stringtranslate.com

quinasa

Dihidroxiacetona quinasa en complejo con un análogo de ATP no hidrolizable (AMP-PNP). Coordenadas del PDB ID:1UN9. [1]

En bioquímica , una quinasa ( / ˈ k n s , ˈ k ɪ n s , -eɪ z / ) [2] es una enzima que cataliza la transferencia de grupos fosfato desde moléculas donadoras de fosfato de alta energía a moléculas específicas. sustratos . Este proceso se conoce como fosforilación , donde la molécula de ATP de alta energía dona un grupo fosfato a la molécula del sustrato . Esta transesterificación produce un sustrato fosforilado y ADP . Por el contrario, se denomina desfosforilación cuando el sustrato fosforilado dona un grupo fosfato y el ADP gana un grupo fosfato (produciendo un sustrato desfosforilado y la molécula de alta energía de ATP). Estos dos procesos, fosforilación y desfosforilación, ocurren cuatro veces durante la glucólisis . [3] [4] [5]

Las quinasas son parte de la familia más grande de las fosfotransferasas . No deben confundirse las quinasas con las fosforilasas , que catalizan la adición de grupos fosfato inorgánicos a un aceptor, ni con las fosfatasas , que eliminan los grupos fosfato (desfosforilación). El estado de fosforilación de una molécula, ya sea una proteína , un lípido o un carbohidrato , puede afectar su actividad, reactividad y su capacidad para unirse a otras moléculas. Por lo tanto, las quinasas son fundamentales en el metabolismo , la señalización celular , la regulación de proteínas , el transporte celular , los procesos secretores y muchas otras vías celulares, lo que las hace muy importantes para la fisiología.

Bioquímica y relevancia funcional.

Reacción general catalizada por quinasas.

Las quinasas median la transferencia de un resto de fosfato desde una molécula de alta energía (como el ATP ) a su molécula sustrato, como se ve en la figura siguiente. Se necesitan quinasas para estabilizar esta reacción porque el enlace fosfoanhídrido contiene un alto nivel de energía. Las quinasas orientan adecuadamente su sustrato y el grupo fosforilo dentro de sus sitios activos, lo que aumenta la velocidad de la reacción. Además, suelen utilizar residuos de aminoácidos cargados positivamente , que estabilizan electrostáticamente el estado de transición al interactuar con los grupos fosfato cargados negativamente. Alternativamente, algunas quinasas utilizan cofactores metálicos unidos en sus sitios activos para coordinar los grupos fosfato. Las proteínas quinasas se pueden clasificar como catalíticamente activas (canónicas) o pseudoquinasas, lo que refleja la pérdida evolutiva de uno o más de los aminoácidos catalíticos que posicionan o hidrolizan el ATP. [6] Sin embargo, en términos de resultados de señalización y relevancia de la enfermedad, tanto las quinasas como las pseudoquinasas son moduladores de señalización importantes en las células humanas, lo que hace que las quinasas sean objetivos farmacológicos importantes. [7]

Las quinasas se utilizan ampliamente para transmitir señales y regular procesos complejos en las células. La fosforilación de moléculas puede mejorar o inhibir su actividad y modular su capacidad para interactuar con otras moléculas. La adición y eliminación de grupos fosforilo proporciona a la célula un medio de control porque varias quinasas pueden responder a diferentes condiciones o señales. Las mutaciones en las quinasas que conducen a una pérdida o ganancia de función pueden causar cáncer [8] y enfermedades en humanos, incluidos ciertos tipos de leucemia y neuroblastomas , glioblastoma , [9] ataxia espinocerebelosa (tipo 14), formas de agammaglobulinemia , y muchos otros. [10]

