stringtranslate.com

Metabolismo de los ácidos grasos

El metabolismo de los ácidos grasos consiste en diversos procesos metabólicos que involucran o están estrechamente relacionados con los ácidos grasos , una familia de moléculas clasificadas dentro de la categoría de macronutrientes lipídicos . Estos procesos se pueden dividir principalmente en (1) procesos catabólicos que generan energía y (2) procesos anabólicos en los que sirven como componentes básicos para otros compuestos. [1]

En el catabolismo, los ácidos grasos se metabolizan para producir energía, principalmente en forma de trifosfato de adenosina (ATP). En comparación con otras clases de macronutrientes (carbohidratos y proteínas), los ácidos grasos producen la mayor cantidad de ATP en términos de energía por gramo, cuando se oxidan completamente a CO 2 y agua mediante la oxidación beta y el ciclo del ácido cítrico . [2] Los ácidos grasos (principalmente en forma de triglicéridos ) son, por lo tanto, la principal forma de almacenamiento de combustible en la mayoría de los animales y, en menor medida, en las plantas.

En el anabolismo, los ácidos grasos intactos son importantes precursores de triglicéridos, fosfolípidos, segundos mensajeros, hormonas y cuerpos cetónicos . Por ejemplo, los fosfolípidos forman las bicapas de fosfolípidos a partir de las cuales se construyen todas las membranas de la célula a partir de ácidos grasos. Los fosfolípidos comprenden la membrana plasmática y otras membranas que encierran todos los orgánulos dentro de las células, como el núcleo , las mitocondrias , el retículo endoplásmico y el aparato de Golgi . En otro tipo de anabolismo, los ácidos grasos se modifican para formar otros compuestos como segundos mensajeros y hormonas locales . Las prostaglandinas producidas a partir del ácido araquidónico almacenado en la membrana celular son probablemente las más conocidas de estas hormonas locales.

Catabolismo de ácidos grasos

Una ilustración esquemática del proceso de lipólisis (en una célula grasa) inducida por niveles altos de epinefrina y niveles bajos de insulina en la sangre. La epinefrina se une a un receptor beta-adrenérgico en la membrana celular del adipocito, lo que hace que se genere AMPc dentro de la célula. El AMPc activa una proteína quinasa , que se fosforila y así, a su vez, activa una lipasa sensible a hormonas en la célula grasa. Esta lipasa escinde los ácidos grasos libres de su unión al glicerol en la grasa almacenada en la gota de grasa del adipocito. Luego, los ácidos grasos libres y el glicerol se liberan a la sangre. Sin embargo, estudios más recientes han demostrado que la lipasa de triglicéridos adiposos primero debe convertir los triacilglicéridos en diacilglicéridos, y que la lipasa sensible a hormonas convierte los diacilglicéridos en monoglicéridos y ácidos grasos libres. Los monoglicéridos son hidrolizados por la lipasa monoglicérido. [3] La actividad de la lipasa sensible a hormonas está regulada por las hormonas circulantes insulina , glucagón , norepinefrina y epinefrina , como se muestra en el diagrama.
Una ilustración esquemática del transporte de ácidos grasos libres en la sangre unidos a la albúmina plasmática , su difusión a través de la membrana celular utilizando un transportador de proteínas y su activación, utilizando ATP , para formar acil-CoA en el citosol . La ilustración es, para fines esquemáticos, de un ácido graso de 12 carbonos. La mayoría de los ácidos grasos del plasma humano tienen 16 o 18 átomos de carbono.
Ilustración esquemática de la transferencia de una molécula de acil-CoA a través de la membrana interna de la mitocondria mediante la carnitina-acil-CoA transferasa (CAT). La cadena de acilo ilustrada tiene, a efectos esquemáticos, sólo 12 átomos de carbono de longitud. La mayoría de los ácidos grasos del plasma humano tienen 16 o 18 átomos de carbono. La CAT es inhibida por altas concentraciones de malonil-CoA (el primer paso comprometido en la síntesis de ácidos grasos ) en el citoplasma. Esto significa que la síntesis y el catabolismo de los ácidos grasos no pueden ocurrir simultáneamente en una célula determinada.
Ilustración esquemática del proceso de betaoxidación de una molécula de acil-CoA en la matriz mitocondrial. Durante este proceso se forma una molécula de acil-CoA que es 2 carbonos más corta que al comienzo del proceso. Acetil-CoA, agua y 5 moléculas de ATP son los otros productos de cada evento beta-oxidativo, hasta que toda la molécula de acil-CoA se ha reducido a un conjunto de moléculas de acetil-CoA .

Los ácidos grasos se almacenan como triglicéridos en los depósitos de grasa del tejido adiposo . Entre comidas se liberan de la siguiente manera:

