La ciclina D es un miembro de la familia de proteínas ciclina que participa en la regulación de la progresión del ciclo celular . La síntesis de ciclina D se inicia durante G1 e impulsa la transición de fase G1/S . La proteína ciclina D tiene una longitud de entre 155 (en el mejillón cebra ) y 477 (en Drosophila ) aminoácidos . [2]
Una vez que las células alcanzan un tamaño celular crítico (y si no hay pareja de apareamiento presente en la levadura) y si hay factores de crecimiento y mitógenos (para organismos multicelulares) o nutrientes (para organismos unicelulares), las células ingresan al ciclo celular. En general, todas las etapas del ciclo celular en humanos están separadas cronológicamente y son desencadenadas por complejos ciclina- Cdk que se expresan periódicamente y tienen una función parcialmente redundante. Las ciclinas son proteínas eucariotas que forman holoenzimas con proteínas quinasas dependientes de ciclina (Cdk), que activan. La abundancia de ciclinas generalmente está regulada por la síntesis y degradación de proteínas a través de vías dependientes de APC/C y CRL .
La ciclina D es una de las principales ciclinas producidas en términos de su importancia funcional. Interactúa con cuatro Cdks: Cdk2 , 4 , 5 y 6 . En las células en proliferación, la acumulación del complejo ciclina D-Cdk4/6 es de gran importancia para la progresión del ciclo celular. Es decir, el complejo ciclina D-Cdk4/6 fosforila parcialmente la proteína supresora de tumores del retinoblastoma ( Rb ), cuya inhibición puede inducir la expresión de algunos genes (por ejemplo: ciclina E ) importantes para la progresión de la fase S.
Drosophila y muchos otros organismos sólo tienen una proteína ciclina D. En ratones y humanos, se han identificado dos proteínas ciclina D más. Los tres homólogos, denominados ciclina D1 , ciclina D2 y ciclina D3, se expresan en la mayoría de las células en proliferación y las cantidades relativas expresadas difieren en varios tipos de células. [3]
Los homólogos de ciclina D más estudiados se encuentran en levaduras y virus .
El homólogo de levadura de la ciclina D, denominado CLN3 , interactúa con Cdc28 (proteína de control de la división celular) durante G1.
En virus, como el herpesvirus Saimiriine 2 ( Herpesvirus saimiri ) y el herpesvirus humano 8 ( HHV-8 / herpesvirus asociado al sarcoma de Kaposi ), los homólogos de ciclina D (un miembro de un par de cromosomas) han adquirido nuevas funciones para manipular el metabolismo de la célula huésped para el beneficio de los virus. [4] La ciclina D viral se une a la Cdk6 humana e inhibe la Rb fosforilándola, lo que da como resultado factores de transcripción libres que resultan en la transcripción de proteínas que promueve el paso a través de la fase G1 del ciclo celular. Además de Rb, el complejo viral de ciclina D-Cdk6 también se dirige a p27 Kip , un inhibidor de Cdk de las ciclinas E y A. Además, la ciclina viral D-Cdk6 es resistente a los inhibidores de Cdk, como p21 CIP1/ WAF1 y p16 INK4a , que en humanos Las células inhiben Cdk4 impidiendo que forme un complejo activo con ciclina D. [4] [5]
La ciclina D posee una estructura terciaria similar a otras ciclinas llamada pliegue de ciclina. Contiene un núcleo de dos dominios compactos y cada uno tiene cinco hélices alfa. El primer haz de cinco hélices es una caja de ciclina conservada, una región de aproximadamente 100 residuos de aminoácidos en todas las ciclinas, que es necesaria para la unión y activación de Cdk. El segundo haz de cinco hélices está compuesto por la misma disposición de hélices, pero la secuencia primaria de los dos subdominios es distinta. [6] Las tres ciclinas tipo D (D1, D2, D3) tienen el mismo parche hidrofóbico de hélice alfa 1. Sin embargo, está compuesto de diferentes residuos de aminoácidos como el mismo parche en las ciclinas E, A y B. [6]
Los factores de crecimiento estimulan Ras /Raf/ ERK que inducen la producción de ciclina D. [7] Uno de los miembros de las vías, MAPK activa un factor de transcripción Myc , que altera la transcripción de genes importantes en el ciclo celular, entre los que se encuentra la ciclina D. De esta forma, la ciclina D se sintetiza mientras el factor de crecimiento esté presente. .
