Aedes taeniorhynchus , o mosquito negro de las marismas , es un mosquito de la familia Culicidae . Es portador devirus encefalíticos, incluida la encefalitis equina venezolana [3] , y puede transmitir Dirofilaria immitis [4] .Reside en América y se sabe que pica a mamíferos, reptiles y aves. Al igual que otros mosquitos, los adultos de Ae. taeniorhynchus sobreviven con una dieta combinada de sangre y azúcar, y las hembras generalmente requieren una alimentación con sangre antes de poner huevos [5] .
Se ha estudiado este mosquito para investigar su desarrollo, sus marcadores fisiológicos y sus patrones de comportamiento, incluidos los ciclos periódicos de picadura , vuelo y enjambre . Esta especie se caracteriza por desarrollarse en ciclos periódicos, con una alta sensibilidad a la luz y patrones de vuelo que dan como resultado frecuencias de aleteo específicas que permiten tanto la detección de especies como la distinción de sexos. [6] [7]
Se sabe que Ae. taeniorhynchus es una plaga para los humanos y se han desarrollado mecanismos para controlar las poblaciones de Ae. taeniorhynchus . Estados Unidos ha gastado millones de dólares para controlar y contener a Ae. taeniorhynchus. [8]
El entomólogo alemán Christian Rudolph Wilhelm Wiedemann describió a Ae. ( Ochlerotatus ) taeniorhynchus en 1821. Otros nombres alternativos para la especie incluyen Culex taeniorhynchus (Wiedemann, 1821), Ochlerotatus taeniorhynchus (Wiedemann, 1821) y Culex damnosus (Say 1823). [9] [10]
Aedes niger , también conocido como Aedes portoricensis , es una subespecie de Ae. taeniorhynchus . [11] Se puede identificar por su última articulación tarsal posterior, que es mayoritariamente negra en lugar de tener bandas blancas. [11] Reside en Florida y puede migrar hasta 95 millas (153 km). [11]
El análisis de datos de microsatélites sobre los genes de Ae. taeniorhynchus que viven en las Islas Galápagos muestra una diferenciación genética entre las poblaciones de mosquitos costeros y de tierras altas. [12] Los datos indican un flujo genético mínimo entre las poblaciones que solo ocurre durante períodos de mayor precipitación. [12] Las diferencias genéticas sugieren que las diferencias de hábitat llevaron a impulsar la adaptación y divergencia en la especie, lo que eventualmente llevó a una especiación futura. [12] Los mosquitos de tierras altas tienen características poblacionales características de un efecto fundador debido a la baja diversidad genética que se manifiesta como baja heterocigosidad y baja riqueza alélica, lo que puede haber resultado de la latencia de los huevos durante períodos de sequía. [12]
Los adultos de Ae. taeniorhynchus son mayormente negros con áreas de bandas blancas. Una sola banda blanca aparece en el centro de la probóscide , múltiples bandas blancas se extienden por los extremos distales de las patas siguiendo las articulaciones de las patas, y las últimas articulaciones de las patas traseras están completamente coloreadas de blanco. [11] Las alas de Ae. taeniorhynchus son largas y estrechas con venas alares escamosas. [13] La investigación experimental de la coloración evolutiva de Ae. taeniorhynchus arrojó resultados negativos. [14] Los mosquitos criados en condiciones de oscuridad, fondos de color negro, blanco o verde y condiciones de iluminación de luz fluorescente o luz solar, no mostraron cambios de color en el cuerpo graso ni en la cápsula de la cabeza, la silla de montar o el sifón. [14] Se sugiere que esta falta de coloración críptica se debe a la falta de amenaza para la especie; debido a que el hábitat de la especie es una fuente de agua temporal utilizada para el crecimiento de las larvas, este entorno temporal tiene pocos depredadores y relativamente poco peligro. [14]
Los machos y las hembras se pueden distinguir según sus antenas: los machos tienen antenas plumosas (similares a plumas), mientras que las antenas de las hembras tienen pocos pelos. [13]