Historia y clasificación

La primera proteína reconocida como catalizadora de la fosforilación de otra proteína utilizando ATP fue observada en 1954 por Eugene P. Kennedy, momento en el que describió una enzima hepática que catalizó la fosforilación de la caseína. [ cita necesaria ] En 1956, Edmond H. Fischer y Edwin G. Krebs descubrieron que la interconversión entre la fosforilasa a y la fosforilasa b estaba mediada por la fosforilación y la desfosforilación. [11] La quinasa que transfirió un grupo fosforilo a la fosforilasa b, convirtiéndola en fosforilasa a, se denominó fosforilasa quinasa. Años más tarde, se identificó el primer ejemplo de una cascada de quinasas, mediante la cual la proteína quinasa A (PKA) fosforila la fosforilasa quinasa. Al mismo tiempo, se descubrió que la PKA inhibe la glucógeno sintasa , lo que fue el primer ejemplo de un evento de fosforilación que resultó en una inhibición. En 1969, Lester Reed descubrió que la piruvato deshidrogenasa se inactivaba mediante fosforilación, y este descubrimiento fue la primera pista de que la fosforilación podría servir como medio de regulación en otras vías metabólicas además del metabolismo del glucógeno . Ese mismo año, Tom Langan descubrió que la PKA fosforila la histona H1, lo que sugirió que la fosforilación podría regular las proteínas no enzimáticas. La década de 1970 incluyó el descubrimiento de las proteínas quinasas dependientes de calmodulina y el descubrimiento de que las proteínas pueden fosforilarse en más de un residuo de aminoácido. La década de 1990 puede describirse como la "década de las cascadas de proteínas quinasas". Durante este tiempo, se descubrieron la vía MAPK/ERK , las quinasas JAK (una familia de proteínas tirosina quinasas) y la cascada de quinasas dependiente de PIP3. [12]

Las quinasas se clasifican en amplios grupos según el sustrato sobre el que actúan: proteínas quinasas, lípidos quinasas y carbohidratos quinasas. Las quinasas se pueden encontrar en una variedad de especies, desde bacterias hasta moho, gusanos y mamíferos. [13] Se han identificado más de quinientas quinasas diferentes en humanos. [3] Su diversidad y su papel en la señalización los convierte en un interesante objeto de estudio. Varias otras quinasas actúan sobre moléculas pequeñas como lípidos , carbohidratos , aminoácidos y nucleótidos , ya sea para señalización o para prepararlas para vías metabólicas. Las quinasas específicas suelen recibir el nombre de sus sustratos. Las proteínas quinasas suelen tener múltiples sustratos y las proteínas pueden servir como sustratos para más de una quinasa específica. Por esta razón, las proteínas quinasas se denominan según lo que regula su actividad (es decir, proteínas quinasas dependientes de calmodulina). A veces se subdividen en categorías porque existen varias formas isoenzimáticas. Por ejemplo, las proteínas quinasas dependientes de AMP cíclico de tipo I y tipo II tienen subunidades catalíticas idénticas pero diferentes subunidades reguladoras que se unen al AMP cíclico. [14]

Proteínas quinasas

Descripción general de las vías de transducción de señales. Muchas de las proteínas involucradas son quinasas, incluidas proteínas quinasas (como MAPK y JAK ) y lípidos quinasas (como PI3K ).

Las proteínas quinasas actúan sobre las proteínas fosforilándolas en sus residuos de serina, treonina, tirosina o histidina. La fosforilación puede modificar la función de una proteína de muchas maneras. Puede aumentar o disminuir la actividad de una proteína, estabilizarla o marcarla para su destrucción, localizarla dentro de un compartimento celular específico y puede iniciar o interrumpir su interacción con otras proteínas. Las proteínas quinasas constituyen la mayoría de todas las quinasas y están ampliamente estudiadas. [15] Estas quinasas, junto con las fosfatasas , desempeñan un papel importante en la regulación de proteínas y enzimas , así como en la señalización en la célula.