Los niveles de ciclina D en las células en proliferación se mantienen mientras los factores de crecimiento estén presentes; un actor clave para la transición G1/S son los complejos activos de ciclina D-Cdk4/6. La ciclina D no tiene ningún efecto sobre la transición G1/S a menos que forme un complejo con Cdk 4 o 6.
Uno de los sustratos más conocidos de ciclina D/Cdk4 y -6 es la proteína supresora de tumores de retinoblastoma ( Rb ). Rb es un importante regulador de genes responsables de la progresión a lo largo del ciclo celular, en particular a través de la fase G1/S.
Un modelo propone que las cantidades de ciclina D, y por lo tanto la actividad de ciclina D-Cdk4 y -6, aumentan gradualmente durante G1 en lugar de oscilar en un patrón establecido como lo hacen las ciclinas S y M. Esto sucede en respuesta a sensores de señales externas reguladoras del crecimiento y del crecimiento celular, y como resultado la Rb se fosforila. Rb reduce su unión a E2F y, por lo tanto, permite la activación mediada por E2F de la transcripción de ciclina E y ciclina A, que se unen a Cdk1 y Cdk2 respectivamente para crear complejos que continúan con la fosforilación de Rb. [8] [9] Los complejos de quinasa dependientes de ciclina A y E también funcionan para inhibir la subunidad activadora Cdh1 de la ubiquitina ligasa E3 APC/C mediante la fosforilación, que estabiliza sustratos como la ciclina A. [10] La activación coordinada de esta secuencia de quinasas positivas interrelacionadas Los circuitos de retroalimentación a través de las ciclinas y las quinasas dependientes de ciclina impulsan el compromiso con la división celular hasta y más allá del punto de control G1/S.
Otro modelo propone que los niveles de ciclina D permanezcan casi constantes durante G1. [11] Rb es monofosforilada durante la etapa temprana a media de G1 por la ciclina D-Cdk4,6, lo que se opone a la idea de que su actividad aumenta gradualmente. La Rb monofosforilada dependiente de ciclina D todavía interactúa con los factores de transcripción E2F de una manera que inhibe la transcripción de las enzimas que impulsan la transición G1/S. Más bien, la actividad de transcripción dependiente de E2F aumenta cuando la de Cdk2 aumenta e hiperfosforila Rb hacia el final de G1. [12] Es posible que Rb no sea el único objetivo de la ciclina D para promover la proliferación celular y la progresión a lo largo del ciclo celular. El complejo ciclina D-Cdk4,6, mediante la fosforilación e inactivación de enzimas metabólicas, también influye en la supervivencia celular. Mediante un análisis detallado de diferentes hélices de acoplamiento de Rb, se identificó un motivo de secuencia de hélice de consenso, que puede utilizarse para identificar posibles sustratos no canónicos que la ciclina D-Cdk4,6 podría utilizar para promover la proliferación. [13]