Los enjambres de Ae. taeniorhynchus pueden detectarse a través del sonido. Los ruidos con frecuencias entre 0,3 y 3,4 kHz a un nivel de sonido de 21 dB son detectables a una distancia de 10 a 50 m. Un mosquito individual puede ser escuchado a una distancia de 2 a 5 cm cuando el nivel de sonido aumenta a 22-25 dB. [7] Los mosquitos machos y hembras también pueden distinguirse por sus frecuencias de aleteo, que son de 700 a 800 Hz para los machos y de 400 a 500 Hz para las hembras. [7] Como resultado, los sonidos de vuelo se utilizan para determinar la actividad de vuelo y distinguir el sexo de los grupos. [ cita requerida ]
Los mosquitos Aedes tienen un microbioma característico que modula los efectos de la dieta. [15] Se informa que la composición del microbioma difiere entre machos y hembras en mosquitos Aedes , como Aedes albopictus [16] y Aedes aegypti. [17] Es decir, en Aedes albopictus , los machos se alimentan de néctar para adquirir Actinomycetota mientras que las hembras contienen Pseudomonadota (como Enterobacteriaceae ) que median los niveles de estrés redox causado por la alimentación con sangre. [16]
Las principales distinciones físicas entre Ae. taeniorhynchus y otras especies provienen de las bandas blancas que cubren varias partes del cuerpo a lo largo de Ae. taeniorhynchus . La especie, al igual que otros mosquitos Aedes , exhibe bandas basales en el abdomen, pero Ae. taeniorhynchus también exhibe de manera única palpos con puntas blancas y un anillo blanco central en la probóscide. [13]
Esta especie se parece a Aedes sollicitans , excepto por diferencias sutiles en las etapas larvaria y adulta. En la etapa larvaria, Ae. taeniorhynchus tiene un tubo respiratorio más corto, sus parches de escamas son redondeados en lugar de puntiagudos en las puntas, y las espinas que recubren los bordes de cada parche de escamas son más pequeñas cerca de la base del parche de escamas. [11] En la etapa adulta, Ae. taeniorhynchus es más pequeño y mayormente negro, mientras que Ae. sollicitans es de color marrón dorado. [11]
La especie también tiene similitudes con Aedes jacobinae , que pertenece al subgénero Taeniorhynchus debido a su particular estructura de hipopigio, pero se considera una especie distinta porque no tiene marcas en las patas. [18] De manera similar, esta especie también se puede distinguir de Aedes albopictus , comúnmente conocido como mosquito tigre asiático, ya que Ae. taeniorhynchus , a diferencia de Ae. albopictus , no tiene marcas en la espalda. [19]
Ae. taeniorhynchus se distribuye ampliamente en América del Norte y del Sur , aunque está más concentrada en las regiones del sur. [20] [21] En el momento del descubrimiento inicial de la mosca, la especie residía en regiones costeras y luego se movió gradualmente hacia el interior de las Américas. [18] El análisis del flujo genético derivado de datos de microsatélites indicó que los mosquitos ubicados en las Islas Galápagos en las Islas del Pacífico migran con frecuencia entre islas en forma aislada por distancia. [22] La incidencia de los puertos fue un factor importante que contribuyó a la migración , lo que sugiere que el transporte asistido por humanos contribuyó a la migración entre islas. [22]
Ae. taeniorhynchus reside en hábitats con una fuente de agua temporal, lo que hace que los manglares y las marismas u otras áreas con suelo húmedo sean lugares populares para la puesta de huevos y el crecimiento inmaduro. [23] Estos hábitats son muy variables, pero a menudo tienen una alta salinidad con un contenido de sal soluble observado en el suelo de al menos 1644 ppm. [24]