Un punto común de confusión surge al pensar en las diferentes formas en que una célula logra la regulación biológica. Existen innumerables ejemplos de modificaciones covalentes que pueden sufrir las proteínas celulares; sin embargo, la fosforilación es una de las pocas modificaciones covalentes reversibles. Esto proporcionó la justificación de que la fosforilación de proteínas es reguladora. El potencial para regular la función de las proteínas es enorme dado que hay muchas formas de modificar covalentemente una proteína además de la regulación proporcionada por el control alostérico. En su conferencia en memoria de Hopkins, Edwin Krebs afirmó que el control alostérico evolucionó para responder a señales que surgen desde el interior de la célula, mientras que la fosforilación evolucionó para responder a señales fuera de la célula. Esta idea es consistente con el hecho de que la fosforilación de proteínas ocurre con mucha más frecuencia en las células eucariotas en comparación con las células procarióticas porque el tipo de célula más compleja evolucionó para responder a una gama más amplia de señales. [14]

Quinasas dependientes de ciclina

Las quinasas dependientes de ciclina (CDK) son un grupo de varias quinasas diferentes involucradas en la regulación del ciclo celular . Fosforilan otras proteínas en sus residuos de serina o treonina, pero las CDK primero deben unirse a una proteína ciclina para estar activas. [16] Diferentes combinaciones de CDK y ciclinas específicas marcan diferentes partes del ciclo celular. Además, el estado de fosforilación de las CDK también es fundamental para su actividad, ya que están sujetas a regulación por otras quinasas (como la quinasa activadora de CDK ) y fosfatasas (como Cdc25 ). [17] Una vez que las CDK están activas, fosforilan otras proteínas para cambiar su actividad, lo que conduce a eventos necesarios para la siguiente etapa del ciclo celular. Si bien son más conocidas por su función en el control del ciclo celular, las CDK también desempeñan funciones en la transcripción, el metabolismo y otros eventos celulares. [18]

Debido a su papel clave en el control de la división celular, las mutaciones en las CDK se encuentran a menudo en células cancerosas. Estas mutaciones conducen a un crecimiento incontrolado de las células, donde pasan rápidamente por todo el ciclo celular repetidamente. [19] Las mutaciones CDK se pueden encontrar en linfomas , cáncer de mama , tumores de páncreas y cáncer de pulmón . Por tanto, se han desarrollado inhibidores de CDK como tratamientos para algunos tipos de cáncer. [19]

Proteínas quinasas activadas por mitógenos

Las MAP quinasas (MAPK) son una familia de serina/treonina quinasas que responden a una variedad de señales de crecimiento extracelular. Por ejemplo, la hormona del crecimiento, el factor de crecimiento epidérmico, el factor de crecimiento derivado de plaquetas y la insulina se consideran estímulos mitogénicos que pueden activar la vía MAPK. La activación de esta vía a nivel del receptor inicia una cascada de señalización mediante la cual la Ras GTPasa intercambia GDP por GTP . A continuación, Ras activa la quinasa Raf (también conocida como MAPKKK), que activa MEK (MAPKK). MEK activa MAPK (también conocido como ERK), que puede regular la transcripción y la traducción . Mientras que RAF y MAPK son serina/treonina quinasas, MAPKK es una tirosina/treonina quinasa.

Una variedad de señales mitogénicas activan la vía MAPK y promueven el crecimiento y la diferenciación celular a través de una cascada de quinasas.

MAPK puede regular factores de transcripción directa o indirectamente. Sus principales objetivos transcripcionales incluyen ATF-2, Chop, c-Jun, c-Myc, DPC4, Elk-1, Ets1, Max, MEF2C, NFAT4, Sap1a, STATs, Tal, p53, CREB y Myc. MAPK también puede regular la traducción fosforilando la quinasa S6 en la subunidad ribosómica grande. También puede fosforilar componentes en la porción aguas arriba de la cascada de señalización MAPK, incluidos Ras, Sos y el propio receptor de EGF . [20]

El potencial carcinogénico de la vía MAPK la hace clínicamente significativa. Está implicado en procesos celulares que pueden provocar un crecimiento descontrolado y la posterior formación de tumores. Las mutaciones dentro de esta vía alteran sus efectos reguladores sobre la diferenciación , proliferación, supervivencia y apoptosis celular , todos los cuales están implicados en diversas formas de cáncer . [20]

lípidos quinasas

Las lípido quinasas fosforilan los lípidos de la célula, tanto en la membrana plasmática como en las membranas de los orgánulos. La adición de grupos fosfato puede cambiar la reactividad y localización del lípido y puede usarse en la transmisión de señales.