Las mutaciones de acoplamiento basadas en RxL y LxCxE afectan ampliamente a los complejos ciclina-Cdk. Las mutaciones de residuos clave de Rb que previamente se habían observado que eran necesarios para las interacciones de acoplamiento del complejo Cdk dan como resultado una actividad quinasa general reducida hacia Rb. La hendidura de unión de LxCxE en el dominio de bolsillo Rb, que se ha demostrado que interactúa con proteínas como la ciclina D y las oncoproteínas virales, tiene solo una reducción marginal de 1,7 veces en la fosforilación por la ciclina D-Cdk4,6 cuando se elimina. De manera similar, cuando se elimina el motivo RxL, que interactúa con las ciclinas E y A de la fase S, la actividad de la ciclina D-Cdk4,6 tiene una reducción de 4,1 veces. Por lo tanto, los sitios de acoplamiento basados en RxL y LxCxE tienen interacciones con la ciclina D-Cdk4,6 como lo hacen con otras ciclinas, y su eliminación tiene un efecto modesto en la progresión de G1. [13]
Los complejos de ciclina D-Cdk 4,6 se dirigen a Rb para la fosforilación mediante el acoplamiento de una hélice C-terminal. Cuando se truncan los 37 residuos de aminoácidos finales, se había demostrado previamente que los niveles de fosforilación de Rb se reducen y se induce la detención de G1. [14] Los ensayos cinéticos han demostrado que con el mismo truncamiento, la reducción de la fosforilación de Rb por la ciclina D1-Cdk4,6 es 20 veces y la constante de Michaelis-Menten (Km) aumenta significativamente. La fosforilación de Rb por la ciclina A-Cdk2, la ciclina B-Cdk1 y la ciclina E-Cdk2 no se ve afectada. [13]
El extremo C tiene una extensión de 21 aminoácidos con propensión a hélice alfa. La eliminación de esta hélice o su alteración mediante sustituciones de residuos de prolina también muestran una reducción significativa en la fosforilación de Rb. La orientación de los residuos, junto con las propiedades ácido-base y las polaridades son fundamentales para el acoplamiento. Por lo tanto, los sitios de acoplamiento LxCxE, RxL y hélice interactúan con diferentes partes de la ciclina D, pero la alteración de dos de los tres mecanismos puede alterar la fosforilación de Rb in vitro. [13] La unión de la hélice, quizás la más importante, funciona como un requisito estructural. Hace que la evolución sea más difícil, lo que hace que el complejo ciclina D-Cdk4/6 tenga un número relativamente pequeño de sustratos en relación con otros complejos ciclina-Cdk. [15] En última instancia, esto contribuye a la fosforilación adecuada de un objetivo clave en Rb.
Los seis complejos de ciclina D-Cdk4,6 (ciclina D1/D2/D3 con Cdk4/6) apuntan a Rb para la fosforilación mediante acoplamiento basado en hélice. El parche hidrofóbico de hélice α 1 compartido que tienen todas las ciclinas D no es responsable de reconocer la hélice C-terminal. Más bien, reconoce las secuencias RxL que son lineales, incluidas aquellas en Rb. A través de experimentos con ciclina D1-Cdk2 purificada, se concluyó que el sitio de acoplamiento de la hélice probablemente se encuentra en la ciclina D en lugar de en Cdk4,6. Como resultado, probablemente otra región de la ciclina D reconozca la hélice C-terminal de Rb.
Dado que la hélice C-terminal de Rb se une exclusivamente a ciclina D-Cdk4,6 y no a otros complejos de ciclina-Cdk dependientes del ciclo celular, a través de experimentos que mutan esta hélice en células HMEC, [16] se ha demostrado de manera concluyente que la interacción ciclina D-Rb es fundamental en las siguientes funciones (1) promover la transición G1/S (2) permitir la disociación de Rb de la cromatina y (3) activación de E2F1.