En el caso de condiciones ambientales de sequedad y bajas temperaturas que son desfavorables para la eclosión de los huevos, los huevos pueden permanecer inactivos durante años. [25] Los factores que controlan la escala de crecimiento de A. taeniorhynchus durante la preemergencia dependen de las condiciones ambientales que coincidan con el nivel de humedad y la temperatura. En el sur de Florida , los factores principales son la altura de la marea y la cantidad de lluvia, [26] mientras que los sitios en California dependen solo de la altura de la marea. [27] En Virginia , estos factores se limitan a los niveles de lluvia y temperatura. [28] Los factores generalmente favorables pueden volverse negativos en valores extremos, lo que hace que la tasa de supervivencia disminuya. El exceso de agua arrastra los huevos de mosquitos [26] y las temperaturas extremadamente altas pueden provocar la evaporación de la fuente de agua. [27]
Esta especie exhibe sensibilidad a la temperatura, con diferencias encontradas para temperaturas constantes, divididas y alternas. [29] A temperaturas constantes de 22, 27 y 32 °C, la expectativa de vida aumentó con la temperatura, pero a temperaturas divididas, los mosquitos también se dividieron entre la vida y la muerte. [29] A diferentes temperaturas, la tasa de envejecimiento fue independiente en los machos, pero mayor para las hembras que vivían a 22 y 27 °C. [29] A temperaturas alternas, la expectativa de vida fue independiente de la temperatura para todos los sexos y temperaturas, excepto por el favorecimiento de la alternancia entre 22 y 27 °C por parte de las hembras. [29]
Los lugares de reproducción de Ae. taeniorhynchus suelen estar en contacto con vegetación como Distichlis spicata (pasto de espiga) y Spartina patens (heno de pradera salada) en marismas saladas y Batis maritima (salicaria) y especies del género Salicornia (salicornia) en manglares. [21] Esta especie de mosquito se encuentra en estrecha proximidad a otros mosquitos que residen en marismas. Estos incluyen Aedes sollicitans (mosquito de marisma salada oriental), Anopheles bradleyi y A. atropos . [21]
Según estudios de campo de observación, Ae. taeniorhynchus presenta varias tendencias de comportamiento en diferentes etapas de la vida. Se descubrió que el crecimiento y la pupación de esta especie se ven afectados por factores ambientales como la nutrición, la densidad de población, la salinidad, la luz y la oscuridad y la temperatura. [30]
Las hembras ponen huevos en tierra seca y la eclosión de los huevos se desencadena por la presencia de agua, como la lluvia o las inundaciones. [31] El rendimiento de la puesta de huevos de las hembras, un indicador de fecundidad , difiere según la dieta: en poblaciones de baja autogenia, las raras hembras autógenas pusieron menos de 30 huevos cada una, mientras que el rendimiento de huevos fue significativamente mayor en poblaciones con mayoría de hembras autógenas. [25] Los huevos puestos en las condiciones adecuadas de temperatura y humedad experimentan embriogénesis y luego permanecen inactivos hasta la eclosión. [30]
Al momento de la eclosión, la especie pasa por cuatro estadios larvarios : los tres primeros estadios se ven afectados principalmente por la temperatura, con efectos menores por la salinidad; el cuarto estadio se ve afectado por todos los factores ambientales. [30] En el cuarto estadio, el aumento de alimento aceleró el tiempo de desarrollo mientras que el hacinamiento y la salinidad atrofiaron el crecimiento. [30]
La temperatura preferida para los 4 estadios está entre 30 °C y 38 °C, pero la temperatura preferida promedio aumenta con la edad. [32] El primer estadio prefiere una temperatura promedio de 31,8 °C y el cuarto estadio temprano prefiere una temperatura de 34,6°. [32] El cuarto estadio tardío, sin embargo, tiene una temperatura preferida más baja que el cuarto estadio temprano, a 33,0°. [32] Se encontró que las larvas hambrientas tienen un rango de temperatura preferida más amplio que se centra en temperaturas más bajas. [32] Se encontró que las colonias de larvas de laboratorio cultivadas durante años a 27,0 °C prefieren temperaturas consistentemente más bajas. [32]