  1. La acil-CoA es transferida al grupo hidroxilo de la carnitina por la carnitina palmitoiltransferasa I , ubicada en las caras citosólicas de las membranas mitocondriales externa e interna .
  2. La acilcarnitina es transportada al interior mediante una translocasa de carnitina-acilcarnitina , del mismo modo que la carnitina es transportada al exterior.
  3. La acil-carnitina se convierte nuevamente en acil-CoA mediante la carnitina palmitoiltransferasa II , ubicada en la cara interior de la membrana mitocondrial interna . La carnitina liberada se devuelve al citosol, al igual que una acil-CoA se transporta a la matriz mitocondrial.
Brevemente, los pasos de la oxidación beta son los siguientes: [2]
  1. Deshidrogenación por acil-CoA deshidrogenasa , produciendo 1 FADH 2
  2. Hidratación por enoil-CoA hidratasa
  3. Deshidrogenación por 3-hidroxiacil-CoA deshidrogenasa , produciendo 1 NADH+H +
  4. Escisión por tiolasa , produciendo 1 acetil-CoA y un ácido graso que ahora se ha acortado en 2 carbonos (formando una nueva acil-CoA acortada )
Esta reacción de beta oxidación se repite hasta que el ácido graso se ha reducido completamente a acetil-CoA o, en el caso de ácidos grasos con números impares de átomos de carbono, acetil-CoA y 1 molécula de propionil-CoA por molécula de ácido graso. Cada corte beta oxidativo de la molécula de acil-CoA eventualmente produce 5 moléculas de ATP en la fosforilación oxidativa. [13] [14]
El propionil-CoA se convierte posteriormente en succinil-CoA a través de la propionil-CoA carboxilasa (PCC) dependiente de biotina y la metilmalonil-CoA mutasa (MCM) dependiente de vitamina B12 , secuencialmente. [15] [16] La succinil-CoA se convierte primero en malato y luego en piruvato, donde luego se transporta a la matriz para ingresar al ciclo del ácido cítrico.

En el hígado, el oxalacetato puede desviarse total o parcialmente hacia la vía gluconeogénica durante el ayuno, la inanición, una dieta baja en carbohidratos, el ejercicio extenuante prolongado y en la diabetes mellitus tipo 1 no controlada . En estas circunstancias, el oxaloacetato se hidrogena a malato , que luego se elimina de las mitocondrias de las células del hígado para convertirse en glucosa en el citoplasma de las células del hígado, desde donde se libera a la sangre. [10] En el hígado, por lo tanto, el oxaloacetato no está disponible para la condensación con acetil-CoA cuando una gluconeogénesis significativa ha sido estimulada por concentraciones bajas (o ausentes) de insulina y altas de glucagón en la sangre. En estas condiciones, el acetil-CoA se desvía hacia la formación de acetoacetato y beta-hidroxibutirato . [10] El acetoacetato, el beta-hidroxibutirato y su producto de descomposición espontánea, la acetona , se conocen con frecuencia, pero de manera confusa, como cuerpos cetónicos (ya que no son "cuerpos" en absoluto, sino sustancias químicas solubles en agua). Las cetonas son liberadas por el hígado a la sangre. Todas las células con mitocondrias pueden absorber cetonas de la sangre y reconvertirlas en acetil-CoA, que luego puede usarse como combustible en sus ciclos del ácido cítrico, ya que ningún otro tejido puede desviar su oxalacetato hacia la vía gluconeogénica de la manera que esto puede hacerlo. ocurren en el hígado. A diferencia de los ácidos grasos libres, las cetonas pueden cruzar la barrera hematoencefálica y, por tanto, están disponibles como combustible para las células del sistema nervioso central , actuando como sustituto de la glucosa, con la que normalmente sobreviven estas células. [10] La aparición de niveles elevados de cetonas en la sangre durante la inanición, una dieta baja en carbohidratos, ejercicio intenso prolongado o diabetes mellitus tipo 1 no controlada se conoce como cetosis y, en su forma extrema, en el tipo fuera de control. 1 diabetes mellitus, como cetoacidosis .

El glicerol liberado por la acción de la lipasa es fosforilado por la glicerol quinasa en el hígado (el único tejido en el que puede ocurrir esta reacción), y el glicerol 3-fosfato resultante se oxida a dihidroxiacetona fosfato . La enzima glicolítica triosa fosfato isomerasa convierte este compuesto en gliceraldehído 3-fosfato , que se oxida mediante glucólisis o se convierte en glucosa mediante gluconeogénesis .

Los ácidos grasos como fuente de energía.

Ejemplo de un triglicérido de grasa insaturada. Parte izquierda: glicerol , parte derecha de arriba a abajo: ácido palmítico , ácido oleico , ácido alfa-linolénico . Fórmula química: C 55 H 98 O 6

Los ácidos grasos, almacenados como triglicéridos en el organismo, son una fuente concentrada de energía porque contienen poco oxígeno y son anhidros . El rendimiento energético de un gramo de ácidos grasos es de aproximadamente 9 kcal (37 kJ), mucho mayor que las 4 kcal (17 kJ) de los carbohidratos. Dado que la porción hidrocarbonada de los ácidos grasos es hidrófoba , estas moléculas pueden almacenarse en un ambiente relativamente anhidro (libre de agua). Los carbohidratos, por el contrario, están más hidratados. Por ejemplo, 1 g de glucógeno se une a aproximadamente 2 g de agua , lo que se traduce en 1,33 kcal/g (4 kcal/3 g). Esto significa que los ácidos grasos pueden contener más de seis veces la cantidad de energía por unidad de masa almacenada. Dicho de otra manera, si el cuerpo humano dependiera de los carbohidratos para almacenar energía, entonces una persona necesitaría transportar 31 kg (67,5 lb ) de glucógeno hidratado para tener la energía equivalente a 4,6 kg (10 lb) de grasa . [10]

Los animales que hibernan son un buen ejemplo de utilización de las reservas de grasa como combustible. Por ejemplo, los osos hibernan durante unos 7 meses y durante todo este período la energía se obtiene de la degradación de las reservas de grasa. De manera similar, las aves migratorias acumulan grandes reservas de grasa antes de emprender sus viajes intercontinentales. [17]

Las reservas de grasa de los humanos adultos jóvenes promedian entre 10 y 20 kg, pero varían mucho según el género y la disposición individual. [18] Por el contrario, el cuerpo humano almacena sólo unos 400 g de glucógeno , de los cuales 300 g están encerrados dentro de los músculos esqueléticos y no están disponibles para el cuerpo en su conjunto. Los aproximadamente 100 gramos de glucógeno almacenados en el hígado se agotan al día siguiente de la inanición. [10] A partir de entonces, la glucosa que el hígado libera en la sangre para uso general de los tejidos del cuerpo debe sintetizarse a partir de los aminoácidos glucogénicos y algunos otros sustratos gluconeogénicos , que no incluyen los ácidos grasos. [1] No obstante, la lipólisis libera glicerol que puede entrar en la vía de la gluconeogénesis.

