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Ciatus

Cyathus es un género de hongos de la familia Nidulariaceae , que es una familia conocida colectivamente como los hongos nido de pájaro . Se les da este nombre porque se parecen a pequeños nidos de pájaros llenos de "huevos", estructuras lo suficientemente grandes como para haber sido confundidas en el pasado con semillas. Sin embargo, ahora se sabe que son estructuras reproductivas que contienen esporas . Los "huevos", o peridiolos , están firmemente unidos a la superficie interna de este cuerpo fructífero por un cordón elástico de micelio conocido como funículo. Las 45 especies están ampliamente distribuidas por todo el mundo y algunas se encuentran en la mayoría de los países, aunque unas pocas existen solo en uno o dos lugares. Cyathus stercoreus se considera en peligro de extinción en varios países europeos. Algunas especies de Cyathus también se conocen como copas salpicadas , lo que se refiere al hecho de que las gotas de lluvia que caen pueden sacar los peridiolos del cuerpo fructífero de copa abierta. Las superficies internas y externas de esta copa pueden estar estriadas longitudinalmente (denominadas plicadas o estriadas); Éste es un ejemplo de unacaracterística taxonómica que tradicionalmente ha servido para distinguir entre especies.

Generalmente consideradas no comestibles, las especies de Cyathus son sapróbicas , ya que obtienen nutrientes de la materia orgánica en descomposición . Por lo general, crecen en madera en descomposición o restos leñosos, en estiércol de vaca y caballo, o directamente en suelo rico en humus . El ciclo de vida de este género le permite reproducirse tanto sexualmente, con meiosis , como asexualmente a través de esporas. Varias especies de Cyathus producen compuestos bioactivos , algunos con propiedades medicinales, y varias enzimas degradantes de lignina del género pueden ser útiles en biorremediación y agricultura . El análisis filogenético está proporcionando nuevos conocimientos sobre las relaciones evolutivas entre las diversas especies de Cyathus , y ha puesto en duda la validez de los sistemas de clasificación más antiguos que se basan en características taxonómicas tradicionales.

Taxonomía

Historia

Los hongos nido de pájaro fueron mencionados por primera vez por el botánico flamenco Carolus Clusius en Rariorum plantarum historia (1601). Durante los siguientes siglos, estos hongos fueron objeto de cierta controversia sobre si los peridiolos eran semillas y el mecanismo por el cual se dispersaban en la naturaleza. Por ejemplo, el botánico francés Jean-Jacques Paulet , en su obra Traité des champignons (1790-1793), propuso la noción errónea de que los peridiolos eran expulsados ​​​​de los cuerpos fructíferos por algún tipo de mecanismo de resorte. [2] El género fue establecido en 1768 por el científico suizo Albrecht von Haller ; el nombre genérico Cyathus es latín , pero originalmente se derivó de la palabra griega antigua κύαθος , que significa 'copa'. [3] La estructura y biología del género Cyathus se conocía mejor a mediados del siglo XIX, a partir de la aparición en 1842 de un artículo de Carl Johann Friedrich Schmitz, [4] y dos años más tarde, una monografía de los hermanos Louis René y Charles Tulasne . [5] El trabajo de los Tulasne fue minucioso y preciso, y fue muy valorado por los investigadores posteriores. [2] [6] [7] Posteriormente, se escribieron monografías en 1902 por Violet S. White (sobre especies americanas), [6] Curtis Gates Lloyd en 1906, [7] Gordon Herriot Cunningham en 1924 (sobre especies de Nueva Zelanda), [8] y Harold J. Brodie en 1975. [9]

Clasificación infragenérica

El género Cyathus fue subdividido por primera vez en dos grupos infragenéricos (es decir, agrupando especies por debajo del rango de género) por los hermanos Tulasne; el grupo "eucyathus" tenía cuerpos fructíferos con superficies internas plegadas en pliegues (plicaturas), mientras que el grupo "olla" carecía de plicaturas. [5] Más tarde (1906), Lloyd publicó un concepto diferente de agrupación infragenérica en Cyathus , describiendo cinco grupos, dos en el grupo eucyathus y cinco en el grupo olla. [7]

En la década de 1970, Brodie, en su monografía sobre los hongos de nido de pájaro, separó el género Cyathus en siete grupos relacionados basándose en una serie de características taxonómicas , incluyendo la presencia o ausencia de plicaturas, la estructura de los peridiolos, el color de los cuerpos fructíferos y la naturaleza de los pelos en el peridio externo: [10]

