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Extravasación de leucocitos

Los neutrófilos se extravasan de los vasos sanguíneos al sitio de la lesión o infección tisular durante la respuesta inmune innata .

En inmunología , la extravasación leucocitaria (también conocida comúnmente como cascada de adhesión leucocitaria o diapédesis , el paso de células a través de la pared intacta del vaso) es el movimiento de leucocitos (glóbulos blancos) fuera del sistema circulatorio ( extravasación ) y hacia el sitio del daño tisular o infección . Este proceso forma parte de la respuesta inmune innata , que implica el reclutamiento de leucocitos no específicos. Los monocitos también utilizan este proceso en ausencia de infección o daño tisular durante su desarrollo hasta convertirse en macrófagos .

Descripción general

Micrografía que muestra la migración de leucocitos, tinción H&E.

La extravasación de leucocitos se produce principalmente en las vénulas poscapilares , donde se minimizan las fuerzas de cizallamiento hemodinámico . Este proceso se puede entender en varios pasos: [ cita requerida ]

  1. Quimioatracción
  2. Adherencia por rodadura
  3. Adherencia firme
  4. Transmigración (endotelial)

Se ha demostrado que el reclutamiento de leucocitos se detiene cuando se suprime cualquiera de estos pasos.

Los glóbulos blancos (leucocitos) desempeñan la mayoría de sus funciones en los tejidos. Entre ellas se encuentran la fagocitosis de partículas extrañas, la producción de anticuerpos, la secreción de desencadenantes de la respuesta inflamatoria (histamina y heparina) y la neutralización de la histamina. En general, los leucocitos participan en la defensa de un organismo y lo protegen de las enfermedades promoviendo o inhibiendo las respuestas inflamatorias. Los leucocitos utilizan la sangre como medio de transporte para llegar a los tejidos del cuerpo. A continuación se presenta un breve resumen de cada uno de los cuatro pasos que actualmente se cree que intervienen en la extravasación de leucocitos:

Quimioatracción

Tras el reconocimiento y la activación por parte de los patógenos , los macrófagos residentes en el tejido afectado liberan citocinas como IL-1 , TNFα y quimiocinas . IL-1, TNFα y C5a [1] hacen que las células endoteliales de los vasos sanguíneos cercanos al sitio de la infección expresen moléculas de adhesión celular , incluidas las selectinas . Los leucocitos circulantes se localizan hacia el sitio de la lesión o infección debido a la presencia de quimiocinas. [ cita requerida ]

Adherencia por rodadura

Como si fuera un velcro, los ligandos de carbohidratos de los leucocitos circulantes se unen a las moléculas de selectina de la pared interna del vaso, con una afinidad marginal . Esto hace que los leucocitos disminuyan su velocidad y comiencen a rodar por la superficie interna de la pared del vaso. Durante este movimiento de rodadura, se forman y se rompen enlaces transitorios entre las selectinas y sus ligandos .

Por ejemplo, el ligando de carbohidratos para la P-selectina, el ligando de la glucoproteína P-selectina-1 (PSGL-1), es expresado por diferentes tipos de leucocitos (glóbulos blancos). La unión del PSGL-1 en el leucocito a la P-selectina en la célula endotelial permite que el leucocito ruede a lo largo de la superficie endotelial. Esta interacción puede ajustarse mediante el patrón de glucosilación del PSGL-1, de modo que ciertas glucovariantes del PSGL-1 tendrán afinidades únicas para diferentes selectinas, lo que permite en algunos casos que las células migren a sitios específicos dentro del cuerpo (por ejemplo, la piel). [2]