Fosfatidilinositol quinasas

La unión de la insulina a sus receptores permite que la PI3 quinasa se acople a la membrana donde puede fosforilar los lípidos PI.

Las fosfatidilinositol quinasas fosforilan especies de fosfatidilinositol , para crear especies como el fosfatidilinositol 3,4-bisfosfato (PI(3,4)P 2 ), el fosfatidilinositol 3,4,5-trifosfato (PIP 3 ) y el fosfatidilinositol 3-fosfato (PI3P). Las quinasas incluyen fosfoinositido 3-quinasa (PI3K), fosfatidilinositol-4-fosfato 3-quinasa y fosfatidilinositol-4,5-bisfosfato 3-quinasa . El estado de fosforilación del fosfatidilinositol desempeña un papel importante en la señalización celular , como en la vía de señalización de la insulina, y también desempeña funciones en la endocitosis , exocitosis y otros eventos de tráfico. [21] [22] Las mutaciones en estas quinasas, como PI3K, pueden provocar cáncer o resistencia a la insulina . [23]

Las enzimas quinasas aumentan la velocidad de las reacciones al hacer que el grupo hidroxilo del inositol sea más nucleofílico, a menudo utilizando la cadena lateral de un residuo de aminoácido para actuar como base general y desprotonar el hidroxilo, como se ve en el mecanismo siguiente. [24] Aquí se coordina una reacción entre el trifosfato de adenosina (ATP) y el fosfatidilinositol. El resultado final es un fosfatidilinositol-3-fosfato y también un difosfato de adenosina (ADP) . Las enzimas también pueden ayudar a orientar adecuadamente la molécula de ATP, así como el grupo inositol, para acelerar la reacción. Para ello, a menudo se coordinan los iones metálicos. [24]

Mecanismo de la fosfatidilinositol-3 quinasa. El ATP y el fosfatidilinositol reaccionan para formar fosfatidilinositol-3-fosfato y ADP, con la ayuda de la base general B. [24]

Esfingosina quinasas

La esfingosina quinasa (SK) es una lípido quinasa que cataliza la conversión de esfingosina en esfingosina-1-fosfato (S1P). Los esfingolípidos son lípidos de membrana ubicuos. Tras la activación, la esfingosina quinasa migra desde el citosol a la membrana plasmática donde transfiere un fosfato γ (que es el último fosfato o terminal) del ATP o GTP a la esfingosina. El receptor S1P es un receptor GPCR , por lo que S1P tiene la capacidad de regular la señalización de la proteína G. La señal resultante puede activar efectores intracelulares como ERK, Rho GTPase , Rac GTPase , PLC y AKT/PI3K. También puede ejercer su efecto sobre las moléculas diana dentro de la célula. Se ha demostrado que S1P inhibe directamente la actividad histona desacetilasa de las HDAC . Por el contrario, la esfingosina desfosforilada promueve la apoptosis celular y, por lo tanto, es fundamental comprender la regulación de las SK debido a su papel en la determinación del destino celular. Investigaciones anteriores muestran que las SK pueden sostener el crecimiento de las células cancerosas porque promueven la proliferación celular, y la SK1 (un tipo específico de SK) está presente en concentraciones más altas en ciertos tipos de cánceres.

Hay dos quinasas presentes en las células de mamíferos, SK1 y SK2. SK1 es más específico en comparación con SK2 y sus patrones de expresión también difieren. SK1 se expresa en células de pulmón, bazo y leucocitos, mientras que SK2 se expresa en células de riñón y hígado. La participación de estas dos quinasas en la supervivencia, proliferación, diferenciación e inflamación celular las convierte en candidatos viables para terapias quimioterapéuticas . [25]

Carbohidrato quinasas

La glucólisis incluye cuatro fosforilaciones, dos que crean ATP a partir de ADP y dos que utilizan ATP y lo convierten en ADP. La glucólisis es el primer paso del metabolismo e incluye diez reacciones que finalmente dan como resultado una molécula de glucosa que produce dos moléculas de piruvato.