Filogenia

La publicación en 2007 de análisis filogenéticos de datos de secuencias de ADN de numerosas especies de Cyathus ha puesto en duda la validez de las clasificaciones infragenéricas basadas en la morfología descritas por Brodie. Esta investigación sugiere que las especies de Cyathus pueden agruparse en tres clados genéticamente relacionados : [11]

C. dominicanus , una especie extinta

Este análisis muestra que, en lugar de la estructura del cuerpo fructífero, el tamaño de las esporas es generalmente un carácter más confiable para segregar grupos de especies en Cyathus . [11] Por ejemplo, las especies del clado ollum tienen todas longitudes de esporas menores a 15 μm, mientras que todos los miembros del grupo pallidum tienen longitudes mayores a 15 μm; el grupo striatum , sin embargo, no se puede distinguir del grupo pallidum solo por el tamaño de las esporas. Dos características son las más adecuadas para distinguir a los miembros del grupo ollum del grupo pallidum : el grosor de la capa de pelos en la superficie del peridio y el contorno de los cuerpos fructíferos. El tomento de las especies de Pallidum es grueso, como fieltro, y típicamente se agrega en grupos de pelos peludos o lanosos. Sus cuerpos fructíferos en forma de crisol no tienen un estípite claramente diferenciado. El exoperidio de las especies de Ollum , en comparación, tiene un tomento delgado de pelos finos; Los cuerpos fructíferos tienen forma de embudo y tienen una base constreñida o un estípite distintivo . [11]

Descripción

Las especies del género Cyathus tienen cuerpos fructíferos ( peridios ) con forma de vaso, trompeta o urna con dimensiones de 4-8 milímetros ( 316516 pulgadas) de ancho por 7-18 mm ( 141116  pulgadas) de alto. [12] Los cuerpos fructíferos son de color marrón a marrón grisáceo y están cubiertos con pequeñas estructuras similares a pelos en la superficie exterior. Algunas especies, como C. striatus y C. setosus , tienen cerdas llamativas llamadas setas en el borde de la copa. El cuerpo fructífero a menudo se expande en la base en una masa sólida y redondeada de hifas llamada emplazamiento, que generalmente se enreda y entrelaza con pequeños fragmentos de la superficie de crecimiento subyacente, mejorando su estabilidad y evitando que sea derribado por la lluvia. [13]

Cyathus striatus (a) cuerpos fructíferos jóvenes y maduros en sección longitudinal; (b), (c) peridiolo único entero y en sección

Los cuerpos fructíferos inmaduros tienen una membrana blanquecina, un epifragma, que cubre la abertura del peridio cuando son jóvenes, pero que finalmente se dehisce y se abre durante la maduración. Visto con un microscopio, el peridio de las especies de Cyathus está formado por tres capas distintas: el endoperidio, el mesoperidio y el ectoperidio, que se refieren a las capas interna, media y externa respectivamente. Si bien la superficie del ectoperidio en Cyathus suele ser pilosa, la superficie endoperidial es lisa y, según la especie, puede tener surcos longitudinales (estrías). [3]

Debido a que la estructura básica del cuerpo fructífero en todos los géneros de la familia Nidulariaceae es esencialmente similar, Cyathus puede confundirse fácilmente con especies de Nidula o Crucibulum , especialmente especímenes más viejos y erosionados de Cyathus que pueden tener el ectoperidio peludo desgastado. [14] Se distingue de Nidula por la presencia de un funículo, un cordón de hifas que une el peridiolo al endoperidio. Cyathus se diferencia del género Crucibulum por tener una pared distintiva de tres capas y un funículo más intrincado. [3]

Estructura del peridiolo

Un peridiolo y un funículo adjunto en sección transversal.

El peridiolo, que deriva de la palabra griega peridion , que significa "pequeña bolsa de cuero", [15] es el "huevo" del nido del pájaro. Es una masa de basidiosporas y tejido glebal encerrado por una cáscara exterior dura y cerosa. La forma puede describirse como lenticular (como una lente biconvexa ) y, según la especie, puede variar en color desde blanquecino a grisáceo o negro. La cámara interior del peridiolo contiene un himenio que está hecho de basidios , estructuras estériles (no reproductivas) y esporas. En los cuerpos fructíferos jóvenes, recién abiertos, los peridiolos se encuentran en una sustancia gelatinosa transparente que pronto se seca. [16]

