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Fructosa-bifosfato aldolasa

La fructosa-bisfosfato aldolasa ( EC 4.1.2.13), a menudo simplemente aldolasa , es una enzima que cataliza una reacción reversible que divide el aldol , fructosa 1,6-bifosfato , en triosas fosfatos, dihidroxiacetona fosfato (DHAP) y gliceraldehído 3-fosfato (G3P). ). La aldolasa también puede producir DHAP a partir de otros (3S,4R) -cetosa 1-fosfatos como la fructosa 1-fosfato y la sedoheptulosa 1,7-bisfosfato . La gluconeogénesis y el ciclo de Calvin , que son vías anabólicas , utilizan la reacción inversa. La glucólisis , una vía catabólica , utiliza la reacción directa. La aldolasa se divide en dos clases según su mecanismo.

La palabra aldolasa también se refiere, de manera más general, a una enzima que realiza una reacción aldólica (creando un aldol ) o su inversa (escindiendo un aldol), como la aldolasa de ácido siálico , que forma ácido siálico . Ver la lista de aldolasas .

Mecanismo y estructura

Las proteínas de clase I forman una base de Schiff protonada intermedia que une un sitio activo altamente conservado lisina con el carbono carbonilo DHAP . Además, los residuos de tirosina son cruciales para este mecanismo al actuar como aceptores estabilizadores de hidrógeno. Las proteínas de clase II utilizan un mecanismo diferente que polariza el grupo carbonilo con un catión divalente como Zn 2+ . La proteína del operón galactitol de Escherichia coli , gatY, y la proteína del operón N-acetil galactosamina , agaY, que son tagatosa-bisfosfato aldolasa , son homólogos de la fructosa-bisfosfato aldolasa de clase II. Se ha demostrado que dos residuos de histidina en la primera mitad de la secuencia de estos homólogos están involucrados en la unión del zinc. [1]

Cada una de las subunidades de proteínas de ambas clases tiene un dominio α/β plegado en un barril TIM que contiene el sitio activo. Varias subunidades se ensamblan en la proteína completa . Las dos clases comparten poca identidad de secuencia .

Con pocas excepciones, sólo se han encontrado proteínas de clase I en animales , plantas y algas verdes . [2] Con pocas excepciones, solo se han encontrado proteínas de clase II en los hongos . Ambas clases se han encontrado ampliamente en otros eucariotas y en bacterias . [3] Las dos clases suelen estar presentes juntas en el mismo organismo. Las plantas y las algas tienen aldolasa plastidal , a veces una reliquia de la endosimbiosis , además de la aldolasa citosólica habitual. Una fructosa-bifosfato aldolasa/fosfatasa bifuncional, con mecanismo de clase I, se ha encontrado ampliamente en arqueas y en algunas bacterias. [4] El sitio activo de esta aldolasa arqueal también se encuentra en un barril TIM.

En gluconeogénesis y glucólisis.

La gluconeogénesis y la glucólisis comparten una serie de seis reacciones reversibles. En la gluconeogénesis, el gliceraldehído-3-fosfato se reduce a fructosa 1,6-bifosfato con aldolasa. En la glucólisis, la fructosa 1,6-bifosfato se convierte en gliceraldehído-3-fosfato y dihidroxiacetona fosfato mediante el uso de aldolasa. La aldolasa utilizada en la gluconeogénesis y la glucólisis es una proteína citoplasmática.

En los vertebrados se encuentran tres formas de proteína de clase I. La aldolasa A se expresa preferentemente en el músculo y el cerebro; aldolasa B en hígado, riñón y enterocitos ; y aldolasa C en el cerebro. Las aldolasas A y C participan principalmente en la glucólisis , mientras que la aldolasa B participa tanto en la glucólisis como en la gluconeogénesis. [5] Algunos defectos en la aldolasa B causan intolerancia hereditaria a la fructosa . El metabolismo de la fructosa libre en el hígado aprovecha la capacidad de la aldolasa B para utilizar la fructosa 1-fosfato como sustrato . [6] La fructosa-bifosfato aldolasa/fosfatasa de Archaeal presumiblemente está involucrada en la gluconeogénesis porque su producto es la fructosa 6-fosfato. [7]