Para muchos mamíferos, los carbohidratos proporcionan una gran parte del requerimiento calórico diario . Para recolectar energía de los oligosacáridos , primero deben descomponerse en monosacáridos para que puedan ingresar al metabolismo . Las quinasas juegan un papel importante en casi todas las vías metabólicas. La figura de la izquierda muestra la segunda fase de la glucólisis , que contiene dos reacciones importantes catalizadas por quinasas. El enlace anhídrido en el 1,3 bisfosfoglicerato es inestable y tiene una alta energía. La 1,3-bisfosfoglicerato quinasa requiere ADP para llevar a cabo su reacción produciendo 3-fosfoglicerato y ATP. En el paso final de la glucólisis, la piruvato quinasa transfiere un grupo fosforilo del fosfoenolpiruvato al ADP, generando ATP y piruvato.

La hexoquinasa es la enzima más común que utiliza la glucosa cuando ingresa por primera vez a la célula. Convierte D-glucosa en glucosa-6-fosfato transfiriendo el gamma fosfato de un ATP a la posición C6. Este es un paso importante en la glucólisis porque atrapa la glucosa dentro de la célula debido a la carga negativa. En su forma desfosforilada, la glucosa puede moverse hacia adelante y hacia atrás a través de la membrana con mucha facilidad. [26] Las mutaciones en el gen de la hexoquinasa pueden provocar una deficiencia de hexoquinasa que puede causar anemia hemolítica no esferocítica . [27]

La fosfofructocinasa , o PFK, cataliza la conversión de fructosa-6-fosfato en fructosa-1,6-bifosfato y es un punto importante en la regulación de la glucólisis. Los niveles elevados de ATP, H + y citrato inhiben la PFK. Si los niveles de citrato son altos, significa que la glucólisis está funcionando a un ritmo óptimo. Los altos niveles de AMP estimulan la PFK. La enfermedad de Tarui , una enfermedad por almacenamiento de glucógeno que conduce a intolerancia al ejercicio, se debe a una mutación en el gen PFK que reduce su actividad. [28]

Otras quinasas

El sitio activo de la riboflavina quinasa unido a sus productos: FMN (a la izquierda) y ADP (a la derecha). Coordenadas del PDB ID: 1N07. [29]

Las quinasas actúan sobre muchas otras moléculas además de proteínas, lípidos y carbohidratos. Hay muchos que actúan sobre los nucleótidos (ADN y ARN), incluidos los involucrados en la interconversión de nucleótidos, como las nucleósido-fosfato quinasas y las nucleósido-difosfato quinasas . [30] Otras moléculas pequeñas que son sustratos de las quinasas incluyen creatina , fosfoglicerato , riboflavina , dihidroxiacetona , shikimato y muchas otras.

Riboflavina quinasa

La riboflavina quinasa cataliza la fosforilación de la riboflavina para crear mononucleótido de flavina (FMN). Tiene un mecanismo de unión ordenado donde la riboflavina debe unirse a la quinasa antes de que se una a la molécula de ATP. [31] Los cationes divalentes ayudan a coordinar el nucleótido . [31] El mecanismo general se muestra en la siguiente figura.

Mecanismo de la riboflavina quinasa.

La riboflavina quinasa juega un papel importante en las células, ya que FMN es un cofactor importante . FMN también es un precursor del dinucleótido de flavina adenina (FAD), un cofactor redox utilizado por muchas enzimas, incluidas muchas en el metabolismo . De hecho, existen algunas enzimas que son capaces de llevar a cabo tanto la fosforilación de la riboflavina a FMN , como la reacción de FMN a FAD . [32] La riboflavina quinasa puede ayudar a prevenir los accidentes cerebrovasculares y posiblemente podría usarse como tratamiento en el futuro. [33] También está implicado en la infección, cuando se estudia en ratones. [34]

timidina quinasa

La timidina quinasa es una de las muchas nucleósido quinasas responsables de la fosforilación de nucleósidos. Fosforila la timidina para crear monofosfato de timidina (dTMP). Esta quinasa utiliza una molécula de ATP para suministrar fosfato a la timidina, como se muestra a continuación. Esta transferencia de un fosfato de un nucleótido a otro por la timidina quinasa, así como por otros nucleósidos y nucleótidos quinasas, funciona para ayudar a controlar el nivel de cada uno de los diferentes nucleótidos.