Síntesis de carbohidratos a partir de glicerol y ácidos grasos.

Los ácidos grasos se descomponen en acetil-CoA mediante beta oxidación dentro de las mitocondrias, mientras que los ácidos grasos se sintetizan a partir de acetil-CoA fuera de las mitocondrias, en el citosol. Las dos vías son distintas, no sólo en el lugar donde ocurren, sino también en las reacciones que ocurren y los sustratos que se utilizan. Las dos vías se inhiben mutuamente, impidiendo que la acetil-CoA producida por la beta-oxidación entre en la vía sintética a través de la reacción de la acetil-CoA carboxilasa . [1] Tampoco se puede convertir en piruvato ya que la reacción del complejo piruvato deshidrogenasa es irreversible. [10] En cambio, el acetil-CoA producido por la beta-oxidación de ácidos grasos se condensa con oxaloacetato , para entrar en el ciclo del ácido cítrico . Durante cada vuelta del ciclo, dos átomos de carbono abandonan el ciclo como CO 2 en las reacciones de descarboxilación catalizadas por la isocitrato deshidrogenasa y la alfa-cetoglutarato deshidrogenasa . Así, cada vuelta del ciclo del ácido cítrico oxida una unidad de acetil-CoA mientras se regenera la molécula de oxaloacetato con la que el acetil-CoA se había combinado originalmente para formar ácido cítrico. Las reacciones de descarboxilación ocurren antes de que se forme malato en el ciclo. [1] Sólo las plantas poseen las enzimas para convertir el acetil-CoA en oxaloacetato a partir del cual se puede formar malato para finalmente convertirse en glucosa. [1]

Sin embargo, el acetil-CoA se puede convertir en acetoacetato, que puede descarboxilarse en acetona (ya sea espontáneamente o catalizado por la acetoacetato descarboxilasa ). Luego puede metabolizarse aún más a isopropanol, que se excreta en el aliento/orina, o por CYP2E1 en hidroxiacetona (acetol). El acetol se puede convertir en propilenglicol . Esto se convierte en piruvato (mediante dos enzimas alternativas), o propionaldehído , o en L -lactaldehído y luego en L -lactato (el isómero común del lactato). [19] [20] [21] Otra vía convierte el acetol en metilglioxal , luego en piruvato , o en D -lactaldehído (a través de SD -lactoil-glutatión o de otro modo) y luego en D -lactato . [20] [22] [23] El metabolismo del D-lactato (a glucosa) es lento o está alterado en los seres humanos, por lo que la mayor parte del D-lactato se excreta en la orina; por lo tanto, el D -lactato derivado de la acetona puede contribuir significativamente a la acidosis metabólica asociada con la cetosis o la intoxicación por isopropanol. [20] El L -Lactato puede completar la conversión neta de ácidos grasos en glucosa. El primer experimento que mostró la conversión de acetona en glucosa se llevó a cabo en 1951. Este y otros experimentos utilizaron marcaje isotópico de carbono . [21] Hasta el 11% de la glucosa puede derivarse de la acetona durante la inanición en humanos. [21]

El glicerol liberado en la sangre durante la lipólisis de los triglicéridos en el tejido adiposo sólo puede ser absorbido por el hígado. Aquí se convierte en glicerol 3-fosfato mediante la acción de la glicerol quinasa que hidroliza una molécula de ATP por molécula de glicerol fosforilada. Luego, el glicerol 3-fosfato se oxida a dihidroxiacetona fosfato , que, a su vez, se convierte en gliceraldehído 3-fosfato mediante la enzima triosa fosfato isomerasa . A partir de aquí, los tres átomos de carbono del glicerol original pueden oxidarse mediante glucólisis o convertirse en glucosa mediante gluconeogénesis . [10]

Otras funciones y usos de los ácidos grasos

señalización intracelular

Estructura química del diglicérido 1-palmitoil-2-oleoil-glicerol

Los ácidos grasos son una parte integral de los fosfolípidos que constituyen la mayor parte de las membranas plasmáticas , o membranas celulares, de las células. Estos fosfolípidos pueden escindirse en diacilglicerol (DAG) y trifosfato de inositol (IP 3 ) mediante la hidrólisis del fosfolípido, fosfatidilinositol 4,5-bifosfato (PIP 2 ), por la enzima fosfolipasa C (PLC) unida a la membrana celular. [24]

Hormonas paracrinas eicosanoides

Ácido araquidónico
Prostaglandina E 1 - Alprostadil

Un producto del metabolismo de los ácidos grasos son las prostaglandinas , compuestos que tienen diversos efectos similares a los de las hormonas en los animales. Se han encontrado prostaglandinas en casi todos los tejidos de humanos y otros animales. Se derivan enzimáticamente del ácido araquidónico, un ácido graso poliinsaturado de 20 carbonos. Por tanto, cada prostaglandina contiene 20 átomos de carbono , incluido un anillo de 5 carbonos . Son una subclase de eicosanoides y forman la clase de prostanoides de derivados de ácidos grasos. [25]

Las prostaglandinas se sintetizan en la membrana celular mediante la escisión del araquidonato de los fosfolípidos que forman la membrana. Esto es catalizado por una fosfolipasa A 2 que actúa directamente sobre un fosfolípido de membrana o por una lipasa que actúa sobre DAG (diacilglicerol). Luego, el componente ciclooxigenasa de la prostaglandina sintasa actúa sobre el araquidonato . Esto forma un anillo de ciclopentano aproximadamente en el medio de la cadena de ácidos grasos. La reacción también suma 4 átomos de oxígeno derivados de dos moléculas de O 2 . La molécula resultante es la prostaglandina G 2 , que el componente hidroperoxidasa del complejo enzimático convierte en prostaglandina H 2 . Este compuesto altamente inestable se transforma rápidamente en otras prostaglandinas, prostaciclina y tromboxanos. [25] Estos luego se liberan en los líquidos intersticiales que rodean las células que han fabricado la hormona eicosanoide.