Adherencia firme

Al mismo tiempo, las quimiocinas liberadas por los macrófagos activan los leucocitos rodantes y hacen que las moléculas de integrina de superficie pasen del estado predeterminado de baja afinidad a un estado de alta afinidad. Esto se logra mediante la activación yuxtacrina de las integrinas por las quimiocinas y los factores solubles liberados por las células endoteliales. En el estado activado, las integrinas se unen firmemente a los receptores complementarios expresados ​​en las células endoteliales, con alta afinidad. Esto provoca la inmovilización de los leucocitos, que varía en los vasos que contienen diferentes fuerzas de cizallamiento del flujo sanguíneo en curso. [ cita requerida ]

Transmigración

Los citoesqueletos de los leucocitos se reorganizan de tal manera que los leucocitos se extienden sobre las células endoteliales. De esta forma, los leucocitos extienden pseudópodos y pasan a través de los huecos entre las células endoteliales. Este paso de las células a través de la pared intacta del vaso se llama diapédesis . [3] Estos huecos pueden formarse a través de interacciones de los leucocitos con el endotelio, pero también de forma autónoma a través de la mecánica endotelial. [4] La transmigración del leucocito se produce cuando las proteínas PECAM , que se encuentran en las superficies del leucocito y de la célula endotelial, interactúan y tiran eficazmente de la célula a través del endotelio. Una vez atravesado el endotelio, el leucocito debe penetrar la membrana basal . El mecanismo de penetración es discutido, pero puede implicar la digestión proteolítica de la membrana, la fuerza mecánica o ambas. [5] El proceso completo de escape de los vasos sanguíneos se conoce como diapédesis . Una vez en el líquido intersticial , los leucocitos migran a lo largo de un gradiente quimiotáctico hacia el sitio de la lesión o infección.

Biología molecular

Introducción

Extravasación de leucocitos

Las fases de la extravasación leucocitaria representadas en el esquema son: aproximación, captura, rodamiento, activación, unión, fortalecimiento de la unión y propagación, deslizamiento intravascular, migración paracelular o migración transcelular.

Selectinas

Las selectinas se expresan poco después de la activación de las células endoteliales por parte de los macrófagos tisulares por citocinas. Las células endoteliales activadas expresan inicialmente moléculas de P-selectina, pero dentro de las dos horas posteriores a la activación se favorece la expresión de E-selectina. Las selectinas endoteliales se unen a los carbohidratos de las glucoproteínas transmembrana de los leucocitos , incluida la sialil-Lewis X.

La expresión suprimida de algunas selectinas da como resultado una respuesta inmunitaria más lenta. Si no se produce L-selectina, la respuesta inmunitaria puede ser diez veces más lenta, ya que las P-selectinas (que también pueden ser producidas por los leucocitos) se unen entre sí. Las P-selectinas pueden unirse entre sí con alta afinidad, pero se producen con menos frecuencia porque la densidad del sitio receptor es menor que con las moléculas más pequeñas de E-selectina. Esto aumenta la velocidad inicial de desplazamiento de los leucocitos, prolongando la fase de desplazamiento lento.

Integrinas

Las integrinas implicadas en la adhesión celular se expresan principalmente en los leucocitos. Las integrinas β2 de los leucocitos rodantes se unen a las moléculas de adhesión celular endotelial y detienen el movimiento celular.

La activación celular a través de quimiocinas extracelulares hace que las integrinas β2 preformadas se liberen de los depósitos celulares. Las moléculas de integrina migran a la superficie celular y se congregan en parches de alta avidez . Los dominios intracelulares de integrina se asocian con el citoesqueleto leucocitario, a través de la mediación con factores citosólicos como talina , α-actinina y vinculina . Esta asociación causa un cambio conformacional en la estructura terciaria de la integrina , lo que permite el acceso del ligando al sitio de unión. Los cationes divalentes (p. ej., Mg 2+ ) también son necesarios para la unión integrina-ligando.

Los ligandos de integrina ICAM-1 y VCAM-1 son activados por citocinas inflamatorias, mientras que ICAM-2 es expresado constitutivamente por algunas células endoteliales pero regulado negativamente por citocinas inflamatorias. ICAM-1 e ICAM-2 comparten dos dominios N-terminales homólogos ; ambos pueden unirse a LFA-1.