Los peridiolos están unidos al cuerpo del fruto por un funículo, una estructura compleja de hifas que puede diferenciarse en tres regiones: la pieza basal, que lo une a la pared interna del peridio, la pieza media y una vaina superior, llamada bolsa, conectada a la superficie inferior del peridiolo. En la bolsa y la pieza media hay un hilo enrollado de hifas entrelazadas llamado cordón funicular, unido en un extremo al peridiolo y en el otro extremo a una masa enredada de hifas llamada hapterón. En algunas especies, los peridiolos pueden estar cubiertos por una túnica, una membrana blanca delgada (particularmente evidente en C. striatus y C. crassimurus ). [17] Las esporas típicamente tienen una forma elíptica o aproximadamente esférica, y son de paredes gruesas, de color hialino o amarillo-marrón claro, con dimensiones de 5-15 por 5-8  μm . [12]

Ciclo vital

El ciclo de vida del género Cyathus , que contiene etapas haploides y diploides , es típico de los taxones de los basidiomicetos que pueden reproducirse tanto asexualmente (a través de esporas vegetativas ) como sexualmente (con meiosis ). Al igual que otros hongos de descomposición de la madera, este ciclo de vida puede considerarse como dos fases funcionalmente diferentes: la etapa vegetativa para la propagación de micelios y la etapa reproductiva para el establecimiento de estructuras productoras de esporas, los cuerpos fructíferos. [18]

La etapa vegetativa abarca aquellas fases del ciclo de vida involucradas con la germinación, propagación y supervivencia del micelio. Las esporas germinan en condiciones adecuadas de humedad y temperatura, y crecen en filamentos ramificados llamados hifas, que empujan hacia afuera como raíces en la madera podrida. Estas hifas son homocariotas , que contienen un solo núcleo en cada compartimento; aumentan en longitud agregando material de pared celular a una punta de crecimiento. A medida que estas puntas se expanden y se extienden para producir nuevos puntos de crecimiento, se desarrolla una red llamada micelio. El crecimiento micelial ocurre por mitosis y la síntesis de biomasa hifal. Cuando dos hifas homocariotas de diferentes grupos de compatibilidad de apareamiento se fusionan entre sí, forman un micelio dicariótico en un proceso llamado plasmogamia . Los prerrequisitos para la supervivencia y colonización micelial de un sustrato (como madera podrida) incluyen humedad adecuada y disponibilidad de nutrientes. La mayoría de las especies de Cyathus son sapróbicas , por lo que el crecimiento micelial en madera podrida es posible gracias a la secreción de enzimas que descomponen polisacáridos complejos (como la celulosa y la lignina ) en azúcares simples que pueden usarse como nutrientes. [19]

Después de un período de tiempo y bajo las condiciones ambientales apropiadas, los micelios dicarióticos pueden entrar en la etapa reproductiva del ciclo de vida. La formación de cuerpos fructíferos está influenciada por factores externos como la estación (que afecta la temperatura y la humedad del aire), los nutrientes y la luz. A medida que los cuerpos fructíferos se desarrollan, producen peridiolos que contienen los basidios sobre los cuales se forman nuevas basidiosporas. Los basidios jóvenes contienen un par de núcleos haploides sexualmente compatibles que se fusionan, y el núcleo de fusión diploide resultante sufre meiosis para producir basidiosporas, cada una conteniendo un solo núcleo haploide. [20] El micelio dicariótico a partir del cual se producen los cuerpos fructíferos es duradero y continuará produciendo generaciones sucesivas de cuerpos fructíferos mientras las condiciones ambientales sean favorables.

Cyathus stercoreus

El desarrollo de los cuerpos fructíferos de Cyathus se ha estudiado en cultivos de laboratorio; C. stercoreus se ha utilizado con mayor frecuencia para estos estudios debido a la facilidad con la que se puede cultivar experimentalmente. [21] En 1958, E. Garnett demostró por primera vez que el desarrollo y la forma de los cuerpos fructíferos dependen al menos parcialmente de la intensidad de la luz que recibe durante el desarrollo. Por ejemplo, la exposición del micelio heterocariota a la luz es necesaria para que se produzca el fruto y, además, esta luz debe tener una longitud de onda inferior a 530 nm . No se requiere luz continua para el desarrollo del cuerpo fructífero; después de que el micelio ha alcanzado una determinada etapa de madurez, solo es necesaria una breve exposición a la luz y los cuerpos fructíferos se formarán incluso si se mantienen posteriormente en la oscuridad. [22] Lu sugirió en 1965 que ciertas condiciones de crecimiento, como la escasez de nutrientes disponibles, cambian el metabolismo del hongo para producir un hipotético "precursor fotorreceptor" que permite que el crecimiento de los cuerpos fructíferos sea estimulado y afectado por la luz. [23] El hongo también es fototrópico positivo , es decir, orientará sus cuerpos fructíferos en la dirección de la fuente de luz. [24] El tiempo necesario para desarrollar los cuerpos fructíferos depende de varios factores, como la temperatura o la disponibilidad y tipo de nutrientes, pero en general "la mayoría de las especies que fructifican en cultivos de laboratorio lo hacen mejor a unos 25 °C, en un período de 18 a 40 días". [25]

