stringtranslate.com

malato sintasa

En enzimología , una malato sintasa ( EC 2.3.3.9) es una enzima que cataliza la reacción química.

acetil-CoA + H 2 O + glioxilato ( S )-malato + CoA

Los tres sustratos de esta enzima son acetil-CoA , H2O y glioxilato , mientras que sus dos productos son ( S ) -malato y CoA . Esta enzima participa en el metabolismo del piruvato y del glioxilato y dicarboxilato .

Nomenclatura

Esta enzima pertenece a la familia de las transferasas , concretamente a las aciltransferasas que convierten los grupos acilo en grupos alquilo durante la transferencia. El nombre sistemático de esta clase de enzimas es acetil-CoA:glioxilato C-acetiltransferasa (hidrolizante de tioéster, formadora de carboximetilo). Otros nombres de uso común incluyen L-malato glioxilato-liasa (CoA-acetilante), glioxilato transacetilasa, glioxilato transacetasa, transacetasa glioxílica, enzima condensadora de malato, malato sintetasa, sintetasa málica y enzima condensante málica.

Estructura

Estructura cristalográfica de la enzima malato sintasa (izquierda) y vista ampliada del sitio activo (derecha) formando complejo con su producto, malato y un catión de magnesio coordinador. [1]

Las malato sintasas se dividen en dos familias principales, las isoformas A y G. La isoforma G es monomérica con un tamaño de aproximadamente 80 kD y se encuentra exclusivamente en bacterias . [2] La isoforma A tiene aproximadamente 65 kD por subunidad y puede formar homomultímeros en eucariotas . [3] Esta enzima contiene un cilindro TIM central intercalado entre un cierre de hélice alfa N-terminal y un dominio alfa/beta que surge de dos inserciones en la secuencia del cilindro TIM . La enzima termina con un tapón de cinco hélices C-terminal . El sitio activo, donde el acetil-CoA y el glioxilato se unen a la enzima, se encuentra entre el cilindro TIM y el tapón C-terminal . [4] Al unirse, la molécula de acetil-CoA forma una J insertada en el bolsillo de unión, mediante un enlace de hidrógeno intramolecular entre el N7 del anillo de adenina y un grupo hidroxilo en la cola de panteteína . [4] Además, un ion de magnesio crítico dentro del sitio activo se coordina con el glioxilato , el ácido glutámico 427, el ácido aspártico 455 y dos moléculas de agua. [4] Los aminoácidos que interactúan con el acetil CoA al unirse están altamente conservados. [2] La identidad de secuencia es alta dentro de cada clase de isoformas, pero entre ambas clases la identidad de secuencia cae a aproximadamente el 15%. [5] El dominio alfa/beta, que no tiene ninguna función aparente, no se ve en la isoforma A. [6]

Longitud total
Sitio activo de la malato sintasa unido a piruvato y acetil-CoA (ACO), que se muestra en su configuración en J doblada. El catión octaédrico coordinador Mg 2+ se muestra en verde, las moléculas de agua como puntos rojos y los contactos polares como líneas amarillas discontinuas.

Mecanismo

El mecanismo de la malato sintasa es una reacción aldólica seguida de hidrólisis del tioéster . Inicialmente, el aspartato 631 actúa como una base catalítica, extrayendo un protón del carbono alfa del acetil-CoA y creando un enolato que se estabiliza con la arginina 338. [6] Este se considera el paso determinante de la velocidad del mecanismo. [7] Luego, el enolato recién formado actúa como un nucleófilo que ataca al aldehído del glioxilato , impartiendo una carga negativa al oxígeno que es estabilizado por la arginina 338 y el catión de magnesio coordinador. Este intermediario malil-CoA luego sufre hidrólisis en la porción acil-CoA , generando un anión carboxilato . [2] La enzima finalmente libera malato y coenzima A.

Función

El papel de la malato sintasa en el ciclo del glioxilato.