Durante la quimiotaxis, el movimiento celular se ve facilitado por la unión de las integrinas β1 a los componentes de la matriz extracelular : VLA-3, VLA-4 y VLA-5 a la fibronectina y VLA-2 y VLA-3 al colágeno y otros componentes de la matriz extracelular.

Citocinas

La extravasación está regulada por el entorno de citocinas de fondo producido por la respuesta inflamatoria y es independiente de antígenos celulares específicos . Las citocinas liberadas en la respuesta inmunitaria inicial inducen vasodilatación y reducen la carga eléctrica a lo largo de la superficie del vaso. El flujo sanguíneo se ralentiza, lo que facilita la unión intermolecular.

Avances recientes

En 1976, las imágenes SEM mostraron que había receptores de localización en las puntas de los leucocitos similares a microvellosidades que permitirían a los glóbulos blancos salir del vaso sanguíneo y entrar en el tejido. [7] Desde la década de 1990, se ha estudiado en profundidad la identidad de los ligandos implicados en la extravasación de leucocitos. Este tema finalmente se pudo estudiar a fondo en condiciones de esfuerzo cortante fisiológico utilizando una cámara de flujo típica. [8] Desde los primeros experimentos, se observó un fenómeno extraño. Se observó que las interacciones de unión entre los glóbulos blancos y las paredes de los vasos se volvían más fuertes bajo una fuerza mayor. Se descubrió que las selectinas (E-selectina, L-selectina y P-selectina) estaban implicadas en este fenómeno. El requisito del umbral de esfuerzo cortante parece contraintuitivo porque el aumento del esfuerzo cortante eleva la fuerza aplicada a los enlaces adhesivos y parecería que esto debería aumentar la capacidad de desalojo. Sin embargo, las células giran más lentamente y con mayor regularidad hasta que se alcanza un esfuerzo cortante óptimo donde la velocidad de giro es mínima. Este fenómeno paradójico no ha sido explicado satisfactoriamente a pesar del interés generalizado.

Una hipótesis inicialmente descartada que ha ido ganando interés es la hipótesis del enlace de captura, donde el aumento de la fuerza sobre la célula ralentiza las tasas de desprendimiento y alarga la vida útil del enlace y estabiliza el paso de rodadura de la extravasación de leucocitos. [9] La adhesión celular mejorada por el flujo es todavía un fenómeno inexplicable que podría resultar de un aumento dependiente del transporte en las tasas de adhesión o una disminución dependiente de la fuerza en las tasas de desprendimiento de los enlaces adhesivos. La L-selectina requiere un mínimo particular de cizallamiento para mantener el rodamiento de los leucocitos sobre el ligando-1 de la glucoproteína P-selectina (PSGL-1) y otros ligandos vasculares. Se ha planteado la hipótesis de que las fuerzas bajas disminuyen las tasas de desprendimiento de L-selectina-PSGL-1 (enlaces de captura), mientras que las fuerzas más altas aumentan las tasas de desprendimiento (enlaces deslizantes). Los experimentos han encontrado que una disminución dependiente de la fuerza en las tasas de desprendimiento dictaba el rodamiento mejorado por el flujo de las microesferas o neutrófilos portadores de L-selectina sobre PSGL-1. [5] Los enlaces de captura permiten que el aumento de la fuerza convierta las duraciones de vida cortas de los enlaces en duraciones de vida largas, lo que disminuye las velocidades de rodadura y aumenta la regularidad de los pasos de rodadura a medida que el esfuerzo cortante aumenta desde el umbral hasta un valor óptimo. A medida que aumenta el esfuerzo cortante, las transiciones a enlaces deslizantes acortan sus duraciones de vida de los enlaces y aumentan las velocidades de rodadura y disminuyen la regularidad de rodadura. Se plantea la hipótesis de que las alteraciones dependientes de la fuerza de las duraciones de vida de los enlaces gobiernan la adhesión celular dependiente de L-selectina por debajo y por encima del óptimo de esfuerzo cortante. Estos hallazgos establecen una función biológica para los enlaces de captura como un mecanismo para la adhesión celular mejorada por el flujo. [10] Si bien los leucocitos parecen experimentar un comportamiento de enlace de captura con el aumento del flujo que conduce a los pasos de anclaje y rodadura en la extravasación de leucocitos, la adhesión firme se logra a través de otro mecanismo, la activación de la integrina.