Compuestos bioactivos

Estructuras de la ciatina A 3 (izquierda) y de las ciatuscavinas (derecha) [26] [27]

Varias especies de Cyathus producen metabolitos con actividad biológica y estructuras químicas novedosas que son específicas de este género. Por ejemplo, las ciatinas son compuestos diterpenoides producidos por C. helenae , [28] [29] C. africanus [30] y C. earlei . [31] Varias de las ciatinas (especialmente las ciatinas B 3 y C 3 ), incluidos los compuestos de estriatina de C. striatus , [32] muestran una fuerte actividad antibiótica . [28] [33] Los diterpenoides de ciatano también estimulan la síntesis del factor de crecimiento nervioso y tienen el potencial de convertirse en agentes terapéuticos para trastornos neurodegenerativos como la enfermedad de Alzheimer . [34] Los compuestos denominados ciatuscavinas, aislados del cultivo líquido micelial de C. stercoreus , tienen una actividad antioxidante significativa , [27] al igual que los compuestos conocidos como ciatusales, también de C. stercoreus . [35] También se han identificado varios compuestos sesquiterpénicos en C. bulleri , incluidos el cibrodol (derivado del humuleno ), [36] el nidulol y la bullerona. [37]

Distribución y hábitat

Los cuerpos fructíferos crecen típicamente en racimos, y se encuentran en madera muerta o en descomposición, o en fragmentos leñosos en estiércol de vaca o caballo. [12] Las especies que aman el estiércol (coprófilas) incluyen C. stercoreus , C. costatus , C. fimicola y C. pygmaeus . [38] Algunas especies han sido recolectadas en material leñoso como tallos herbáceos muertos , cáscaras vacías o cáscaras de nueces, o en material fibroso como fibra de coco , yute o cáñamo tejida en esteras, sacos o tela. [39] En la naturaleza, los cuerpos fructíferos se encuentran generalmente en sitios húmedos, parcialmente sombreados, como los bordes de los bosques en senderos o alrededor de aberturas iluminadas en los bosques. Se encuentran con menos frecuencia creciendo en vegetación densa y musgos profundos, ya que estos entornos interferirían con la dispersión de peridiolos por la caída de gotas de agua. [40] La apariencia de los cuerpos fructíferos depende en gran medida de las características del entorno de crecimiento inmediato; En concreto, las condiciones óptimas de temperatura, humedad y disponibilidad de nutrientes son factores más importantes para la fruta que la amplia zona geográfica en la que se encuentran los hongos o la estación del año. [40] Ejemplos de la capacidad de Cyathus para prosperar en entornos algo inhóspitos son C. striatus y C. stercoreus , que pueden sobrevivir a la sequía y al frío del invierno en la zona templada de América del Norte, [41] y la especie C. helenae , que se ha encontrado creciendo en plantas alpinas muertas a una altitud de 2.100 metros (7.000 pies). [42]

C. poeppigii , una especie tropical

En general, las especies de Cyathus tienen una distribución mundial , pero rara vez se encuentran en el ártico y subártico . [3] Una de las especies más conocidas, C. striatus tiene una distribución circumpolar y se encuentra comúnmente en ubicaciones templadas , mientras que C. poeppigii, morfológicamente similar, está ampliamente distribuida en áreas tropicales , rara vez en los subtrópicos y nunca en regiones templadas. [43] La mayoría de las especies son nativas de climas cálidos. Por ejemplo, aunque se han reportado 20 especies diferentes de los Estados Unidos y Canadá, solo 8 se encuentran comúnmente; por otro lado, 25 especies pueden encontrarse regularmente en las Indias Occidentales , y solo las Islas Hawaianas tienen 11 especies. [44] Algunas especies parecen ser endémicas de ciertas regiones, como C. novae-zeelandiae que se encuentra en Nueva Zelanda , o C. crassimurus , que se encuentra solo en Hawai; Sin embargo, este aparente endemismo puede ser simplemente el resultado de una falta de colecciones, en lugar de una diferencia en el hábitat que constituye una barrera para la propagación. [44] Aunque está muy extendido en los trópicos y la mayor parte del mundo templado, C. stercoreus rara vez se encuentra en Europa; esto ha resultado en su aparición en varias Listas Rojas . Por ejemplo, se considera en peligro de extinción en Bulgaria , [45] Dinamarca , [46] y Montenegro , [47] y "casi amenazado" en Gran Bretaña . [48] El descubrimiento de una especie de Cyathus en ámbar dominicano ( C. dominicanus ) sugiere que la forma básica de los hongos de nido de pájaro ya había evolucionado en la era Cretácica y que el grupo se había diversificado a mediados del Cenozoico . [49]