El ciclo del ácido cítrico (también conocido como ciclo del ácido tricarboxílico o ciclo de Krebs) es utilizado por los organismos aeróbicos para producir energía mediante la oxidación de acetil-CoA , que se deriva del piruvato (un producto de la glucólisis ). El ciclo del ácido cítrico acepta acetil-CoA y lo metaboliza para formar dióxido de carbono . Un ciclo relacionado, llamado ciclo del glioxilato , se encuentra en muchas bacterias y plantas. En las plantas, el ciclo del glioxilato tiene lugar en los glioxisomas . [8] En este ciclo, la isocitrato liasa y la malato sintasa omiten los pasos de descarboxilación del ciclo del ácido cítrico. En otras palabras, la malato sintasa trabaja junto con la isocitrato liasa en el ciclo del glioxilato para evitar dos pasos oxidativos del ciclo de Krebs y permitir la incorporación de carbono a partir de acetato o ácidos grasos en muchos microorganismos. [9] Juntas, estas dos enzimas sirven para producir succinato (que sale del ciclo para usarse para la síntesis de azúcares) y malato (que permanece en el ciclo del glioxilato). Durante este proceso se utilizan acetil-CoA y agua como sustratos. Como resultado, la célula no pierde 2 moléculas de dióxido de carbono como ocurre en el ciclo de Krebs . El ciclo del glioxilato, facilitado por la malato sintasa y la isocitrato liasa, permite que las plantas y bacterias subsistan con acetil-CoA u otros dos compuestos de carbono. Por ejemplo, Euglena gracilis , un alga eucariota unicelular , consume etanol para formar acetil-CoA y posteriormente, carbohidratos . [10] Dentro de las plantas en germinación , el ciclo del glioxilato permite la conversión de lípidos de reserva en carbohidratos dentro de los glioxisomas . [11]

Historia evolutiva

La malato sintasa se encuentra como un octámero de subunidades idénticas (cada una de aproximadamente 60 kDa) en algunas plantas, incluido el maíz. Se encuentra como homotetrámero en el hongo Candida y como homodímero en eubacterias . La malato sintasa se fusiona con el extremo C de la isocitrato liasa en C. elegans , lo que da como resultado una única proteína bifuncional. Si bien actualmente no hay suficiente información de secuencia para determinar la historia evolutiva exacta de la malato sintasa, las secuencias de plantas, hongos y C. elegans son distintas y no muestran homólogos de arqueobacterias . [12]

Actividad en humanos

Tradicionalmente, las malato sintasas se describen en bacterias como parte del ciclo del glioxilato, y la actividad de la malato sintasa no se había informado para una proteína humana antes de un estudio realizado por Strittmatter, et al. En este estudio, se descubrió que CLYBL es una enzima mitocondrial humana con actividad malato sintasa. Se encuentra en múltiples taxones eucariotas y se conserva en bacterias. CLYBL se diferencia de otras malato sintasas en que carece de una gran parte del dominio C-terminal y muestra una actividad y eficiencia específicas más bajas. [13] CLYBL está vinculado a la vía del metabolismo de la vitamina B12 porque se coexpresa fuertemente con MUT, MMAA y MMAB, tres miembros de la vía mitocondrial de B12. [13] Además, un polimorfismo de pérdida de función , que conduce a una pérdida de la proteína CLYBL, se asocia simultáneamente con niveles bajos de B12 en el plasma humano. [13] Si bien no se comprende bien el mecanismo exacto de la participación de CLYBL en el metabolismo de B12, se cree que convierte citramalyl-CoA en piruvato y acetil-CoA. Sin esta conversión, la itaconil-CoA, un precursor del citramalil-CoA, se acumula en la célula y provoca la inactivación de la vitamina B12. Esta inactivación inhibe el ciclo de la metionina, lo que conduce a una reducción del metabolismo de la serina , la glicina , los monocarbonos y el folato . [14] [15]

Significación clínica

Debido a que el ciclo del glioxilato ocurre en bacterias y hongos, estudiar los mecanismos de la malato sintasa (así como de la isocitrato liasa) es importante para comprender la patogénesis humana, animal y vegetal . El estudio de la malato sintasa puede arrojar luz sobre las vías metabólicas que permiten a los patógenos sobrevivir dentro de un huésped, así como dilucidar posibles tratamientos. [16] Se han realizado muchos estudios sobre la actividad de la malato sintasa en patógenos, incluidos Mycobacterium tuberculosis , Pseudomonas aeruginosa , Brucella melitensis y Escherichia coli .