Se observó que las larvas de cuarto estadio bebían agua de mar (100 nL/h) y secretaban líquido hiperosmótico a través del recto. [33] Este líquido es similar al agua de mar pero con niveles de potasio 18 veces más altos. [33] Debido a que el líquido secretado no permite el equilibrio osmótico con el líquido ingerido, los estudios sugieren que las papilas anales ayudan en la secreción de sal. [33]
Todos los factores ambientales afectan la pupación en lo que respecta al ritmo diurno del insecto , que tiene un período de 21,5 horas. [30] Los factores que conducen a un mayor período de pupa incluyen la eliminación de los ciclos de luz y oscuridad con condiciones de oscuridad total o luz total, mayor salinidad y hacinamiento. Estas tendencias continuaron adhiriéndose a una preferencia por temperaturas cercanas a 27 °C o 32 °C. [30] La pupa también exhibe una formación de agregación diferencial debido a estos factores ambientales. Las agregaciones de tipo cúmulo se forman junto con el hacinamiento temporal y el exceso de alimento, mientras que las agregaciones de tipo bola pueden manifestarse a partir del hacinamiento temporal pero la falta de alimento. [34] A temperaturas constantes más bajas de 22 °C y 25 °C, pueden formarse agregaciones de tipo cúmulo, pero temperaturas más altas de 30 °C y 32 °C inhiben la formación de agregaciones. [34] Las agregaciones produjeron pupas con pesos corporales secos ligeramente mayores y promovieron la sincronización del desarrollo en la ecdisis y una mayor probabilidad de migración en la emergencia. [34]
Los mosquitos machos y hembras emergen de sus sitios de puesta de huevos de manera similar. Permanecen en sus fuentes de agua durante 12 a 24 horas. [23] Luego, los adultos migran lejos del lugar de puesta de huevos en el transcurso de 1 a 4 días. [8] Los diferentes sexos muestran una migración diferencial, ya que la mayoría de las hembras viajan al menos 20 millas (32 km) y la mayoría de los machos no viajan más de 2 millas (3,2 km). [8] La migración de las hembras sigue un patrón aleatorio sin limitación en la dirección de la migración y la migración ocurre a lo largo de un ciclo de 5 días. [8] Los machos inicialmente viajan con las hembras hasta que llegan a un punto de parada de 1 a 2 millas (1,6 a 3,2 km), donde reemplazan la migración con enjambre . [8]
Los patrones de vuelo se establecen en la etapa adulta y no se ven afectados por los patrones de comportamiento de etapas anteriores de la vida. [6] Los adultos comienzan a picar el día 4 y siguen un ciclo de 5 días hasta la muerte. Entre los sexos, la intensidad máxima de picadura ocurre en las hembras a las edades de 4, 9 y 14 días. [23] Los mosquitos hembra adultos continúan viviendo y poniendo huevos durante 3 a 4 semanas antes de morir. [23] Los que sobreviven más tiempo continúan picando pero dejan de poner huevos. [23]
Los huevos de Ae. taeniorhynchus pueden madurar tanto de forma autógena como anautógena ; los huevos autógenos se alimentan de azúcar y los anautógenos requieren una alimentación con sangre. [35] Estas fuentes de alimento promueven la maduración mediante la producción de hormonas a partir de los cuerpos allata (CA) y del pericario de las células neurosecretoras mediales (MNCA), de las cuales solo la liberación de la hormona MNCA es responsable de la maduración anautógena. [35] La dependencia de las larvas de una alimentación con sangre puede ser influenciada para hacer que los mosquitos sean menos autógenos, al no permitir que las hembras se alimenten de azúcar e imponer otros cambios en la dieta. [36]
Los mosquitos adultos se alimentan de una dieta combinada de sangre y azúcar, siendo la dieta óptima la que consiste en azúcar para los machos y sangre y azúcar para las hembras. [5] La mayoría de los Ae. taeniorhynchus dependen de mamíferos y aves para alimentarse de sangre, especialmente de bovinos , conejos y armadillos . [37] Los mosquitos en las Islas Galápagos se alimentan de mamíferos y reptiles, con igual preferencia, pero se alimentan poco de aves. [38] Dado que esto difiere de la alimentación típica de Ae. taeniorhynchus en aves, los estudios sugieren que la especie es un alimentador oportunista , en el que se alimenta más de los organismos más disponibles y de fácil acceso. [38] Ae. taeniorhynchus actúa como un ectoparásito de Diomedea irrorata , conocido como albatros de las Galápagos. [39] Los mosquitos pican a los albatros de las Galápagos, lo que provoca o transmite directamente enfermedades que causan la mortalidad de los polluelos, la migración de la colonia o la deserción de los huevos en los albatros. [39]