Ecología

Dispersión de esporas

Al igual que otros hongos nido de pájaro de la familia Nidulariaceae , las especies de Cyathus dispersan sus esporas cuando el agua cae en el cuerpo fructífero. El cuerpo fructífero tiene una forma tal que la energía cinética de una gota de lluvia caída se redirige hacia arriba y ligeramente hacia afuera por el ángulo de la pared de la copa, que es constantemente de 70 a 75° con la horizontal. [50] La acción expulsa los peridiolos fuera de la llamada "copa de salpicaduras", donde pueden romperse y esparcir las esporas en su interior, o ser comidos y dispersados ​​por los animales después de pasar por el tracto digestivo. Este método de dispersión de esporas en las Nidulariaceae fue probado experimentalmente por George Willard Martin en 1924, [51] y más tarde elaborado por Arthur Henry Reginald Buller, quien utilizó C. striatus como especie modelo para investigar experimentalmente el fenómeno. [52] Las principales conclusiones de Buller sobre la dispersión de esporas fueron resumidas más tarde por su estudiante de posgrado Harold J. Brodie, con quien realizó varios de estos experimentos de copa de salpicaduras:

Las gotas de lluvia hacen que los peridiolos de las Nidulariaceae salgan despedidos unos cuatro pies por la acción del chapoteo. En el género Cyathus , cuando un peridiolo es sacado de su copa, el funículo se rompe y esto hace posible la expansión de una masa de hifas adhesivas (el hapterón) que se adhiere a cualquier objeto en la línea de vuelo. El impulso del peridiolo hace que un cordón largo salga de una vaina unida al peridiolo. El peridiolo se detiene en vuelo y el tirón hace que el cordón funicular se enrolle alrededor de los tallos o se enrede entre los pelos de las plantas. De este modo, el peridiolo se adhiere a la vegetación y puede ser comido posteriormente por animales herbívoros. [53]

Aunque no se ha demostrado experimentalmente si las esporas pueden sobrevivir al paso por el tracto digestivo de un animal, la presencia regular de Cyathus en el estiércol de vaca o caballo sugiere firmemente que esto es cierto. [54] Alternativamente, la cubierta exterior dura de los peridiolos expulsados ​​de los vasos de salpicaduras puede simplemente desintegrarse con el tiempo, liberando finalmente las esporas en su interior. [55]

Usos

Las especies de la familia Nidulariaceae, incluyendo Cyathus , se consideran incomestibles, ya que (en palabras de Brodie) "no son lo suficientemente grandes, carnosas ni olorosas como para ser de interés para los humanos como alimento". [56] Sin embargo, no ha habido informes de alcaloides venenosos u otras sustancias consideradas tóxicas para los humanos. Brodie continúa señalando que los pueblos nativos han utilizado dos especies de Cyathus como afrodisíaco o para estimular la fertilidad : C. limbatus en Colombia y C. microsporus en Guadalupe . Se desconoce si estas especies tienen algún efecto real en la fisiología humana . [57]

Biodegradación

Cyathus olla ; observe el endoperidio liso (no plegado) y los peridiolos relativamente grandes.

La lignina es un compuesto químico polimérico complejo que es un componente principal de la madera. Resistente a la descomposición biológica, su presencia en el papel lo hace más débil y más propenso a decolorarse cuando se expone a la luz. La especie C. bulleri contiene tres enzimas que degradan la lignina: lignina peroxidasa , peroxidasa de manganeso y lacasa . [58] Estas enzimas tienen aplicaciones potenciales no solo en la industria de la pulpa y el papel , sino también para aumentar la digestibilidad y el contenido proteico del forraje para el ganado. Debido a que las lacasas pueden descomponer los compuestos fenólicos , pueden usarse para desintoxicar algunos contaminantes ambientales, como los tintes utilizados en la industria textil . [59] [60] [61] La lacasa de C. bulleri también ha sido modificada genéticamente para ser producida por Escherichia coli , lo que la convierte en la primera lacasa fúngica producida en un huésped bacteriano. [60] C. pallidus puede biodegradar el compuesto explosivo RDX (hexahidro-1,3,5-trinitro-1,3,5-triazina), lo que sugiere que podría utilizarse para descontaminar suelos contaminados con municiones . [62]

