 (6982): 569–74. Código Bib :2004Natur.428..569M. doi : 10.1038/naturaleza02440. PMID  15058305. S2CID  4302317.
  52. ^ Taylor EB, Ellingson WJ, Lamb JD, Chesser DG, Winder WW (junio de 2005). "Los ésteres de acil-CoA de cadena larga inhiben la fosforilación de la proteína quinasa activada por AMP en treonina-172 por LKB1/STRAD/MO25". Revista americana de fisiología. Endocrinología y Metabolismo . 288 (6): E1055-61. doi :10.1152/ajpendo.00516.2004. PMID  15644453.
  53. ^ Hardie DG, Hawley SA (diciembre de 2001). "Proteína quinasa activada por AMP: revisión de la hipótesis de la carga energética". Bioensayos . 23 (12): 1112–9. doi :10.1002/bies.10009. PMID  11746230. S2CID  39876683.
  54. ^ Thomson DM, Porter BB, Tall JH, Kim HJ, Barrow JR, Winder WW (enero de 2007). "La deficiencia de LKB1 del músculo esquelético y del corazón provoca una disminución de la carrera voluntaria y una reducción de la expresión de la enzima marcadora mitocondrial del músculo en ratones". Revista americana de fisiología. Endocrinología y Metabolismo . 292 (1): E196-202. doi :10.1152/ajpendo.00366.2006. PMID  16926377.
  55. ^ ab Park, SH; Paulsen, SR; Gammon, SR; Mostaza, KJ; Hardie, director general; Winder, WW (diciembre de 2002). "Efectos del estado de la tiroides sobre la proteína quinasa activada por AMP y la expresión de acetil-CoA carboxilasa en el músculo". Revista de fisiología aplicada . 93 (6): 2081–2088. doi :10.1152/japplphysiol.00504.2002. ISSN  8750-7587. PMID  12433937.
  56. ^ Branvold, DJ; Allred, DR; Beckstead, DJ; Kim, HJ; Fillmore, N.; Condón, BM; Marrón, JD; Sudweeks, SN; Thomson, DM; Winder, WW (octubre de 2008). "Efectos de la hormona tiroidea sobre LKB1, MO25, fosfo-AMPK, fosfo-CREB y PGC-1alfa en músculo de rata". Revista de fisiología aplicada . 105 (4): 1218-1227. doi :10.1152/japplphysiol.00997.2007. ISSN  8750-7587. PMID  18669938. S2CID  2019764.
  57. ^ Devanadera, WW; Hardie, director general; Mostaza, KJ; Greenwood, LJ; Paxton, BE; Parque, SH; Rubink, DS; Taylor, EB (febrero de 2003). "Regulación a largo plazo de la proteína quinasa activada por AMP y acetil-CoA carboxilasa en el músculo esquelético". Transacciones de la sociedad bioquímica . 31 (Parte 1): 182–185. doi :10.1042/bst0310182. ISSN  0300-5127. PMID  12546681.
  58. ^ Sun G, Tarasov AI, McGinty J, McDonald A, da Silva Xavier G, Gorman T, et al. (mayo de 2010). "La ablación de la proteína quinasa alfa1 y alfa2 activada por AMP de células beta pancreáticas de ratón y neuronas RIP2.Cre suprime la liberación de insulina in vivo". Diabetología . 53 (5): 924–36. doi :10.1007/s00125-010-1692-1. PMC 4306708 . PMID  20221584. 
  59. ^ Beall C, Piipari K, Al-Qassab H, Smith MA, Parker N, Carling D, et al. (Julio de 2010). "La pérdida de la subunidad alfa2 de la proteína quinasa activada por AMP en las células beta de ratón altera la secreción de insulina estimulada por la glucosa e inhibe su sensibilidad a la hipoglucemia". La revista bioquímica . 429 (2): 323–33. doi :10.1042/BJ20100231. PMC 2895783 . PMID  20465544. 
  60. ^ Claret M, Smith MA, Batterham RL, Selman C, Choudhury AI, Fryer LG y col. (Agosto de 2007). "La AMPK es esencial para la regulación de la homeostasis energética y la detección de glucosa por parte de las neuronas POMC y AgRP". La Revista de Investigación Clínica . 117 (8): 2325–36. doi :10.1172/JCI31516. PMC 1934578 . PMID  17671657. 
  61. ^ Beall C, Hamilton DL, Gallagher J, Logie L, Wright K, Soutar MP y col. (Septiembre 2012). "Las células GT1-7 hipotalámicas de ratón demuestran un comportamiento intrínseco de detección de glucosa dependiente de AMPK". Diabetología . 55 (9): 2432–44. doi :10.1007/s00125-012-2617-y. PMC 3411292 . PMID  22760787. 