Otros ejemplos biológicos de un mecanismo de enlace de captura se observan en bacterias que se adhieren firmemente a las paredes del tracto urinario en respuesta a altas velocidades de fluido y grandes fuerzas de corte ejercidas sobre las células y bacterias con puntas adhesivas de fimbrias. [9] [11] Los mecanismos esquemáticos de cómo se propone que el aumento de la fuerza de corte causa interacciones de unión más fuertes entre las bacterias y las células objetivo muestran que el enlace de captura actúa de manera muy similar a una trampa de dedo china. Para un enlace de captura, la fuerza sobre la célula tira de la punta adhesiva de una fimbria para cerrarla más fuerte sobre su célula objetivo. A medida que aumenta la fuerza de las fuerzas, más fuerte es el enlace entre la fimbria y el receptor celular en la superficie de la célula objetivo. [11] Para un enlace críptico, la fuerza hace que la fimbria gire hacia la célula objetivo y tenga más sitios de unión capaces de unirse a los ligandos de la célula objetivo, principalmente moléculas de azúcar. Esto crea una interacción de enlace más fuerte entre las bacterias y la célula objetivo.

Advenimiento de los dispositivos microfluídicos

Las cámaras de flujo de placas paralelas se encuentran entre las cámaras de flujo más populares utilizadas para estudiar la interacción leucocito-endotelio in vitro. Se han utilizado para investigación desde finales de la década de 1980. [12] Aunque las cámaras de flujo han sido una herramienta importante para estudiar el rodamiento de leucocitos, existen varias limitaciones cuando se trata de estudiar las condiciones fisiológicas in vivo, ya que carecen de correspondencia con la geometría in vivo, incluida la relación escala/aspecto (microvasculatura frente a modelos de vasos grandes), las condiciones de flujo (por ejemplo, flujos convergentes frente a divergentes en bifurcaciones) y requieren grandes volúmenes de reactivos (~ ml) debido a su gran tamaño (altura > 250 μm y ancho > 1 mm). [13] Con el advenimiento de los dispositivos basados ​​en microfluidos, se han superado estas limitaciones. La CFD Research Corporation (CFDRC) produjo un nuevo modelo in vitro, llamado red microvascular sintética (SMN) SynVivo y lo desarrolló utilizando el proceso de litografía suave basado en polidimetilsiloxano (PDMS). El SMN puede recrear la vasculatura compleja in vivo, incluidas las características geométricas, las condiciones de flujo y los volúmenes de reactivos, proporcionando así un entorno biológicamente realista para estudiar el comportamiento de la extravasación celular, pero también para la administración y el descubrimiento de fármacos. [14] [15]

Deficiencia de adhesión leucocitaria

La deficiencia de adhesión leucocitaria (LAD) es una enfermedad genética asociada con un defecto en el proceso de extravasación leucocitaria, causado por una cadena β2 de integrina defectuosa (presente en LFA-1 y Mac-1). Esto afecta la capacidad de los leucocitos para detenerse y realizar diapédesis. Las personas con LAD sufren infecciones bacterianas recurrentes y problemas de cicatrización de heridas. La neutrofilia es un sello distintivo de la LAD.