En el ciclo de Calvino

El ciclo de Calvin es una vía de fijación de carbono ; es parte de la fotosíntesis, que convierte el dióxido de carbono y otros compuestos en glucosa. Éste y la gluconeogénesis comparten una serie de cuatro reacciones reversibles. En ambas vías, el 3-fosfoglicerato (3-PGA o 3-PG) se reduce a fructosa 1,6-bifosfato y la aldolasa cataliza la última reacción. Una quinta reacción, catalizada en ambas vías por la fructosa 1,6-bisfosfatasa , hidroliza la fructosa 1-6-bisfosfato a fructosa 6-fosfato y fosfato inorgánico. La gran disminución de la energía libre hace que esta reacción sea irreversible. En el ciclo de Calvin, la aldolasa también cataliza la producción de sedoheptulosa 1,7-bisfosfato a partir de DHAP y eritrosa 4-fosfato . Los principales productos del ciclo de Calvin son la triosa fosfato (TP), que es una mezcla de DHAP y G3P, y la fructosa 6-fosfato. Ambos también son necesarios para regenerar RuBP . La aldolasa utilizada por las plantas y las algas en el ciclo de Calvin suele ser una proteína dirigida a los plastidios codificada por un gen nuclear.

Reacciones

La aldolasa cataliza

fructosa 1,6-bifosfato ⇌ DHAP + G3P

y también

sedoheptulosa 1,7-bifosfato ⇌ DHAP + eritrosa 4-fosfato
fructosa 1-fosfato ⇌ DHAP + gliceraldehído

La aldolasa se utiliza en el tronco reversible de la gluconeogénesis/glucólisis.

2( PEP + NADH + H + + ATP + H 2 O) ⇌ fructosa 1,6-bisfosfato + 2(NAD + + ADP + P i )

La aldolasa también se utiliza en la parte del ciclo de Calvin compartida con la gluconeogénesis, con la hidrólisis irreversible del fosfato al final catalizada por la fructosa 1,6-bisfosfatasa.

2( 3-PG + NADPH + H + + ATP + H 2 O) ⇌ fructosa 1,6-bifosfato + 2(NADP + + ADP + P i )
fructosa 1,6-bifosfato + H 2 O → fructosa 6-fosfato + P i

En la gluconeogénesis, el 3-PG es producido por la enolasa y la fosfoglicerato mutasa que actúan en serie.

PEP + H2O 2-PG ⇌ 3-PG

En el ciclo de Calvin, 3-PG es producido por RuBisCO.

RuBP + CO 2 + H 2 O → 2(3-PG)

G3P es producido por la fosfoglicerato quinasa que actúa en serie con la gliceraldehído-3-fosfato deshidrogenasa (GAPDH) en la gluconeogénesis y en serie con la gliceraldehído-3-fosfato deshidrogenasa (NADP+) (fosforilándose) en el ciclo de Calvin.

3-PG + ATP ⇌ 1,3-bisfosfoglicerato + ADP
1,3-bisfosfoglicerato + NAD(P)H + H + ⇌ G3P + P i + NAD(P) +

La triosa-fosfato isomerasa mantiene DHAP y G3P casi en equilibrio, produciendo la mezcla llamada triosa fosfato (TP).

G3P ⇌ DHAP

Por tanto, tanto DHAP como G3P ​​están disponibles para la aldolasa.

Propiedades de pluriempleo

La aldolasa también ha sido implicada en muchas funciones "pluriempleadas" o no catalíticas, basándose en su afinidad de unión por muchas otras proteínas, incluidas la actina F , la α-tubulina , la dineína de cadena ligera , WASP , el intercambiador de aniones de banda 3 y la fosfolipasa D ( PLD2 ). , transportador de glucosa GLUT4 , trifosfato de inositol , V-ATPasa y ARNO (un factor de intercambio de nucleótidos de guanina de ARF6 ). Se cree que estas asociaciones están predominantemente involucradas en la estructura celular; sin embargo, se ha explorado la participación en la endocitosis, la invasión de parásitos, el reordenamiento del citoesqueleto, la motilidad celular, el tráfico y reciclaje de proteínas de membrana, la transducción de señales y la compartimentación de tejidos. [8] [9] [10]