Si el araquidonato actúa sobre una lipoxigenasa en lugar de una ciclooxigenasa, se forman ácidos hidroxieicosatetraenoicos y leucotrienos . También actúan como hormonas locales.

Las prostaglandinas tienen dos derivados: las prostaciclinas y los tromboxanos . Las prostaciclinas son potentes vasodilatadores de acción local e inhiben la agregación de plaquetas sanguíneas . A través de su papel en la vasodilatación, las prostaciclinas también participan en la inflamación . Se sintetizan en las paredes de los vasos sanguíneos y cumplen la función fisiológica de prevenir la formación de coágulos innecesarios, así como de regular la contracción del tejido muscular liso . [26] Por el contrario, los tromboxanos (producidos por las células plaquetarias) son vasoconstrictores y facilitan la agregación plaquetaria. Su nombre proviene de su papel en la formación de coágulos ( trombosis ).

Fuentes dietéticas de ácidos grasos, su digestión, absorción, transporte en la sangre y almacenamiento.

Las grasas dietéticas se emulsionan en el duodeno mediante jabones en forma de sales biliares y fosfolípidos, como la fosfatidilcolina . Las gotitas de grasa así formadas pueden ser atacadas por la lipasa pancreática.
Estructura de un ácido biliar (ácido cólico), representada en la forma estándar, en una forma 3D semi-realista y en una forma esquemática 3D.
Ilustración esquemática de micelas mixtas formadas en el duodeno en presencia de ácidos biliares (por ejemplo, ácido cólico) y los productos de la digestión de las grasas, las vitaminas liposolubles y el colesterol.

Una proporción importante de los ácidos grasos del organismo se obtienen de la dieta, en forma de triglicéridos, ya sea de origen animal o vegetal. Los ácidos grasos de las grasas obtenidas de animales terrestres tienden a ser saturados, mientras que los ácidos grasos de los triglicéridos de peces y plantas suelen ser poliinsaturados y, por tanto, están presentes en forma de aceites.

Estos triglicéridos no pueden ser absorbidos por el intestino . [27] Se descomponen en mono y diglicéridos más ácidos grasos libres (pero no en glicerol libre) por la lipasa pancreática , que forma un complejo 1:1 con una proteína llamada colipasa (también un constituyente del jugo pancreático), que es necesario para su actividad. El complejo activado sólo puede funcionar en la interfaz agua-grasa. Por lo tanto, es esencial que las grasas sean primero emulsionadas con sales biliares para una actividad óptima de estas enzimas. [28] Los productos de la digestión consisten en una mezcla de triglicéridos, diglicéridos y monoglicéridos y ácidos grasos libres que, junto con otros contenidos liposolubles de la dieta (por ejemplo, las vitaminas liposolubles y el colesterol) y las sales biliares, forman micelas mixtas. , en el contenido duodenal acuoso (ver diagramas a la derecha). [27] [29]

El contenido de estas micelas (pero no las sales biliares) ingresa a los enterocitos (células epiteliales que recubren el intestino delgado), donde se resintetizan en triglicéridos y se empaquetan en quilomicrones que se liberan en los lácteos (los capilares del sistema linfático de los intestinos). ). [30] Estos lácteos drenan en el conducto torácico que desemboca en la sangre venosa en la unión de las venas yugular izquierda y subclavia izquierda en la parte inferior izquierda del cuello. Esto significa que los productos liposolubles de la digestión se descargan directamente a la circulación general, sin pasar primero por el hígado, a diferencia de todos los demás productos de la digestión. Se desconoce el motivo de esta peculiaridad. [31]

Un diagrama esquemático de un quilomicrón.

Los quilomicrones circulan por todo el cuerpo, dando al plasma sanguíneo un aspecto lechoso o cremoso después de una comida grasa. [ cita necesaria ] La lipoproteína lipasa en las superficies endoteliales de los capilares, especialmente en el tejido adiposo , pero en menor medida también en otros tejidos, digiere parcialmente los quilomicrones en ácidos grasos libres, glicerol y restos de quilomicrones. Los ácidos grasos son absorbidos por los adipocitos [ cita necesaria ] , pero los restos de glicerol y quilomicrones permanecen en el plasma sanguíneo y, en última instancia, el hígado los elimina de la circulación. Los ácidos grasos libres liberados por la digestión de los quilomicrones son absorbidos por los adipocitos [ cita requerida ] , donde se resintetizan en triglicéridos utilizando glicerol derivado de la glucosa en la vía glucolítica [ cita requerida ] . Estos triglicéridos se almacenan, hasta que se necesitan para satisfacer las necesidades de combustible de otros tejidos, en la gota de grasa del adipocito .