Disfunción de los neutrófilos

En enfermedades generalizadas como la sepsis, la extravasación de leucocitos entra en una etapa descontrolada, en la que los neutrófilos blancos comienzan a destruir los tejidos del huésped a un ritmo sin precedentes, cobrándose la vida de unas 200.000 personas tan solo en los Estados Unidos. [16] La disfunción de los neutrófilos suele estar precedida por algún tipo de infección, que desencadena patrones moleculares asociados a patógenos (PAMP). A medida que se intensifica la extravasación de leucocitos, los neutrófilos dañan más tejidos, que liberan radicales de oxígeno y proteasas. [16]

Estudios recientes con la red microvascular sintética (SMN) SynVivo permitieron estudiar terapias antiinflamatorias para tratar patologías causadas por disfunción de neutrófilos. La SMN permite el análisis exhaustivo de cada etapa de la extravasación leucocitaria, proporcionando así una metodología para cuantificar el efecto del fármaco en impedir la extravasación leucocitaria. Algunos de los hallazgos recientes demuestran el efecto de la hidrodinámica en las interacciones neutrófilo-endotelio. En otras palabras, la adhesión de los neutrófilos se ve fuertemente afectada por las fuerzas de cizallamiento, así como por las interacciones moleculares. Además, a medida que disminuye la velocidad de cizallamiento (por ejemplo, en las vénulas poscapilares), la inmovilización de los leucocitos se vuelve más fácil y, por lo tanto, más frecuente. Lo opuesto también es cierto; los vasos en los que las fuerzas de cizallamiento son altas dificultan la inmovilización de los leucocitos. Esto tiene grandes implicaciones en varias enfermedades, donde las interrupciones en el flujo sanguíneo afectan gravemente la respuesta del sistema inmunológico al impedir o acelerar la inmovilización de los leucocitos. Tener este conocimiento permite realizar mejores estudios del efecto de los fármacos sobre la extravasación de leucocitos. [13] [16] [14]