Reacción general catalizada por timidina quinasa.

Después de la creación de la molécula de dTMP, otra quinasa, la timidilato quinasa , puede actuar sobre el dTMP para crear la forma de difosfato , dTDP. La nucleósido difosfato quinasa cataliza la producción de trifosfato de timidina , dTTP, que se utiliza en la síntesis de ADN . Debido a esto, la actividad de la timidina quinasa está estrechamente relacionada con el ciclo celular y se utiliza como marcador tumoral en química clínica . [35] Por lo tanto, en ocasiones se puede utilizar para predecir el pronóstico del paciente. [36] Los pacientes con mutaciones en el gen de la timidina quinasa pueden tener cierto tipo de síndrome de agotamiento del ADN mitocondrial , una enfermedad que provoca la muerte en la primera infancia. [37]

Ver también

Referencias

  1. ^ Siebold C, Arnold I, García-Alles LF, Baumann U, HErnia B (noviembre de 2003). "La estructura cristalina de la dihidroxiacetona quinasa de Citrobacter freundii revela un dominio de unión a AKTP de barril helicoidal alfa de ocho hebras". La Revista de Química Biológica . 278 (48): 48236–48244. doi : 10.1074/jbc.M305942200 . PMID  12966101.
  2. ^ "quinasa". Dictionary.com íntegro (en línea). y nd . Consultado el 18 de junio de 2022 .
  3. ^ ab Manning G, Whyte DB, Martinez R, Hunter T, Sudarsanam S (diciembre de 2002). "El complemento de proteína quinasa del genoma humano". Ciencia . 298 (5600): 1912-1934. Código Bib : 2002 Ciencia... 298.1912M. doi : 10.1126/ciencia.1075762. PMID  12471243. S2CID  26554314.
  4. ^ "Quinasa".ElDiccionarioLibre.com
  5. ^ "Historia de los hitos de la investigación del ATP a partir de una química relacionada con el ATP". Premio Nobel.org.
  6. ^ Reiterer V, Eyers PA, Farhan H (septiembre de 2014). "Día de muertos: pseudocinasas y pseudofosfatasas en fisiología y enfermedad". Tendencias en biología celular . 24 (9): 489–505. doi :10.1016/j.tcb.2014.03.008. PMID  24818526.
  7. ^ Foulkes DM, Byrne DP y Eyers PA (2017) Pseudoquinasas: actualización sobre sus funciones y evaluación como nuevos objetivos farmacológicos. Química médica del futuro. 9(2):245-265
  8. ^ Samarasinghe B. "Señas de identidad del cáncer 1". Científico americano .
  9. ^ Bleeker FE, Lamba S, Zanon C, Molenaar RJ, Hulsebos TJ, Troost D, et al. (septiembre de 2014). "Perfil mutacional de quinasas en glioblastoma". Cáncer BMC . 14 : 718. doi : 10.1186/1471-2407-14-718 . PMC 4192443 . PMID  25256166. 
  10. ^ Lahiry P, Torkamani A, Schork NJ, Hegele RA (enero de 2010). "Mutaciones de quinasa en enfermedades humanas: interpretación de las relaciones genotipo-fenotipo". Reseñas de la naturaleza. Genética . 11 (1): 60–74. doi :10.1038/nrg2707. PMID  20019687. S2CID  37398118.
  11. ^ Krebs EG (julio de 1983). "Perspectivas históricas sobre la fosforilación de proteínas y un sistema de clasificación de proteínas quinasas". Transacciones filosóficas de la Royal Society de Londres. Serie B, Ciencias Biológicas . 302 (1108): 3–11. Código Bib : 1983RSPTB.302....3K. doi : 10.1098/rstb.1983.0033 . PMID  6137005.