La ciclina D está regulada por la vía descendente de los receptores de mitógenos a través de la quinasa Ras/MAP y las vías de β-catenina -Tcf/ LEF [17] y PI3K . [18] La MAP quinasa ERK activa los factores de transcripción Myc, AP-1 [7] y Fos [19] que a su vez activan la transcripción de los genes Cdk4 , Cdk6 y ciclina D, y aumentan la biogénesis de los ribosomas . Las GTPasas de la familia Rho , [20] la quinasa unida a integrina [21] y la quinasa de adhesión focal ( FAK ) activan el gen de la ciclina D en respuesta a la integrina . [22]
p27 kip1 y p21 cip1 son inhibidores de quinasa dependientes de ciclina ( CKI ) que regulan negativamente las CDK. Sin embargo, también son promotores del complejo ciclina D-CDK4/6. Sin p27 y p21, los niveles de ciclina D se reducen y el complejo no se forma en niveles detectables. [23]
En eucariotas, la sobreexpresión del factor de iniciación de la traducción 4E ( eIF4E ) conduce a un mayor nivel de proteína ciclina D y una mayor cantidad de ARNm de ciclina D fuera del núcleo. [24] Esto se debe a que eIF4E promueve la exportación de ARNm de ciclina D fuera del núcleo. [25]
La inhibición de la ciclina D mediante inactivación o degradación conduce a la salida y diferenciación del ciclo celular. La inactivación de la ciclina D es provocada por varias proteínas inhibidoras de la quinasa dependiente de ciclina (CKI), como la familia INK4 (p. ej. , p14 , p15 , p16 , p18 ). Las proteínas INK4 se activan en respuesta a una respuesta de estrés hiperproliferativo que inhibe la proliferación celular debido a la sobreexpresión de, por ejemplo, Ras y Myc. Por lo tanto, INK4 se une a las CDK dependientes de ciclina D e inactiva todo el complejo. [3] La glucógeno sintasa quinasa tres beta, GSK3β , provoca la degradación de la ciclina D mediante la fosforilación inhibidora de la treonina 286 de la proteína ciclina D. [26] GSK3β está controlado negativamente por la vía PI3K en forma de fosforilación, que es una de varias formas en que los factores de crecimiento regulan la ciclina D. La cantidad de ciclina D en la célula también puede regularse mediante inducción transcripcional, estabilización de la proteína, su translocación al núcleo y su ensamblaje con Cdk4 y Cdk6. [27]
Se ha demostrado que la inhibición de la ciclina D (ciclina D1 y 2, en particular) podría resultar de la inducción de la proteína WAF1/ CIP1 /p21 por la TFD. Al inhibir la ciclina D, esta inducción también inhibe Ckd2 y 6. Todos estos procesos combinados conducen a una detención de la célula en la etapa G0/G1. [5]
Hay dos formas en que el daño del ADN afecta a las Cdks. "Después del daño al ADN, la ciclina D (ciclina D1) es degradada rápida y transitoriamente por el proteasoma tras su ubiquitilación por la ubiquitina ligasa CRL4 - AMBRA1 ". [28] Esta degradación provoca la liberación de p21 de los complejos de Cdk4, lo que inactiva Cdk2 de una manera independiente de p53. Otra forma en que el daño del ADN se dirige a las Cdks es la inducción de p21 dependiente de p53 , que inhibe el complejo ciclina E-Cdk2. En las células sanas, el proteasoma degrada rápidamente la p53 de tipo salvaje. Sin embargo, el daño del ADN hace que se acumule haciéndolo más estable. [3]
Una simplificación en levadura es que todas las ciclinas se unen a la misma subunidad Cdc, la Cdc28. "Las ciclinas en la levadura están controladas por expresión, inhibición mediante CKI como Far1 y degradación por proteólisis mediada por ubiquitina ". [29]
Dado que muchos cánceres humanos ocurren en respuesta a errores en la regulación del ciclo celular y en las vías intracelulares dependientes del factor de crecimiento, la participación de la ciclina D en el control del ciclo celular y la señalización del factor de crecimiento la convierte en un posible oncogén . En células normales, la sobreproducción de ciclina D acorta la duración de la fase G1 únicamente y, considerando la importancia de la ciclina D en la señalización del factor de crecimiento, los defectos en su regulación podrían ser responsables de la ausencia de regulación del crecimiento en las células cancerosas. La producción descontrolada de ciclina D afecta las cantidades del complejo ciclina D-Cdk4 que se está formando, lo que puede impulsar a la célula a través del punto de control G0/S, incluso cuando los factores de crecimiento no están presentes.