Agricultura

Se ha investigado la capacidad de Cyathus olla para acelerar la descomposición del rastrojo que queda en el campo después de la cosecha, reduciendo eficazmente las poblaciones de patógenos y acelerando el ciclo de nutrientes a través de la mineralización de nutrientes esenciales para las plantas. [63] [64]

Biología humana

Varias especies de Cyathus tienen actividad antifúngica contra patógenos humanos como Aspergillus fumigatus , Candida albicans y Cryptococcus neoformans . [65] Los extractos de C. striatus tienen efectos inhibidores sobre NF-κB , un factor de transcripción responsable de regular la expresión de varios genes involucrados en el sistema inmunológico , la inflamación y la muerte celular . [66]

Referencias

  1. ^ Kirk MP, Cannon PF, Minter DW, Stalpers JA (2008). Diccionario de los hongos (10.ª ed.). Wallingford, Reino Unido: CAB International. pág. 185. ISBN 978-0-85199-826-8.
  2. ^ por Brodie (1975), pág. 15.
  3. ^ abcd Brodie (1975), pág. 150.
  4. ^ Schmitz J. (1842). "Morphologische Beobachtungen als Beiträge zur Leben und Entwicklungsgeschichte einiger Schwämme aus der Klasse der Gastromyceten und Hymenomyceten". Linnea (en alemán). 16 : 141–215.
  5. ^ ab Tulasne LR, Tulasne C (1844). "Recherches sur l'organisation et le mode de fructification des champignons de la tribu des Nidulariées, suivies d'un essai monographique". Annales des Sciences Naturelles . 3ª serie (en francés). 1 : 41-107.
  6. ^ ab White VS. (1902). "Las Nidulariaceae de Norteamérica". Boletín del Club Botánico Torrey . 29 (5): 251–80. doi :10.2307/2478721. JSTOR  2478721.
  7. ^ abc Lloyd CG. (1906). "Las Nidulariaceae". Escritos micológicos . 2 : 1–30.
  8. Cunningham GH. (1924). «Una revisión de los Nidulariales de Nueva Zelanda, u 'hongos nido de pájaro'». Transactions of the New Zealand Institute . 55 : 59–66. Archivado desde el original el 7 de diciembre de 2014. Consultado el 5 de diciembre de 2014 .
  9. ^ Brodie, Los hongos del nido del pájaro .
  10. ^ Brodie (1975) págs. 150–80.
  11. ^ abc Zhao RL, Jeewon R, Desjardin DE, Soytong K, Hyde KD (2007). "Filogenias del ADN ribosómico de Cyathus : ¿es apropiada la clasificación infragenérica actual?". Mycologia . 99 (3): 385–95. doi :10.3852/mycologia.99.3.385. PMID  17883030.
  12. ^ abc Miller HR, Miller OK (1988). Gasteromycetes: características morfológicas y de desarrollo, con claves para los órdenes, familias y géneros . Eureka, California: Mad River Press. pág. 71. ISBN 978-0-916422-74-5.
  13. ^ Brodie (1975), págs. 5-7.
  14. ^ Brodie (1975), pág. 147.
  15. ^ Alexopolous y col. (1996), pág. 545.
  16. ^ Brodie (1975), pág. 6.
  17. ^ Brodie (1975), pág. 129.
  18. ^ Schmidt O. (2006). Hongos de la madera y de los árboles: biología, daños, protección y uso . Berlín, Alemania: Springer. pp. 10-1. ISBN 978-3-540-32138-5.
  19. ^ Diácono (2005), págs. 231–4.
  20. ^ Diácono (2005) págs. 31–2.
  21. ^ Brodie HJ. (1948). "Variación de los cuerpos fructíferos de Cyathus stercoreus producidos en cultivo". Mycologia . 40 (5): 614–26. doi :10.2307/3755260. JSTOR  3755260.
  22. ^ Garnett E. (1958). Estudios de factores que afectan la formación de cuerpos fructíferos en Cyathus stercoreus (Schw.) de Toni (tesis doctoral). Bloomington, Indiana: Indiana University.
  23. ^ Lu B. (1965). "El papel de la luz en la fructificación del basidiomiceto Cyathus stercoreus ". American Journal of Botany . 52 (5): 432–7. doi :10.2307/2440258. JSTOR  2440258.
  24. ^ Brodie (1975), págs. 57-8.
  25. ^ Brodie (1975), pág. 48.
  26. ^ Compuesto C09079 en la base de datos de rutas KEGG .