Estudios experimentales muestran que ambos sexos pueden sobrevivir con una dieta basada únicamente en azúcar durante 2 a 3 meses, pero las hembras necesitan alimentarse de sangre para producir huevos. [40] En las hembras, la suplementación de una comida de sangre en mosquitos autógenos aumentó tanto la producción de huevos como la esperanza de vida. [40] Estudios observacionales adicionales de Ae. taeniorhynchus en la naturaleza mostraron que el hábitat afecta el efecto de la fuente de la comida: las hembras que habitan en pantanos de manglares podían producir huevos incluso sin comidas de sangre, pero las de un entorno de pantano salado con pasto no podían. [41] Sin embargo, las hembras de ambos hábitats aún podían producir huevos cuando se les daban comidas de sangre. [41]
Los estudios que observaron la ingesta de azúcar sin restricciones en mujeres correlacionaron el nivel de ingesta de sacarosa con la acumulación máxima de reservas de energía almacenadas. [42] Por el contrario, el nivel de ingesta de sacarosa no se correlaciona con una disminución de la actividad o cambios en la senescencia . [42]
La alimentación de mosquitos hembra con carbohidratos en un entorno de laboratorio indicó que los carbohidratos glucosa, fructosa, manosa, galactosa, sacarosa, trehalosa, melibiosa, maltosa, rafinosa, melicitosa, dextrina, manitol y sorbitol son los más eficaces para ayudar a la supervivencia; la arabinosa, ramnosa, fucosa, sorbosa, lactosa, celobiosa, inulina, a -metilmanósido, dulcitol e inositol no son utilizados por la especie; la xilosa, el glucógeno, el a -metilglucósido y el glicerol se utilizan, pero a un ritmo metabólico lento; y la sorbosa no puede metabolizarse. [43] La alimentación con glucosa permitió alcanzar la máxima velocidad de vuelo, mientras que otros carbohidratos, como todas las pentosas, sorbosa, lactosa, celobiosa, glucógeno, inulina, a -metilmanósido, dulcitol e inositol fueron insuficientes para permitir el vuelo, lo que se indicó por un retraso en el vuelo después de la alimentación. [29]
Si la emergencia ocurre en un lugar con flores, ambos sexos se alimentan de néctar antes de la migración. [44] El análisis del contenido de fructosa y glucógeno indica que los mosquitos a menudo se alimentan de néctar poco después del anochecer y se alimentan moderadamente de néctar durante el día. [45]
Los machos alcanzan la madurez sexual aproximadamente dos días después de emerger, y las hembras alcanzan la madurez sexual a los 12 días de edad, con planes de aparearse solo una vez. [21]
Estudios observacionales de interacciones de apareamiento tanto en un entorno de laboratorio como en un entorno de campo observaron que la cópula entre mosquitos ocurre después del atardecer. Los resultados indicaron que la cópula depende de la edad de las hembras, y que la inseminación ocurre con hembras de 30 a 40 horas de edad. [46] En ambos entornos estudiados, las hembras son capaces de aparearse sin inducir la inseminación, ya que solo el 1% de las hembras contenían esperma después de 2 notas de apareamiento potencial. [46] El apareamiento no solo brinda una oportunidad para la inseminación, sino que también contribuye a la síntesis de vitelogenina en las hembras, ya que se ha demostrado que las inyecciones experimentales de líquido de la glándula accesoria masculina (MAGF) provocan la liberación del factor estimulante del cuerpo cardíaco (CC) en los ovarios, lo que estimula la investigación de la hormona neurosecretora del desarrollo del óvulo (EDNH). [47]