Tuberculosis micobacteriana

La malato sintasa y la vía del glioxilato son especialmente importantes para M. tuberculosis , ya que permiten la persistencia a largo plazo de su infección. [2] Cuando las células de M. tuberculosis se fagocitan , la bacteria regula positivamente los genes que codifican las enzimas de derivación de glioxilato . [17] Mycobacterium tuberculosis es uno de los patógenos mejor estudiados en relación con la enzima malato sintasa. La estructura y cinética de la malato sintasa de Mycobacterium tuberculosis se han categorizado bien. [18] [2] La malato sintasa es esencial para la supervivencia de Mycobacterium tuberculosis porque permite a la bacteria asimilar acetil-CoA en carbohidratos de cadena larga y sobrevivir en ambientes hostiles. Más allá de esto, la malato sintasa previene la toxicidad por la acumulación de glioxilato producido por la isocitrato liasa . [19] La regulación negativa de la malato sintasa da como resultado una reducción de la tolerancia al estrés, la persistencia y el crecimiento de Mycobacterium tuberculosis dentro de los macrófagos. [20] La enzima puede ser inhibida por moléculas pequeñas (aunque la inhibición depende del microambiente), lo que sugiere que pueden usarse como nuevas quimioterapias. [21]

Pseudomonas aeruginosa

Pseudomonas aeruginosa causa infecciones graves en humanos y la Organización Mundial de la Salud la considera una amenaza críticadebido a su resistencia a múltiples terapias. La derivación de glioxilato es esencial para el crecimiento de Pseudomonas aeruginosa en un organismo huésped. En 2017, McVey, et al. examinaron la estructura tridimensional de la malato sintasa G de P. aeruginosa . Descubrieron que es un monómero compuesto de cuatro dominios y está altamente conservado en otros patógenos. Además, utilizaron análisis computacional para identificar dos zonas de unión que pueden servir como objetivos farmacológicos. [22]

Brucella melitensis

Brucella melitensis es una bacteria patógena que causa fiebre e inflamación del epidídimo en ovejas y ganado vacuno y puede transmitirse a los humanos mediante el consumo de leche no pasteurizada . La malato sintasa ha sido identificada como un posible factor de virulencia en esta bacteria. En 2016, Adi, et al. Construyeron una estructura cristalizada en 3D de la proteína para identificar dominios catalíticos e investigar posibles inhibidores . Identificaron cinco inhibidores con toxicidad no oral que servían como fármacos contra la bacteria, sugiriendo posibles rutas de tratamiento para la brucelosis . [23]

Escherichia coli

En Escherichia coli , los genes que codifican las enzimas necesarias para el ciclo del glioxilato se expresan a partir del operón ace policistrónico . Este operón contiene genes que codifican la malato sintasa (aceB), la isocitrato liasa (aceA) y la isocitrato deshidrogenasa quinasa/fosfatasa (aceK). [24]

Estudios Estructurales

A principios de 2018, se han resuelto varias estructuras para malato sintasas, incluidas aquellas con códigos de acceso PDB 2GQ3, 1D8C, 3OYX, 3PUG, 5TAO, 5H8M, 2JQX, 1P7T y 1Y8B. [25]