Notas al pie

  1. ^ Monk PN, Scola AM, Madala P, Fairlie DP (octubre de 2007). "Función, estructura y potencial terapéutico de los receptores C5a del complemento". British Journal of Pharmacology . 152 (4): 429–48. doi :10.1038/sj.bjp.0707332. PMC  2050825 . PMID  17603557.
  2. ^ Maverakis E, Kim K, Shimoda M, Gershwin ME, Patel F, Wilken R, Raychaudhuri S, Ruhaak LR, Lebrilla CB (febrero de 2015). "Glicanos en el sistema inmunológico y la teoría de los glicanos alterados de la autoinmunidad: una revisión crítica". Revista de autoinmunidad . 57 (6): 1–13. doi :10.1016/j.jaut.2014.12.002. PMC 4340844 . PMID  25578468. 
  3. ^ Beekhuizen, Henry; Furth, Ralph van (1998). "Diapédesis" . Enciclopedia de Inmunología. págs. 757–760. doi :10.1006/rwei.1999.0200. ISBN 978-0-12-226765-9.
  4. ^ Escribano J, Chen MB, Moeendarbary E, Cao X, Shenoy V, Garcia-Aznar JM, et al. (mayo de 2019). "El equilibrio de las fuerzas mecánicas impulsa la formación de la brecha endotelial y puede facilitar la extravasación de células cancerosas e inmunitarias". PLOS Computational Biology . 15 (5): e1006395. arXiv : 1811.09326 . Bibcode :2019PLSCB..15E6395E. doi : 10.1371/journal.pcbi.1006395 . PMC 6497229 . PMID  31048903. 
  5. ^ Sorokin L (octubre de 2010). "El impacto de la matriz extracelular en la inflamación". Nature Reviews. Inmunología . 10 (10). Nature Publishing Group: 712–23. doi :10.1038/nri2852. PMID  20865019. S2CID  18130467.
  6. ^ McEver RP, Beckstead JH, Moore KL, Marshall-Carlson L, Bainton DF (julio de 1989). "GMP-140, una proteína de membrana de los gránulos alfa de las plaquetas, también es sintetizada por las células endoteliales vasculares y se localiza en los cuerpos de Weibel-Palade". The Journal of Clinical Investigation . 84 (1): 92–9. doi :10.1172/JCI114175. PMC 303957 . PMID  2472431. 
  7. ^ Anderson AO, Anderson ND (noviembre de 1976). "Emigración de linfocitos desde las vénulas endoteliales altas en los ganglios linfáticos de la rata". Inmunología . 31 (5): 731–48. PMC 1445135 . PMID  992709. 
  8. ^ Wiese G, Barthel SR, Dimitroff CJ (febrero de 2009). "Análisis del movimiento leucocitario fisiológico mediado por E-selectina en el endotelio microvascular". Journal of Visualized Experiments . 24 (24): 1009. doi :10.3791/1009. PMC 2730781 . PMID  19229187. 
  9. ^ ab Thomas WE, Nilsson LM, Forero M, Sokurenko EV, Vogel V (septiembre de 2004). "Adhesión de 'pegado y rodado' dependiente de cizallamiento de Escherichia coli fimbriada tipo 1". Microbiología molecular . 53 (5): 1545–57. doi : 10.1111/j.1365-2958.2004.04226.x . PMID  15387828. S2CID  24777923.
  10. ^ Yago T, Wu J, Wey CD, Klopocki AG, Zhu C, McEver RP (septiembre de 2004). "Los enlaces de captura gobiernan la adhesión a través de L-selectina en el umbral de cizallamiento". The Journal of Cell Biology . 166 (6): 913–23. doi :10.1083/jcb.200403144. PMC 2172126 . PMID  15364963. 
  11. ^ ab Thomas WE, Trintchina E, Forero M, Vogel V, Sokurenko EV (junio de 2002). "Adhesión bacteriana a células diana mejorada por la fuerza de corte". Cell . 109 (7): 913–23. doi : 10.1016/S0092-8674(02)00796-1 . PMID  12110187.
  12. ^ Nabel G, Baltimore D (1987). "Un factor de transcripción inducible activa la expresión del virus de la inmunodeficiencia humana en las células T". Nature . 326 (6114): 711–3. Bibcode :1987Natur.326..711N. doi :10.1038/326711a0. PMID  3031512. S2CID  4317942.
  13. ^ ab Prabhakarpandian B, Shen MC, Pant K, Kiani MF (noviembre de 2011). "Dispositivos microfluídicos para modelar interacciones célula-célula y partícula-célula en la microvasculatura". Microvascular Research . 82 (3): 210–20. doi :10.1016/j.mvr.2011.06.013. PMC 3215799 . PMID  21763328. 
  14. ^ ab Smith AM, Prabhakarpandian B, Pant K (mayo de 2014). "Generación de un mapa de adhesión por cizallamiento utilizando redes microvasculares sintéticas SynVivo". Journal of Visualized Experiments . 87 (87): e51025. doi :10.3791/51025. PMC 4207183 . PMID  24893648. 
  15. ^ Lamberti G, Prabhakarpandian B, Garson C, Smith A, Pant K, Wang B, Kiani MF (agosto de 2014). "Ensayo microfluídico bioinspirado para el modelado in vitro de interacciones leucocito-endotelio". Química analítica . 86 (16): 8344–51. doi :10.1021/ac5018716. PMC 4139165 . PMID  25135319. 
  16. ^ abc Soroush F, Zhang T, King DJ, Tang Y, Deosarkar S, Prabhakarpandian B, Kilpatrick LE, Kiani MF (noviembre de 2016). "Un nuevo ensayo microfluídico revela un papel clave para la proteína quinasa C δ en la regulación de la interacción neutrófilo-endotelio humano". Journal of Leukocyte Biology . 100 (5): 1027–1035. doi :10.1189/jlb.3MA0216-087R. PMC 5069089 . PMID  27190303. 

Referencias