  27. ^ ab Kang HS, Kim KR, Jun EM, Park SH, Lee TS, Suh JW, Kim JP (2008). "Cyathuscavins A, B y C, nuevos captadores de radicales libres con actividad de protección del ADN del basidiomiceto Cyathus stercoreus". Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters . 18 (14): 4047–50. doi :10.1016/j.bmcl.2008.05.110. PMID  18565749. Archivado desde el original el 2023-04-19 . Consultado el 2019-07-04 .
  28. ^ ab Allbutt AD, Ayer WA, Brodie HJ, Johri BN, Taube H (1971). "Cyathin, un nuevo complejo antibiótico producido por Cyathus helenae ". Revista Canadiense de Microbiología . 17 (11): 1401–7. doi :10.1139/m71-223. PMID  5156938.
  29. ^ Ayer WA, Taube H (1972). "Metabolitos de Cyathus helenae ". Letras de tetraedro . 13 (19): 1917–20. doi :10.1016/S0040-4039(01)84751-1.
  30. ^ Ayer WA, Yoshida T, Van Schie DM (1978). "Metabolitos diterpenoides de Cyathus africanus Brodie". Revista Canadiense de Química . 56 (16): 2197–9. doi :10.1139/v78-345.
  31. ^ Ayer WA, Lee SP (1979). "Metabolitos de hongos nido de pájaro. Parte 11. Metabolitos diterpenoides de Cyathus earlei Lloyd". Revista Canadiense de Química . 57 (24): 3332–7. doi :10.1139/v79-543.
  32. ^ Anke T, Oberwinkler F (1977). "Las estriatinas: nuevos antibióticos a partir del basidiomiceto Cyathus striatus (Huds. ex Pers.) Willd". Revista de antibióticos . 30 (3): 221–5. doi : 10.7164/antibiotics.30.221 . PMID  863783.
  33. ^ Johri BN, Brodie HJ, Allbutt AD, Ayer WA, Taube H (1971). "Un complejo antibiótico previamente desconocido del hongo Cyathus helenae". Experientia . 27 (7): 853. doi : 10.1007/BF02136907 . PMID  5167804.
  34. ^ Krzyczkowski W. (2008). "Estructura, propiedades medicinales y biosíntesis de los diterpenoides de ciatano". Biotechnologia . 1 (80): 146–67.
  35. ^ Kang HS, Jun EM, Park SH, Heo SJ, Lee TS, Yoo ID, Kim JP (2007). "Cyatusales A, B y C, antioxidantes del hongo fermentado Cyathus stercoreus ". Journal of Natural Products . 70 (6): 1043–5. doi :10.1021/np060637h. PMID  17511503.
  36. ^ Ayer WA, McCaskill RH (1981). "Las cibrodinas, una nueva clase de sesquiterpenos". Revista Canadiense de Química . 59 (14): 2150–8. doi :10.1139/v81-310.
  37. ^ Ayer WA, McCaskill RH (1987). "Bullerona, un nuevo sesquiterpenoide de Cyathus bulleri Brodie". Revista Canadiense de Química . 65 (1): 15–7. doi :10.1139/v87-003.
  38. ^ Brodie (1975), págs. 102-3.
  39. ^ Brodie (1975), pág. 105.
  40. ^ por Brodie (1975), pág. 101.
  41. ^ Brodie HJ. (1958). "Renovación del crecimiento y aparición de cuerpos fructíferos gemelos en las Nidulariaceae". Svensk Botanisk Tidskrift . 52 : 373–8.
  42. ^ Brodie HJ. (1966). "Una nueva especie de Cyathus de las Montañas Rocosas canadienses". Revista Canadiense de Botánica . 44 (10): 1235–7. doi :10.1139/b66-138.
  43. ^ Brodie (1975), pág. 116.
  44. ^ por Brodie (1975), pág. 117.
  45. ^ Gyosheva MM, Denchev CM, Dimitrova EG, Assyov B, Petrova RD, Stoichev GT (2006). "Lista roja de hongos en Bulgaria" (PDF) . Mycologia Balcanica . 3 : 81–7. Archivado (PDF) desde el original el 7 de julio de 2011. Consultado el 26 de marzo de 2009 .
  46. ^ "DMU - B-FDC - Den danske Rødliste". Instituto Nacional de Investigaciones Ambientales. 1997. Archivado desde el original el 18 de julio de 2011 . Consultado el 26 de marzo de 2009 .
  47. ^ Peric B, Peric O (2005). "La lista roja provisional de macromicetos en peligro de Montenegro" (PDF) . Consejo Europeo para la Conservación de los Hongos. Archivado (PDF) desde el original el 2016-03-03 . Consultado el 2009-03-26 .