Otros estudios de laboratorio de la especie observaron una dependencia de la edad tanto en las hembras como en los machos para una cópula e inseminación exitosas. [48] La cópula es iniciada por los machos y solo ocurre cuando el macho primero suelta sus patas, entrelaza los genitales masculinos y femeninos en una posición de extremo a extremo y luego se cuelga de la hembra durante un corto período de tiempo. [48] La inseminación solo puede resultar de la cópula. [48] Si la cópula es exitosa, los mosquitos se aparean en vuelo, luego aterrizan y permanecen juntos durante unos segundos. [48] Para finalizar la cópula, el macho vuela o la hembra vuela mientras lleva al macho hasta que cae. [48]
La mayoría de las hembras jóvenes rechazaron los intentos de cópula (no receptivas), y muchas de las que copularon rechazaron los intentos de inseminación (refractarias), y la aceptación de la cópula y la inseminación (receptivas) aumentaron con la edad de la hembra cuando se las expuso a una cohorte de machos mayores. [48] Las hembras no receptivas evitaron a los machos volando con aumentos repentinos de velocidad o giros bruscos. [48]
Durante el apareamiento, los machos pueden transferir sustancias producidas por sus glándulas accesorias que afectan la fisiología y el comportamiento de las hembras. [49] Estas sustancias de las glándulas accesorias pueden limitar o mejorar las actividades reproductivas de las hembras. [49] Las limitaciones incluyen la prevención temporal del apareamiento futuro de las hembras, la estimulación de la oviposición y la reducción de la búsqueda de huéspedes, mientras que las mejoras implican cambios en el ritmo circadiano de las hembras y las prioridades metabólicas que provocan una mayor probabilidad de reproducción. [49]
Se sabe que las hembras practican la oviposición , con preferencia por suelos con alta humedad, con saturación de agua mayor al 70%. [50] El tamaño de la puesta de las hembras es de 100 a 200 huevos, con al menos una puesta por hembra. [21]
En estudios experimentales con mosquitos hembra ovariectomizados, las hembras no pudieron sintetizar vitelogenina, un precursor de la proteína de la yema, a menos que se les diera un ovario de donante de un mosquito alimentado con azúcar o sangre. [51] La síntesis de vitelogenina todavía ocurrió cuando el ovario del donante provenía de Ae. aegypti , y la derivación del ovario de un mosquito alimentado con sangre causó la producción del factor estimulante del cuerpo cardíaco, lo que indica que los procesos hormonales para la oviposición no son específicos de la especie. [51]
En un estudio de huevos puestos en cuencas forestales de Rhizophora mangle L. (mangle rojo) y Avicennia germinans L. (mangle negro), la presencia de huevos se correlacionó con la elevación y el nivel de detritos . [52] La oviposición se dirigió desde cuencas de manglares negros a cuencas de manglares rojos, posiblemente debido a la reducción de detritos y contenido orgánico en el suelo causado por el pastoreo de manglares negros por Melampus coffeus L. , un caracol. [52] Debido a que las cáscaras de huevo y los huevos comparten el mismo hábitat, se sugiere que la oviposición puede delinearse utilizando cáscaras de huevo. [52] El análisis de muestreo de cáscaras de huevo de 34 sitios de bosques de manglares indicó que todos los bosques de cuencas de manglares pueden producir exitosamente Ae. taeniorhynchus , independientemente de la geomorfología del bosque, el suelo y la vegetación, pero los sitios recientemente inundados son los más óptimos. [53]
Además, se consideró que los sulfatos y otras sales favorecían la oviposición de las hembras en un entorno de laboratorio, pero las concentraciones de sulfato en el campo pueden ser demasiado bajas para que este efecto sea significativo. [54] También se determinó que la textura del sustrato era un factor que contribuía a la oviposición, y los estudios de puesta de huevos sobre partículas de arena indicaron una preferencia por partículas de arena de entre 0,33 y 0,62 mm. [55]