El hígado absorbe una parte de la glucosa de la sangre en la vena porta procedente de los intestinos. Una vez que el hígado ha reabastecido sus reservas de glucógeno (que ascienden a sólo unos 100 g de glucógeno cuando están llenas), gran parte del resto de la glucosa se convierte en ácidos grasos como se describe a continuación. Estos ácidos grasos se combinan con glicerol para formar triglicéridos que se empaquetan en gotitas muy similares a los quilomicrones, pero conocidas como lipoproteínas de muy baja densidad (VLDL). Estas gotitas de VLDL se procesan exactamente de la misma manera que los quilomicrones, excepto que el remanente de VLDL se conoce como lipoproteína de densidad intermedia (IDL), que es capaz de eliminar el colesterol de la sangre. Esto convierte la IDL en lipoproteína de baja densidad (LDL), que es absorbida por las células que necesitan colesterol para incorporarlo a sus membranas celulares o para fines sintéticos (por ejemplo, la formación de hormonas esteroides ). El hígado elimina el resto de las LDL. [32]

El tejido adiposo y las glándulas mamarias lactantes también captan glucosa de la sangre para convertirla en triglicéridos. Esto ocurre de la misma manera que en el hígado, excepto que estos tejidos no liberan a la sangre los triglicéridos así producidos como VLDL. Las células del tejido adiposo almacenan los triglicéridos en sus gotitas de grasa, para finalmente liberarlos nuevamente como ácidos grasos libres y glicerol en la sangre (como se describió anteriormente), cuando la concentración plasmática de insulina es baja y la de glucagón y/o epinefrina es alta. . [33] Las glándulas mamarias descargan la grasa (como gotitas de grasa cremosa) en la leche que producen bajo la influencia de la hormona prolactina de la hipófisis anterior .

Todas las células del cuerpo necesitan fabricar y mantener sus membranas y las membranas de sus orgánulos. Se desconoce si dependen exclusivamente de los ácidos grasos libres absorbidos de la sangre o si son capaces de sintetizar sus propios ácidos grasos a partir de la glucosa en sangre. Es casi seguro que las células del sistema nervioso central tendrán la capacidad de fabricar sus propios ácidos grasos, ya que estas moléculas no pueden alcanzarlos a través de la barrera hematoencefálica . [34] Sin embargo, se desconoce cómo llegan a ellos los ácidos grasos esenciales , que los mamíferos no pueden sintetizar por sí mismos pero que, sin embargo, son componentes importantes de las membranas celulares (y otras funciones descritas anteriormente).

Síntesis de ácidos grasos

Síntesis de ácidos grasos saturados mediante ácido graso sintasa II en E. coli

Al igual que la beta-oxidación , la síntesis de ácidos grasos de cadena lineal se produce mediante las seis reacciones recurrentes que se muestran a continuación, hasta que se produce el ácido palmítico de 16 carbonos . [35] [36]

Los diagramas presentados muestran cómo se sintetizan los ácidos grasos en los microorganismos y enumeran las enzimas que se encuentran en Escherichia coli . [35] Estas reacciones son realizadas por la ácido graso sintasa II (FASII), que en general contiene múltiples enzimas que actúan como un complejo. FASII está presente en procariotas , plantas, hongos y parásitos, así como en mitocondrias . [37]

En animales, así como en algunos hongos como la levadura, estas mismas reacciones ocurren en la ácido graso sintasa I (FASI), una proteína dimérica grande que tiene todas las actividades enzimáticas necesarias para crear un ácido graso. FASI es menos eficiente que FASII; sin embargo, permite la formación de más moléculas, incluidos los ácidos grasos de "cadena media" mediante la terminación temprana de la cadena. [37] Las enzimas, aciltransferasas y transacilasas, incorporan ácidos grasos en fosfolípidos, triacilgliceroles, etc. mediante la transferencia de ácidos grasos entre un aceptor de acilo y un donante. También tienen la tarea de sintetizar lípidos bioactivos así como sus moléculas precursoras. [38]

Una vez que se ha formado un ácido graso de carbono 16:0, puede sufrir una serie de modificaciones, lo que resulta en desaturación y/o alargamiento. El alargamiento, comenzando con el estearato (18:0), se realiza principalmente en el retículo endoplásmico mediante varias enzimas unidas a la membrana. Los pasos enzimáticos implicados en el proceso de elongación son principalmente los mismos que los que se llevan a cabo en la síntesis de ácidos grasos , pero los cuatro principales pasos sucesivos del alargamiento los realizan proteínas individuales, que pueden estar asociadas físicamente. [39] [40]

Abreviaturas: ACP – Proteína portadora de acilo , CoA – Coenzima A , NADP – Nicotinamida adenina dinucleótido fosfato .

Tenga en cuenta que durante la síntesis de grasas el agente reductor es NADPH , mientras que NAD es el agente oxidante en la beta-oxidación (la degradación de ácidos grasos a acetil-CoA). Esta diferencia ejemplifica el principio general de que el NADPH se consume durante las reacciones biosintéticas, mientras que el NADH se genera en reacciones que producen energía. [34] (Por lo tanto, el NADPH también es necesario para la síntesis de colesterol a partir de acetil-CoA; mientras que el NADH se genera durante la glucólisis ). La fuente de NADPH es doble. Cuando el malato se descarboxila oxidativamente mediante piruvato , la “ enzima málica ligada a NADP + ”, se forman CO 2 y NADPH. El NADPH también se forma por la vía de las pentosas fosfato que convierte la glucosa en ribosa, que puede usarse en la síntesis de nucleótidos y ácidos nucleicos . o puede catabolizarse a piruvato [34] .

Los productos finales glicolíticos se utilizan en la conversión de carbohidratos en ácidos grasos.