  48. ^ Evans S. (2007). "The Red Data List of threated British fungi" (PDF) . Sociedad Británica de Micología. Archivado (PDF) desde el original el 14 de diciembre de 2010. Consultado el 26 de marzo de 2009 .
  49. ^ Poinar G Jr. (2014). "Hongos nido de pájaro (Nidulariales: Nidulariaceae) en ámbar báltico y dominicano". Biología fúngica . 118 (3): 325–29. doi :10.1016/j.funbio.2014.01.004. PMID  24607356.
  50. ^ Brodie (1975), pág. 89.
  51. ^ Martin GW. (1927). "Basidia y las esporas de las Nidulariaceae". Mycologia . 19 (5): 239–47. doi :10.2307/3753710. JSTOR  3753710. Archivado desde el original el 19 de abril de 2023 . Consultado el 24 de enero de 2009 .
  52. ^ Buller AHR. (1942). "Las copas de salpicaduras de los hongos nido de pájaro, hepáticas y musgos". Actas de la Royal Society of Canada. III . 36 : 159.
  53. ^ Brodie HJ. (1951). "El mecanismo de dispersión por salpicadura en plantas". Revista Canadiense de Botánica . 29 (3): 224–34. doi :10.1139/b51-022.
  54. ^ Alexopolous y col. (1996), pág. 555.
  55. ^ Orr DB, Orr RT (1979). Hongos del oeste de Norteamérica . Berkeley, California: University of California Press. pág. 117. ISBN. 978-0-520-03656-7.
  56. ^ Brodie (1975), pág. 119.
  57. ^ Brodie (1975), pág. 120.
  58. ^ Vasdev K. (1995). Enzimas que degradan la lignina y sistema ligninolítico de Cyathus sp. (tesis doctoral). Delhi, India: Universidad de Delhi.
  59. ^ Chabra M, Mishra S, Sreekrishnan TR (2008). "Descoloración y desintoxicación asistida por mediadores de tintes textiles/mezcla de tintes mediante lacasa de Cyathus bulleri ". Applied Biochemistry and Biotechnology . 151 (2–3): 587–98. doi :10.1007/s12010-008-8234-z. PMID  18506632. S2CID  38874993.
  60. ^ ab Salony, Garg N, Baranwal R, Chhabra M, Mishra S, Chaudhuri TK, Bisaria VS (2008). "Lacasa de Cyathus bulleri : caracterización estructural, catalítica y expresión en Escherichia coli ". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Proteínas y Proteómica . 1784 (2): 259–68. doi :10.1016/j.bbapap.2007.11.006. PMID  18083129.
  61. ^ Salony, Mishra S, Bisaria VS (2006). "Producción y caracterización de lacasa de Cyathus bulleri y su uso en la decoloración de tintes textiles recalcitrantes". Applied Microbiology and Biotechnology . 71 (5): 646–53. doi :10.1007/s00253-005-0206-4. PMID  16261367. S2CID  38760041.
  62. ^ Bayman P, Ritchey SD, Bennett JW (1995). "Interacciones fúngicas con el explosivo RDX (hexahidro-1,3,5-trinitro-1,3,5-triazina)". Revista de microbiología industrial . 15 (5): 418–23. doi : 10.1007/BF01569968 . S2CID  20115808.
  63. ^ Blenis PV, Chow P (2005). "Evaluación de hongos de la madera y la canola por su capacidad para descomponer el rastrojo de canola". Revista Canadiense de Patología Vegetal . 27 (2): 259–67. Bibcode :2005CaJPP..27..259B. doi :10.1080/07060660509507223. S2CID  83908810.
  64. ^ Shinners-Carnelley TC, Szpacenko A, Tewari JP, Palcic MM (2002). "Actividad enzimática de Cyathus olla durante la fermentación en estado sólido de raíces de canola". Fitoprotección . 83 (1): 31–40. doi : 10.7202/706227ar .
  65. ^ Liu YJ, Zhang KQ (2004). "Actividades antimicrobianas de especies seleccionadas de Cyathus ". Mycopatologia . 157 (2): 185–9. doi :10.1023/B:MYCO.0000020598.91469.d1. PMID  15119855. S2CID  26899906.
  66. ^ Petrova RD, Mahajna J, Reznick AZ, Wasser SP, Denchev CM, Nevo E (2007). "Sustancias fúngicas como moduladores de la vía de activación de NF-κB". Molecular Biology Reports . 34 (3): 145–54. doi :10.1007/s11033-006-9027-5. PMID  17094008. S2CID  21776146.

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