Los mosquitos hembras adultos listos para poner huevos difieren de otras hembras adultas en muchos comportamientos importantes. Realizan un vuelo especial a las edades de 7, 12 y 17 años, siguiendo un ciclo de 5 días. [23] Los cambios en la dieta tienen efectos en el vuelo de machos y hembras: los machos alimentados solo con azúcar exhibieron cambios en los patrones de vuelo que se asemejaron a un enjambre cíclico, las hembras alimentadas solo con azúcar exhibieron patrones de vuelo consistentes que consistían en un ciclo de 4 semanas de vuelo de 40 minutos durante la oscuridad y 20 minutos durante la luz, las hembras alimentadas con azúcar y sangre experimentaron una reducción del vuelo después de 2 semanas, y las hembras alimentadas solo con sangre no volaron más de 10 días. [40] Las hembras hambrientas que luego se alimentaron con sangre permanecieron sedentarias durante 8 horas antes de volver al vuelo. [40] Los vuelos se realizan con el propósito de adquirir néctar, y la distancia de vuelo depende de la velocidad del viento, la dirección, el paisaje y la disponibilidad de néctar. [21] Las hembras suelen volar entre 2 y 5 millas en busca de néctar, pero se han registrado vuelos de hasta 30 millas como resultado de otros factores de vuelo. [21] Los adultos que buscan alimentarse de sangre también pueden volar hasta 25 millas. [19]
Los patrones de vuelo de estos mosquitos están estrechamente relacionados con la sensibilidad a la luz, ya que los patrones de vuelo aumentan con la fuerza de la luz de la luna: las hembras aumentan la actividad de vuelo del 95% en cuarto creciente al 546% en luna llena. [56] Los mosquitos adultos machos y hembras son repelidos por la luz, [31] lo que permite atraparlos con trampas de luz. [8] [57] Sin embargo, las hembras listas para poner huevos no exhiben este comportamiento. [23] En un entorno experimental, se encontró que los mosquitos criados en condiciones de 12 horas de luz: 12 horas de oscuridad exhibían actividad de vuelo tanto en períodos de luz apagada como de luz encendida en un patrón de alternancia bimodal. Los mosquitos se adaptaron a nuevas condiciones de luz en 24 a 36 horas, en las que una luz apagada retrasada restablece el patrón pero una luz apagada temprana no. [6]
Los machos adultos comienzan a formar enjambres superiores a los 4 días de edad y duran hasta las 2-3 semanas de edad. [23] Estos enjambres se forman cada tarde y mañana en un lugar y hora fijos [23] y duran un máximo de 30 minutos. [21] En observaciones de campo de Ae. taeniorhynchus en Florida, los enjambres matutinos y vespertinos normalmente estaban a medio terminar en el punto temporal de 4 minutos antes y después del crepúsculo , respectivamente. [23] Se desconoce el estímulo inicial para el comportamiento de enjambre, pero el tiempo que pasan enjambre depende de la sensibilidad de los machos individuales a la fuerza impulsora del enjambre y al tamaño del enjambre, con enjambres pequeños que duran 12 minutos y enjambres grandes que duran 27 minutos. [23] Estos enjambres se caracterizan como enjambres de paso transitorio, donde los machos participan en el enjambre durante 1,5 minutos a la vez en lugar de todo el tiempo. [23] A pesar de que los machos forman enjambres superiores, no se ha observado que el apareamiento coincida con la formación de enjambres . [23]
Los parásitos de esta especie incluyen Amblyospora polykarya , una especie de Microspora que dura una sola generación en Ae. taeniorhynchus , [58] y Goelomomyces psorophorae , un hongo que afecta los ovarios de los mosquitos, detiene la maduración de los huevos y mata todas las larvas. [59]