En los seres humanos, los ácidos grasos se forman a partir de carbohidratos principalmente en el hígado y el tejido adiposo , así como en las glándulas mamarias durante la lactancia. El piruvato producido por la glucólisis es un intermediario importante en la conversión de carbohidratos en ácidos grasos y colesterol. [34] Esto ocurre mediante la conversión de piruvato en acetil-CoA en la mitocondria. Sin embargo, este acetil CoA necesita ser transportado al citosol donde se produce la síntesis de ácidos grasos y colesterol. Esto no puede ocurrir directamente. Para obtener acetil-CoA citosólica, el citrato (producido por la condensación de acetil CoA con oxalacetato) se elimina del ciclo del ácido cítrico y se transporta a través de la membrana mitocondrial interna hasta el citosol. [34] Allí es escindido por la ATP citrato liasa en acetil-CoA y oxaloacetato. El oxaloacetato regresa a la mitocondria como malato (y luego se convierte nuevamente en oxaloacetato para transferir más acetil-CoA fuera de la mitocondria). [41] La acetil-CoA citosólica es carboxilada por la acetil-CoA carboxilasa en malonil-CoA , el primer paso comprometido en la síntesis de ácidos grasos. [41] [42]

Regulación de la síntesis de ácidos grasos.

La acetil-CoA se transforma en malonil-CoA mediante la acetil-CoA carboxilasa , momento en el que la malonil-CoA está destinada a alimentar la vía de síntesis de ácidos grasos. La acetil-CoA carboxilasa es el punto de regulación en la síntesis de ácidos grasos saturados de cadena lineal y está sujeta tanto a fosforilación como a regulación alostérica . La regulación por fosforilación ocurre principalmente en mamíferos, mientras que la regulación alostérica ocurre en la mayoría de los organismos. El control alostérico ocurre como inhibición por retroalimentación por palmitoil-CoA y activación por citrato. Cuando hay niveles elevados de palmitoil-CoA, el producto final de la síntesis de ácidos grasos saturados, inactiva alostéricamente la acetil-CoA carboxilasa para prevenir la acumulación de ácidos grasos en las células. El citrato actúa para activar la acetil-CoA carboxilasa en niveles altos, porque los niveles altos indican que hay suficiente acetil-CoA para alimentar el ciclo de Krebs y producir energía. [43]

Los niveles elevados de insulina en el plasma sanguíneo (por ejemplo, después de las comidas) provocan la desfosforilación y activación de la acetil-CoA carboxilasa, promoviendo así la formación de malonil-CoA a partir de acetil-CoA y, en consecuencia, la conversión de carbohidratos en ácidos grasos, mientras que la epinefrina y el glucagón (liberado en la sangre durante la inanición y el ejercicio) provocan la fosforilación de esta enzima, inhibiendo la lipogénesis a favor de la oxidación de los ácidos grasos mediante la beta-oxidación . [34] [42]

Trastornos

Los trastornos del metabolismo de los ácidos grasos se pueden describir en términos de, por ejemplo, hipertrigliceridemia (nivel demasiado alto de triglicéridos ) u otros tipos de hiperlipidemia . Estos pueden ser familiares o adquiridos.

Los tipos familiares de trastornos del metabolismo de los ácidos grasos generalmente se clasifican como errores congénitos del metabolismo de los lípidos . Estos trastornos pueden describirse como trastornos de oxidación de ácidos grasos o trastornos de almacenamiento de lípidos , y son cualquiera de varios errores innatos del metabolismo que resultan de defectos enzimáticos o de proteínas de transporte que afectan la capacidad del cuerpo para oxidar ácidos grasos con el fin de producir energía. dentro de los músculos, el hígado y otros tipos de células . Cuando un trastorno de oxidación de ácidos grasos afecta a los músculos se trata de una miopatía metabólica .

Además, las células cancerosas pueden mostrar un metabolismo irregular de los ácidos grasos con respecto tanto a la síntesis de ácidos grasos [44] como a la oxidación de ácidos grasos mitocondriales (FAO) [45] que están involucrados en diversos aspectos de la tumorigénesis y el crecimiento celular.