Referencias

  1. ^ Zgiby SM, Thomson GJ, Qamar S, Berry A (2000). "Explorando la unión y discriminación de sustratos en fructosa1, 6-bifosfato y tagatosa 1,6-bifosfato aldolasas". EUR. J. Bioquímica . 267 (6): 1858–68. doi : 10.1046/j.1432-1327.2000.01191.x . PMID  10712619.
  2. ^ Patrón Nueva Jersey, Rogers MB, Keeling PJ (2004). "El reemplazo genético de la fructosa-1,6-bisfosfato aldolasa apoya la hipótesis de un único ancestro fotosintético de los cromalveolatos". Célula eucariota . 3 (5): 1169–75. doi :10.1128/EC.3.5.1169-1175.2004. PMC 522617 . PMID  15470245. 
  3. ^ Trung Hieu Pham, Shreesha Rao, Ta-Chih Cheng, Pei-Chi Wang, Shih-Chu Chen, La proteína pluriempleada fructosa 1,6-bisfosfato aldolasa como posible vacuna candidata contra Photobacterium damselae subsp. piscicida en lubina asiática (Lates calcarifer), Inmunología comparada y del desarrollo, Volumen 124,2021,104187, ISSN 0145-305X, https://doi.org/10.1016/j.dci.2021.104187.
  4. ^ Siebers B, Brinkmann H, Dörr C, Tjaden B, Lilie H, van der Oost J, Verhees CH (2001). "Las aldolasas de fructosa-1,6-bifosfato de arqueas constituyen una nueva familia de aldolasas de clase I de tipo arqueal". J. Biol. química . 276 (31): 28710–8. doi : 10.1074/jbc.M103447200 . PMID  11387336.
  5. ^ Walther UE, Dichgans M, Maricich SM, Romito RR, Yang F, Dziennis S, Zackson S, Hawkes R, Herrup K (1998). "Las secuencias genómicas de la aldolasa C (Zebrin II) dirigen la expresión de lacZ exclusivamente en células no neuronales de ratones transgénicos". Proc. Nacional. Acad. Ciencia. EE.UU . 95 (5): 2615–20. Código bibliográfico : 1998PNAS...95.2615W. doi : 10.1073/pnas.95.5.2615 . PMC 19434 . PMID  9482935. 
  6. ^ Gopher A, Vaisman N, Mandel H, Lapidot A (1990). "Determinación de las vías metabólicas de la fructosa en niños normales e intolerantes a la fructosa: un estudio de RMN de C-13 utilizando fructosa C-13". Proc. Nacional. Acad. Ciencia. EE.UU . 87 (14): 5449–53. doi : 10.1073/pnas.87.14.5449 . PMC 54342 . PMID  2371280. 
  7. ^ Estelmann S, Hügler M, Eisenreich W, Werner K, Berg IA, Ramos-Vera WH, Say RF, Kockelkorn D, Gad'on N, Fuchs G (2011). "Estudios de etiquetado y enzimas del metabolismo central del carbono en Metallosphaera sedula". J. Bacteriol . 193 (5): 1191–200. doi :10.1128/JB.01155-10. PMC 3067578 . PMID  21169486. 
  8. ^ Rangarajan ES, Park H, Fortin E, Sygusch J, Izard T (2010). "Mecanismo de control de la alolasa de la función de clasificación de Nexin 9 en la endocitosis". J. Biol. química . 285 (16): 11983–90. doi : 10.1074/jbc.M109.092049 . PMC 2852936 . PMID  20129922. 
  9. ^ Ahn AH, Dziennis S, Hawkes R, Herrup K (1994). "La clonación de zebrin II revela su identidad con la aldolasa C". Desarrollo . 120 (8): 2081–90. doi :10.1242/dev.120.8.2081. PMID  7925012.
  10. ^ Merkulova M, Hurtado-Lorenzo A, Hosokawa H, Zhuang Z, Brown D, Ausiello DA, Marshansky V (2011). "La aldolasa interactúa directamente con ARNO y modula la morfología celular y la distribución de las vesículas ácidas". Soy J Physiol Cell Physiol . 300 (6): C1442-55. doi :10.1152/ajpcell.00076.2010. PMC 3118619 . PMID  21307348. 

Otras lecturas

enlaces externos