El análisis de la ingesta de sangre y la detección de parásitos mediante PCR en mosquitos en las Islas Galápagos sugirieron relaciones entre la especie y los parásitos Hepatozoon que infectan a los reptiles en el área. [38] La presencia de una población mixta de Hepatozoon en el huésped reptil sugiere que Ae. taeniorhynchus causó una ruptura de la relación huésped-especie entre algunos parásitos Heptazoon y reptiles nativos. [38] En un análisis topológico del parasitismo en la red alimentaria, se encontró que Ae. taeniorhynchus , junto con Culex tarsalis , eran los organismos más importantes dentro de una subred depredador-parásito, lo que significa que tienen la mayor cantidad de conexiones en la red alimentaria entre los organismos mapeados. [ cita requerida ]
Ae. taeniorhynchus es portador del virus del Nilo Occidental , el virus iridiscente del mosquito, [60] el tipo oriental y occidental de la encefalomielitis equina , [61] el virus de la encefalomielitis equina venezolana, [3] y el virus de la fiebre amarilla . [62] Estudios experimentales también establecieron que la especie es capaz de transmitir mecánicamente el Bacillus anthracis . [63] Estudios experimentales sobre el virus de la fiebre del Valle del Rift mostraron que la infectividad es independiente de la temperatura, pero la diseminación y transmisión viral es más rápida a temperaturas más altas. [64]
Esta especie puede transmitir Dirofilaria immitis , un gusano filarial que puede causar dirofilariosis en perros . [4] La infección por D. immitis ocurre a través del establecimiento del parásito en los túbulos de Malpighi de Ae. taeniorhynchus en un proceso que cambia el borde de las microvellosidades para impedir el transporte de fluidos. [65] El parásito tarda hasta 48 horas en establecerse en su huésped; el establecimiento puede no ocurrir si el huésped es resistente. [65] También se observó que este parásito se propagaba a cormoranes no voladores en las Galápagos, y el análisis del flujo genético correlacionó la infección parasitaria con los patrones de migración de Ae. taeniorhynchus y sugirió que Ae. taeniorhynchus es el vector probable de transmisión. [22]
Esta especie de mosquito se considera una plaga entre los humanos, y los distritos de Florida intentan controlar los mosquitos desde 1927 y han gastado 1,5 millones de dólares en el control de insectos en 1951. [8] El acetoarsenito de cobre, conocido como verde de París , se utiliza como insecticida para las larvas de Ae. taeniorhynchus en el sitio de cría de la especie, ya que la sustancia actúa como un veneno estomacal tóxico. [66] El DDT , otro insecticida, también se consideró eficaz contra los mosquitos de las marismas y se ha utilizado para el tratamiento de Ae. taeniorhynchus en el pasado. [67] Las combinaciones de trampas y cebos probadas contra la especie indican que las trampas de tipo CDC con dióxido de carbono , octenol y calor como cebo aumentan el éxito de captura de Ae. taeniorhynchus . [68]
Los humanos también han tratado de limitar las picaduras de Ae. taeniorhynchus porque vuela muy rápido y comienzan a extraer sangre rápidamente, en comparación con el mosquito promedio, al usar ropa protectora tratada químicamente. La ropa tratada con permetrina [(3-fenoxifenil)metil (±) cis/trans 3-(2-dicloroetenil)2, 2-dimetilciclopropanocarboxilato] junto con la aplicación de deet ( N,N -dietil- m -toluamida) en la piel demostró ser extremadamente eficaz para reducir las picaduras de mosquitos en comparación con el uso de una sola forma de protección o ninguna protección. [69] El dispositivo repelente de mosquitos Off! Clip-on, que libera el insecticida piretroide metoflutrina en forma de vapor, también se evaluó contra Ae. taeniorhynchus en dos ubicaciones de campo de Florida y se encontró que proporcionaba un 79% de protección contra las picaduras de mosquitos durante 3 horas. [70]
Se han identificado otras toxinas contra Ae. taeniorhynchus . Bacillus thuringiensis var. kurstaki (HD-1) puede producir un cristal paraesporal en forma de un cuerpo de inclusión tóxico. [71] Las proteínas aisladas de un cristal paraesporal produjeron dos proteínas distintas de los tipos k-1 y k-73 , de las cuales solo la k-1 , una proteína de 65 kD, resultó tóxica para las larvas de Ae. taeniorhynchus . [71]