La evidencia de que la ciclina D1 es necesaria para la tumorigénesis incluye el hallazgo de que la inactivación de la ciclina D1 mediante antisentido [30] o eliminación de genes [31] redujo el crecimiento del tumor de mama y del tumor gastrointestinal [32] in vivo. La sobreexpresión de ciclina D1 es suficiente para la inducción de la tumorigénesis mamaria, [33] atribuida a la inducción de la proliferación celular, aumento de la supervivencia celular, [34] inducción de inestabilidad cromosómica, [35] [36] restricción de la autofagia [37] [38] y funciones potencialmente no canónicas. [39]
La sobreexpresión se induce como resultado de la amplificación genética, el factor de crecimiento o la expresión inducida por oncogén por Src, [40] Ras, [7] ErbB2, [30] STAT3, [41] STAT5, [42] degradación de proteínas alterada o translocación cromosómica. La amplificación genética es responsable de la sobreproducción de la proteína ciclina D en el cáncer de vejiga y el carcinoma de esófago , entre otros. [5]
En los casos de sarcomas , cánceres colorrectales y melanomas , se observa sobreproducción de ciclina D, sin embargo, sin amplificación de la región cromosómica que la codifica ( cromosoma 11q 13, supuesto oncogén PRAD1, que ha sido identificado como un evento de translocación en el caso de células del manto). linfoma [43] ). En el adenoma de paratiroides , la hiperproducción de ciclina D es causada por una translocación cromosómica, que colocaría la expresión de ciclina D (más específicamente, ciclina D1) bajo un promotor inadecuado , lo que llevaría a una sobreexpresión. En este caso, el gen de la ciclina D se translocó al gen de la hormona paratiroidea y este evento provocó niveles anormales de ciclina D. [5] Los mismos mecanismos de sobreexpresión de ciclina D se observan en algunos tumores de células B productoras de anticuerpos . Asimismo, en el cáncer de mama humano se observa sobreexpresión de la proteína ciclina D debido a la translocación genética . [5] [44]
Además, el desarrollo del cáncer también se ve favorecido por el hecho de que la proteína supresora de tumores del retinoblastoma (Rb), uno de los sustratos clave del complejo ciclina D-Cdk 4/6, muta con bastante frecuencia en los tumores humanos . En su forma activa, Rb previene el cruce del punto de control G1 al bloquear la transcripción de genes responsables de los avances en el ciclo celular. El complejo ciclina D/Cdk4 fosforila Rb, lo que lo inactiva y permite que la célula pase por el punto de control. En caso de inactivación anormal de Rb, en las células cancerosas, se pierde un importante regulador de la progresión del ciclo celular. Cuando Rb muta, los niveles de ciclina D y p16INK4 son normales. [5]
Otro regulador del paso a través del punto de restricción G1 es el inhibidor de Cdk p16, que está codificado por el gen INK4. P16 funciona inactivando el complejo ciclina D/Cdk 4. Por lo tanto, el bloqueo de la transcripción del gen INK4 aumentaría la actividad de la ciclina D/Cdk4, lo que a su vez daría como resultado una inactivación anormal de Rb. Por otro lado, en el caso de la ciclina D en las células cancerosas (o la pérdida de p16INK4), se retiene la Rb de tipo salvaje. Debido a la importancia de la vía p16INK/ciclina D/Cdk4 o 6/Rb en la señalización del factor de crecimiento, mutaciones en cualquiera de los actores implicados pueden dar lugar a cáncer. [5]
Los estudios con mutantes sugieren que las ciclinas son reguladores positivos de la entrada al ciclo celular. En la levadura, la expresión de cualquiera de las tres ciclinas G1 desencadena la entrada al ciclo celular. Dado que la progresión del ciclo celular está relacionada con el tamaño de la célula, las mutaciones en la ciclina D y sus homólogos muestran un retraso en la entrada al ciclo celular y, por lo tanto, las células con variantes en la ciclina D tienen un tamaño celular mayor de lo normal en el momento de la división celular. [45] [46]
El fenotipo knockout de p27 - / - muestra una sobreproducción de células porque la ciclina D ya no se inhibe, mientras que los knockouts de p27 - / - y ciclina D - / - se desarrollan normalmente. [45] [46]
{{cite book}}
: |work=
ignorado ( ayuda )