  12. ^ Corbellino M, Poirel L, Aubin JT, Paulli M, Magrini U, Bestetti G, et al. (junio de 1996). "El papel del herpesvirus humano 8 y el virus de Epstein-Barr en la patogénesis de la hiperplasia de los ganglios linfáticos gigantes (enfermedad de Castleman)". Enfermedades Infecciosas Clínicas . 22 (6): 1120–1121. doi : 10.1093/clinids/22.6.1120 . PMID  8783733.
  13. ^ Scheeff ED, Bourne PE (octubre de 2005). "Evolución estructural de la superfamilia similar a la proteína quinasa". PLOS Biología Computacional . 1 (5): e49. Código Bib : 2005PLSCB...1...49S. doi : 10.1371/journal.pcbi.0010049 . PMC 1261164 . PMID  16244704. 
  14. ^ ab Krebs EG (octubre de 1985). "La fosforilación de proteínas: un mecanismo importante para la regulación biológica. Decimocuarta conferencia conmemorativa de Sir Frederick Gowland Hopkins". Transacciones de la sociedad bioquímica . 13 (5): 813–820. doi :10.1042/bst0130813. PMID  2998902.
  15. ^ Manning G, Whyte DB, Martinez R, Hunter T, Sudarsanam S (diciembre de 2002). "El complemento de proteína quinasa del genoma humano". Ciencia . 298 (5600): 1912-1934. Código Bib : 2002 Ciencia... 298.1912M. doi : 10.1126/ciencia.1075762. PMID  12471243. S2CID  26554314.
  16. ^ Harper JW, Adams PD (agosto de 2001). "Kinasas dependientes de ciclina". Reseñas químicas . 101 (8): 2511–2526. doi :10.1021/cr0001030. PMID  11749386.
  17. ^ Karp G (2010). Biología celular y molecular: conceptos y experimentos (6ª ed.). Hoboken, Nueva Jersey: John Wiley. ISBN 9780470483374.
  18. ^ Lim S, Kaldis P (agosto de 2013). "Cdks, ciclinas y CKI: funciones más allá de la regulación del ciclo celular". Desarrollo . 140 (15): 3079–3093. doi : 10.1242/dev.091744 . PMID  23861057.
  19. ^ ab Canavese M, Santo L, Raje N (mayo de 2012). "Kinasas dependientes de ciclina en el cáncer: potencial de intervención terapéutica". Biología y terapia del cáncer . 13 (7): 451–457. doi : 10.4161/cbt.19589 . PMID  22361734.
  20. ^ ab Garrington TP, Johnson GL (abril de 1999). "Organización y regulación de las vías de señalización de la proteína quinasa activada por mitógenos". Opinión actual en biología celular . 11 (2): 211–218. doi :10.1016/s0955-0674(99)80028-3. PMID  10209154.
  21. ^ Sun Y, Thapa N, Hedman AC, Anderson RA (junio de 2013). "Fosfatidilinositol 4,5-bifosfato: señalización y producción dirigida". Bioensayos . 35 (6): 513–522. doi :10.1002/bies.201200171. PMC 3882169 . PMID  23575577. 
  22. ^ Heath CM, Stahl PD, Barbieri MA (julio de 2003). "Las lípidos quinasas desempeñan funciones múltiples y cruciales en el tráfico y la señalización de las membranas". Histología e Histopatología . 18 (3): 989–998. doi :10.14670/HH-18.989. PMID  12792909.
  23. ^ Cantley LC (2012). "PI 3-quinasa y enfermedad". Procedimientos de BMC . 6 (Suplemento 3): O2. doi : 10.1186/1753-6561-6-S3-O2 . PMC 3395034 . 
  24. ^ abc Miller S, Tavshanjian B, Oleksy A, Perisic O, Houseman BT, Shokat KM, Williams RL (marzo de 2010). "Dar forma al desarrollo de inhibidores de la autofagia con la estructura de la lípido quinasa Vps34". Ciencia . 327 (5973): 1638–1642. Código bibliográfico : 2010 Ciencia... 327.1638M. doi : 10.1126/ciencia.1184429. PMC 2860105 . PMID  20339072. 