Referencias

  1. ^ abcdef Stryer, Lubert (1995). "Metabolismo de los ácidos grasos". En: Bioquímica (Cuarta ed.). Nueva York: WH Freeman and Company. págs. 603–628. ISBN 0-7167-2009-4.
  2. ^ abcd Oxidación de ácidos grasos
  3. ^ Zechner R, Strauss JG, Haemmerle G, Lass A, Zimmermann R (2005). "Lipólisis: vía en construcción". actual. Opinión. Lipidol . 16 (3): 333–40. doi :10.1097/01.mol.0000169354.20395.1c. PMID  15891395. S2CID  35349649.
  4. ^ Movilización y absorción celular de grasas almacenadas (triacilgliceroles) (con animación)
  5. ^ Stahl, Andreas (1 de febrero de 2004). "Una revisión actual de las proteínas transportadoras de ácidos grasos (SLC27)". Archivo Pflügers: Revista europea de fisiología . 447 (5): 722–727. doi :10.1007/s00424-003-1106-z. PMID  12856180. S2CID  2769738.
  6. ^ Anderson, Courtney M.; Stahl, Andreas (abril de 2013). "Proteínas transportadoras de ácidos grasos SLC27". Aspectos moleculares de la medicina . 34 (2–3): 516–528. doi :10.1016/j.mam.2012.07.010. PMC 3602789 . PMID  23506886. 
  7. ^ Ebert, D.; Haller, RG.; Walton, YO. (julio de 2003). "Contribución de energía del octanoato al metabolismo del cerebro de rata intacto medido por espectroscopia de resonancia magnética nuclear 13C". J Neurosci . 23 (13): 5928–35. doi : 10.1523/JNEUROSCI.23-13-05928.2003 . PMC 6741266 . PMID  12843297. 
  8. ^ Marín-Valencia, I.; Bueno, LB.; Mamá, Q.; Malloy, CR.; Pascual, JM. (febrero de 2013). "Heptanoato como combustible neuronal: precursores energéticos y de neurotransmisores en el cerebro normal y con deficiencia del transportador de glucosa I (G1D)". J Metab del flujo sanguíneo cerebral . 33 (2): 175–82. doi :10.1038/jcbfm.2012.151. PMC 3564188 . PMID  23072752. 
  9. ^ Stryer, Lubert (1995). "Metabolismo de los ácidos grasos". En: Bioquímica (Cuarta ed.). Nueva York: WH Freeman and Company. págs. 770–771. ISBN 0-7167-2009-4.
  10. ^ abcdefghi Stryer, Lubert (1995). Bioquímica (Cuarta ed.). Nueva York: WH Freeman and Company. págs. 510–515, 581–613, 775–778. ISBN 0-7167-2009-4.
  11. ^ Activación y transporte de ácidos grasos a las mitocondrias mediante la lanzadera de carnitina (con animación)
  12. ^ Vivo, Darryl C.; Bohan, Timothy P.; Coulter, David L.; Dreifuss, Fritz E.; Greenwood, Robert S.; Nordli, Douglas R.; Escudos, W. Donald; Stafstrom, Carl E.; Teín, Ingrid (1998). "Suplementación de l-carnitina en la epilepsia infantil: perspectivas actuales". Epilepsia . 39 (11): 1216-1225. doi : 10.1111/j.1528-1157.1998.tb01315.x . ISSN  0013-9580. PMID  9821988. S2CID  28692799.
  13. ^ Oxidación de ácidos grasos de cadenas de carbonos impares.
  14. ^ Oxidación de ácidos grasos insaturados.
  15. ^ Wongkittichote P, Ah Mew N, Chapman KA (diciembre de 2017). "Propionil-CoA carboxilasa: una revisión". Genética molecular y metabolismo . 122 (4): 145-152. doi :10.1016/j.ymgme.2017.10.002. PMC 5725275 . PMID  29033250. 
  16. ^ Halarnkar PP, Blomquist GJ (1989). "Aspectos comparativos del metabolismo del propionato". comp. Bioquímica. Fisiol. B . 92 (2): 227–31. doi :10.1016/0305-0491(89)90270-8. PMID  2647392.
  17. ^ Stryer, Lubert (1995). Bioquímica (Cuarta ed.). Nueva York: WH Freeman and Company. pag. 777.ISBN 0-7167-2009-4.
  18. ^ Sloan, AW; Koeslag, JH; Bredell, GAG (1973). "Composición corporal, capacidad de trabajo y eficiencia laboral de jóvenes activos e inactivos". Revista europea de fisiología aplicada . 32 : 17–24. doi :10.1007/bf00422426. S2CID  39812342.
  19. ^ Ruddick JA (1972). "Toxicología, metabolismo y bioquímica del 1,2-propanodiol". Toxicol Appl Pharmacol . 21 (1): 102–111. doi :10.1016/0041-008X(72)90032-4. PMID  4553872.
  20. ^ abc Glew, Robert H. "Puede llegar allí desde aquí: la acetona, las cetonas aniónicas y los ácidos grasos uniformes pueden proporcionar sustratos para la gluconeogénesis". Revista nigeriana de ciencias fisiológicas . 25 (1). Revisión invitada: 2–4. Archivado desde el original el 26 de septiembre de 2013 . Consultado el 7 de agosto de 2016 .
  21. ^ Parque abc, Sung M.; Klapa, María I.; Sinskey, Anthony J.; Stephanopoulos, Gregorio (1999). "Equilibrio de metabolitos e isotopómeros en el análisis de ciclos metabólicos: II. Aplicaciones" (PDF) . Biotecnología y Bioingeniería . 62 (4): 398. doi :10.1002/(sici)1097-0290(19990220)62:4<392::aid-bit2>3.0.co;2-s. ISSN  0006-3592. PMID  9921151.
  22. ^ Miller DN, Bazzano G; Bazzano (1965). "Metabolismo del propanodiol y su relación con el metabolismo del ácido láctico". Ann NY Acad Ciencias . 119 (3): 957–973. Código bibliográfico : 1965NYASA.119..957M. doi :10.1111/j.1749-6632.1965.tb47455.x. PMID  4285478. S2CID  37769342.
  23. ^ DL Vander Jagt; B. Robinson; KK Taylor; LA Hunsaker (1992). "Reducción de triosas por aldo-ceto reductasas dependientes de NADPH. Aldosa reductasa, metilglioxal y complicaciones diabéticas". La Revista de Química Biológica . 267 (7): 4364–4369. doi : 10.1016/S0021-9258(18)42844-X . PMID  1537826.