  62. ^ Alquier T, Kawashima J, Tsuji Y, Kahn BB (marzo de 2007). "Papel de la proteína quinasa hipotalámica activada por adenosina 5'-monofosfato en la respuesta contrarreguladora alterada inducida por neuroglucopenia repetitiva". Endocrinología . 148 (3): 1367–75. doi : 10.1210/en.2006-1039 . PMID  17185376.
  63. ^ McCrimmon RJ, Shaw M, Fan X, Cheng H, Ding Y, Vella MC, et al. (febrero de 2008). "Papel clave de la proteína quinasa activada por AMP en el hipotálamo ventromedial en la regulación de las respuestas hormonales contrarreguladoras a la hipoglucemia aguda". Diabetes . 57 (2): 444–50. doi : 10.2337/db07-0837 . PMID  17977955.
  64. ^ Fan X, Ding Y, Brown S, Zhou L, Shaw M, Vella MC y col. (junio de 2009). "La activación de la proteína quinasa activada por AMP hipotalámico con AICAR amplifica las respuestas contrarreguladoras a la hipoglucemia en un modelo de diabetes tipo 1 en roedores". Revista americana de fisiología. Fisiología Reguladora, Integrativa y Comparada . 296 (6): R1702-8. doi :10.1152/ajpregu.90600.2008. PMC 2692788 . PMID  19357294. 
  65. ^ Li M, Zhang CS, Zong Y, Feng JW, Ma T, Hu M, et al. (septiembre de 2019). "Los canales V de potencial receptor transitorio son esenciales para la detección de glucosa mediante aldolasa y AMPK". Metabolismo celular . 30 (3): 508–524.e12. doi :10.1016/j.cmet.2019.05.018. PMC 6720459 . PMID  31204282. 
  66. ^ abc Jia J, Bissa B, Brecht L, Allers L, Choi SW, Gu Y, et al. (Marzo de 2020). "AMPK, un regulador del metabolismo y la autofagia, se activa mediante daño lisosomal a través de un nuevo sistema de transducción de señales de ubiquitina dirigido por galectina". Célula molecular . 77 (5): 951–969.e9. doi :10.1016/j.molcel.2019.12.028. PMC 7785494 . PMID  31995728. 
  67. ^ Papadopoulos C, Kirchner P, Bug M, Grum D, Koerver L, Schulze N, et al. (Enero de 2017). "VCP/p97 coopera con YOD1, UBXD1 y PLAA para impulsar la eliminación de lisosomas rotos mediante autofagia". La Revista EMBO . 36 (2): 135-150. doi :10.15252/embj.201695148. PMC 5242375 . PMID  27753622. 
  68. ^ abc Jia J, Claude-Taupin A, Gu Y, Choi SW, Peters R, Bissa B, et al. (enero de 2020). "Galectin-3 coordina un sistema celular para la reparación y eliminación lisosomal". Célula del desarrollo . 52 (1): 69–87.e8. doi :10.1016/j.devcel.2019.10.025. PMC 6997950 . PMID  31813797. 
  69. ^ Grebe A, Latz E (marzo de 2013). "Cristales de colesterol e inflamación". Informes actuales de Reumatología . 15 (3): 313. doi :10.1007/s11926-012-0313-z. PMC 3623938 . PMID  23412688. 
  70. ^ Chauhan S, Kumar S, Jain A, Ponpuak M, Mudd MH, Kimura T, et al. (octubre de 2016). "TRIM y galectinas cooperan globalmente y TRIM16 y galectina-3 codirigen la autofagia en la homeostasis del daño de la endomembrana". Célula del desarrollo . 39 (1): 13–27. doi :10.1016/j.devcel.2016.08.003. PMC 5104201 . PMID  27693506. 
  71. ^ Yue Y, Nabar NR, Shi CS, Kamenyeva O, Xiao X, Hwang IY y col. (septiembre de 2018). "El marco de lectura abierto 3a del SARS-Coronavirus impulsa la muerte celular necrótica multimodal". Muerte celular y enfermedad . 9 (9): 904. doi :10.1038/s41419-018-0917-y. PMC 6125346 . PMID  30185776. 
  72. ^ Zhang CS, Li M, Ma T, Zong Y, Cui J, Feng JW y col. (octubre de 2016). "La metformina activa AMPK a través de la vía lisosomal". Metabolismo celular . 24 (4): 521–522. doi : 10.1016/j.cmet.2016.09.003 . PMID  27732831.
  73. ^ ab Merrill GM, Kurth E, Hardie DG, Winder WW (2020). "Proteína quinasa activada por AMP: ¿amiga o enemiga en el cáncer?". Revisión anual de la biología del cáncer . 4 : 1–16. doi : 10.1146/annurev-cancerbio-030419-033619 .

enlaces externos