  25. ^ Neubauer HA, Pitson SM (noviembre de 2013). "Funciones, regulación e inhibidores de la esfingosina quinasa 2". El Diario FEBS . 280 (21): 5317–5336. doi : 10.1111/febrero.12314 . PMID  23638983.
  26. ^ Holzer H, Duntze W (1971). "Regulación metabólica por modificación química de enzimas". Revista Anual de Bioquímica . 40 : 345–374. doi : 10.1146/annurev.bi.40.070171.002021. PMID  4399446.
  27. ^ "Anemia hemolítica no esferocítica por deficiencia de hexoquinasa". Archivado desde el original el 5 de septiembre de 2015 . Consultado el 24 de febrero de 2014 .
  28. ^ "Enfermedad por almacenamiento de glucógeno por deficiencia de fosfofructoquinasa".
  29. ^ Bauer S, Kemter K, Bacher A, Huber R, Fischer M, Steinbacher S (marzo de 2003). "La estructura cristalina de la riboflavina quinasa de Schizosaccharomyces pombe revela un nuevo pliegue de unión a ATP y riboflavina". Revista de biología molecular . 326 (5): 1463-1473. doi :10.1016/s0022-2836(03)00059-7. PMID  12595258.
  30. ^ Voet D, Voet JC, Pratt CW (2008). Fundamentos de bioquímica: la vida a nivel molecular (3ª ed.). Hoboken, Nueva Jersey: Wiley. ISBN 9780470129302.
  31. ^ ab Karthikeyan S, Zhou Q, Osterman AL, Zhang H (noviembre de 2003). "Cambios conformacionales inducidos por la unión de ligando en la riboflavina quinasa: base estructural del mecanismo ordenado". Bioquímica . 42 (43): 12532–12538. doi :10.1021/bi035450t. PMID  14580199.
  32. ^ Galluccio M, Brizio C, Torchetti EM, Ferranti P, Gianazza E, Indiveri C, Barile M (marzo de 2007). "Sobreexpresión en Escherichia coli, purificación y caracterización de la isoforma 2 de la FAD sintetasa humana". Expresión y purificación de proteínas . 52 (1): 175–181. doi :10.1016/j.pep.2006.09.002. PMID  17049878.
  33. ^ Zou YX, Zhang XH, Su FY, Liu X (octubre de 2012). "Importancia de la riboflavina quinasa en la patogénesis del accidente cerebrovascular". Neurociencia y terapéutica del SNC . 18 (10): 834–840. doi :10.1111/j.1755-5949.2012.00379.x. PMC 6493343 . PMID  22925047. 
  34. ^ Brijlal S, Lakshmi AV, Bamji MS, Suresh P (septiembre de 1996). "Metabolismo de las flavinas durante la infección respiratoria en ratones". La revista británica de nutrición . 76 (3): 453–462. doi : 10.1079/BJN19960050 . PMID  8881717.
  35. ^ Aufderklamm S, Todenhöfer T, Gakis G, Kruck S, Hennenlotter J, Stenzl A, Schwentner C (marzo de 2012). "Timidina quinasa y seguimiento del cáncer". Cartas de Cáncer . 316 (1): 6–10. doi :10.1016/j.canlet.2011.10.025. PMID  22068047.
  36. ^ Topolcan O, Holubec L (febrero de 2008). "El papel de la timidina quinasa en las enfermedades del cáncer". Opinión de expertos sobre diagnóstico médico . 2 (2): 129–141. doi :10.1517/17530059.2.2.129. PMID  23485133.
  37. ^ Götz A, Isohanni P, Pihko H, Paetau A, Herva R, Saarenpää-Heikkilä O, et al. (noviembre de 2008). "Los defectos de la timidina quinasa 2 pueden causar el síndrome de agotamiento del ADNmt en múltiples tejidos". Cerebro . 131 (parte 11): 2841–2850. doi : 10.1093/cerebro/awn236 . PMID  18819985.