  24. ^ Stryer, Lubert (1995). "Cascadas de transducción de señales". En: Bioquímica (Cuarta ed.). Nueva York: WH Freeman and Company. págs. 343–350. ISBN 0-7167-2009-4.
  25. ^ ab Stryer, Lubert (1995). "Las hormonas eicosanoides se derivan de los ácidos grasos". En: Bioquímica (Cuarta ed.). Nueva York: WH Freeman and Company. págs. 624–627. ISBN 0-7167-2009-4.
  26. ^ Nelson, Randy F. (2005). Una introducción a la endocrinología conductual (3ª ed.). Sunderland, Mass: Sinauer Associates. pag. 100.ISBN 978-0-87893-617-5.
  27. ^ ab Digestión de grasas (triacilgliceroles)
  28. ^ Hofmann AF (1963). "La función de las sales biliares en la absorción de grasas. Las propiedades disolventes de las soluciones micelares diluidas de sales biliares conjugadas". Bioquímica. J.89 (1): 57–68. doi :10.1042/bj0890057. PMC 1202272 . PMID  14097367. 
  29. ^ Stryer, Lubert (1995). "Estructuras y dinámica de la membrana". En: Bioquímica (Cuarta ed.). Nueva York: WH Freeman and Company. págs. 268-270. ISBN 0-7167-2009-4.
  30. ^ Smith, Sareen S. Gropper, Jack L.; Smith, Jack S (2013). Nutrición avanzada y metabolismo humano (6ª ed.). Belmont, CA: Wadsworth/Cengage Learning. ISBN 978-1133104056.{{cite book}}: Mantenimiento CS1: varios nombres: lista de autores ( enlace )
  31. ^ Williams, Peter L.; Warwick, Roger; Dyson, María; Banister, Lawrence H. (1989). "Angiología.". En: Anatomía de Gray (trigésimo séptima ed.). Edimburgo: Churchill Livingstone. págs. 841–843. ISBN 0443-041776.
  32. ^ Stryer, Lubert (1995). "Biosíntesis de lípidos y esteroides de membrana". En: Bioquímica (Cuarta ed.). Nueva York: WH Freeman and Company. págs. 697–700. ISBN 0-7167-2009-4.
  33. ^ Stralfors, Peter; Honor, Rupert C. (1989). "Desfosforilación de la lipasa sensible a hormonas inducida por insulina". Revista europea de bioquímica . 182 (2): 379–385. doi : 10.1111/j.1432-1033.1989.tb14842.x . PMID  2661229.
  34. ^ abcdef Stryer, Lubert (1995). Bioquímica (Cuarta ed.). Nueva York: WH Freeman and Company. págs. 559–565, 614–623. ISBN 0-7167-2009-4.
  35. ^ ab Dijkstra, Albert J., RJ Hamilton y Wolf Hamm. "Biosíntesis de ácidos grasos". Ácidos grasos trans. Oxford: Blackwell Pub., 2008. 12. Imprimir.
  36. ^ "Vía MetaCyc: supervía de biosíntesis de ácidos grasos". Base de datos de vías metabólicas MetaCyc . BioCiclo. ( E. coli ).
  37. ^ ab Christie, William W. (20 de abril de 2011). "Ácidos grasos: saturados de cadena lineal, estructura, aparición y biosíntesis". En Sociedad Estadounidense de Químicos del Petróleo (ed.). Biblioteca de lípidos de la AOCS. Archivado desde el original el 21 de julio de 2011 . Consultado el 2 de mayo de 2011 .
  38. ^ Yamashita, Atsushi; Hayashi, Yasuhiro; Nemoto-Sasaki, Yoko; Ito, Makoto; Ok, Saori; Tanikawa, Takashi; Waku, Keizo; Sugiura, Takayuki (1 de enero de 2014). "Aciltransferasas y transacilasas que determinan la composición de ácidos grasos de los glicerolípidos y el metabolismo de mediadores lipídicos bioactivos en células de mamíferos y organismos modelo". Avances en la investigación de lípidos . 53 : 18–81. doi :10.1016/j.plipres.2013.10.001. ISSN  0163-7827. PMID  24125941.
  39. ^ "Vía MetaCyc: biosíntesis de estearato I (animales)". Base de datos de vías metabólicas MetaCyc . BioCiclo.
  40. ^ "Vía MetaCyc: biosíntesis de ácidos grasos de cadena muy larga II". Base de datos de vías metabólicas MetaCyc . BioCiclo.
  41. ^ ab Ferré, P.; F. Foufelle (2007). "Factor de transcripción SREBP-1c y homeostasis de los lípidos: perspectiva clínica". Investigación hormonal . 68 (2): 72–82. doi : 10.1159/000100426 . PMID  17344645 . Consultado el 30 de agosto de 2010 . Este proceso se describe gráficamente en la página 73.
  42. ^ ab Voet, Donald; Judith G. Voet; Charlotte W. Pratt (2006). Fundamentos de Bioquímica, 2ª Edición . John Wiley and Sons, Inc. págs. 547, 556. ISBN 978-0-471-21495-3.
  43. ^ Diwan, Joyce J. "Síntesis de ácidos grasos". Instituto Politécnico Rensselaer (RPI) :: Arquitectura, Negocios, Ingeniería, TI, Humanidades, Ciencias. Web. 30 de abril de 2011. < "Síntesis de ácidos grasos". Archivado desde el original el 7 de junio de 2011 . Consultado el 2 de mayo de 2011 .>.
  44. ^ Ezzeddini R, Taghikhani M, Somi MH, Samadi N, Rasaee, MJ (mayo de 2019). "Importancia clínica de FASN en relación con HIF-1α y SREBP-1c en adenocarcinoma gástrico". Ciencias de la vida . 224 : 169-176. doi :10.1016/j.lfs.2019.03.056. PMID  30914315. S2CID  85532042.
  45. ^ Ezzeddini R, Taghikhani M, Salek Farrokhi A, Somi MH, Samadi N, Esfahani A, Rasaee, MJ (mayo de 2021). "Regulación negativa de la oxidación de ácidos grasos por la participación de HIF-1α y PPARγ en el adenocarcinoma gástrico humano y su importancia clínica relacionada". Revista de Fisiología y Bioquímica . 77 (2): 249–260. doi :10.1007/s13105-021-00791-3. ISSN  1138-7548. PMID  33730333. S2CID  232300877.