Referencias

  1. ^ AP : 5T8G ​; Huang HL, Krieger IV, Parai MK, Gawandi VB, Sacchettini JC (diciembre de 2016). "Las estructuras de malato sintasa de Mycobacterium tuberculosis con fragmentos revelan un portal para el intercambio de sustrato/producto". La Revista de Química Biológica . 291 (53): 27421–32. doi : 10.1074/jbc.m116.750877 . PMC  5207166 . PMID  27738104.
  2. ^ abcde Smith CV, Huang CC, Miczak A, Russell DG, Sacchettini JC, Höner zu Bentrup K (enero de 2003). "Estudios bioquímicos y estructurales de malato sintasa de Mycobacterium tuberculosis". La Revista de Química Biológica . 278 (3): 1735–43. doi : 10.1074/jbc.M209248200 . PMID  12393860.
  3. ^ Durchschlag H, Biedermann G, Eggerer H (febrero de 1981). "Purificación a gran escala y algunas propiedades de la malato sintasa de levadura de panadería". Revista europea de bioquímica . 114 (2): 255–62. doi :10.1111/j.1432-1033.1981.tb05144.x. PMID  7011808.
  4. ^ abc Anstrom DM, Kallio K, Remington SJ (septiembre de 2003). "Estructura del complejo ternario abortivo de Escherichia coli malato sintasa G: piruvato: acetil-coenzima A con una resolución de 1,95 A". Ciencia de las proteínas . 12 (9): 1822–32. doi : 10.1110/ps.03174303. PMC 2323980 . PMID  12930982. 
  5. ^ Serrano JA, Bonete MJ (agosto de 2001). "Análisis de secuenciación, filogenético y transcripcional del operón de derivación de glioxilato (ace) en la arqueona halófila Haloferax volcanii". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Estructura y expresión genética . 1520 (2): 154–62. doi :10.1016/s0167-4781(01)00263-9. PMID  11513957.
  6. ^ ab Howard BR, Endrizzi JA, Remington SJ (marzo de 2000). "Estructura cristalina de la malato sintasa G de Escherichia coli complejada con magnesio y glioxilato con una resolución de 2,0 A: implicaciones mecanísticas". Bioquímica . 39 (11): 3156–68. doi :10.1021/bi992519h. PMID  10715138.
  7. ^ Clark JD, O'Keefe SJ, Knowles JR (agosto de 1988). "Malato sintasa: prueba de una condensación de Claisen paso a paso mediante la prueba de fraccionamiento de doble isótopo". Bioquímica . 27 (16): 5961–71. doi :10.1021/bi00416a020. PMID  2847778.
  8. ^ Stryer L, Berg JM, Tymoczko JL (2003). Bioquímica (quinta ed.). Nueva York: Freeman. ISBN 978-0-7167-4684-3. OCLC  48055706.
  9. ^ Kornberg HL, Sadler JR (diciembre de 1961). "El metabolismo de los compuestos C2 en microorganismos. VIII. Un ciclo del ácido dicarboxílico como ruta para la oxidación del glicolato por Escherichia coli". La revista bioquímica . 81 (3): 503–13. doi :10.1042/bj0810503. PMC 1243371 . PMID  14458448. 
  10. ^ Nakazawa M (2017). "Metabolismo C2 en Euglena". Euglena: Bioquímica, Biología Celular y Molecular . Avances en Medicina y Biología Experimentales. vol. 979, págs. 39–45. doi :10.1007/978-3-319-54910-1_3. ISBN 978-3-319-54908-8. PMID  28429316.
  11. ^ Cioni M, Pinzauti G, Vanni P (1981). "Bioquímica comparada del ciclo del glioxilato". Bioquímica y Fisiología Comparada B. 70 : 1–26. doi :10.1016/0305-0491(81)90118-8.
  12. ^ Schnarrenberger C, Martin W (febrero de 2002). "Evolución de las enzimas del ciclo del ácido cítrico y del ciclo del glioxilato de plantas superiores. Un estudio de caso de transferencia de genes endosimbiótica". Revista europea de bioquímica . 269 ​​(3): 868–83. doi : 10.1046/j.0014-2956.2001.02722.x . PMID  11846788.
  13. ^ abc Strittmatter L, Li Y, Nakatsuka NJ, Calvo SE, Grabarek Z, Mootha VK (mayo de 2014). "CLYBL es una enzima humana polimórfica con actividad malato sintasa y β-metilmalato sintasa". Genética Molecular Humana . 23 (9): 2313–23. doi :10.1093/hmg/ddt624. PMC 3976331 . PMID  24334609. 
  14. ^ Shen H, Campanello GC, Flicker D, Grabarek Z, Hu J, Luo C, Banerjee R, Mootha VK (noviembre de 2017). "El gen knockout humano CLYBL conecta el itaconato con la vitamina B12". Celúla . 171 (4): 771–782.e11. doi :10.1016/j.cell.2017.09.051. PMC 5827971 . PMID  29056341. 
  15. ^ Reid MA, Paik J, Locasale JW (noviembre de 2017). "Un eslabón perdido con el metabolismo de la vitamina B12". Celúla . 171 (4): 736–737. doi : 10.1016/j.cell.2017.10.030 . PMID  29100069.
  16. ^ Dunn MF, Ramírez-Trujillo JA, Hernández-Lucas I (octubre de 2009). "Principales funciones de la isocitrato liasa y la malato sintasa en la patogénesis de bacterias y hongos". Microbiología . 155 (parte 10): 3166–75. doi : 10.1099/mic.0.030858-0 . PMID  19684068.
  17. ^ Höner Zu Bentrup K, Miczak A, Swenson DL, Russell DG (diciembre de 1999). "Caracterización de la actividad y expresión de isocitrato liasa en Mycobacterium avium y Mycobacterium tuberculosis". Revista de Bacteriología . 181 (23): 7161–7. doi :10.1128/JB.181.23.7161-7167.1999. PMC 103675 . PMID  10572116. 
  18. ^ Quartararo CE, Blanchard JS (agosto de 2011). "Mecanismo cinético y químico de la malato sintasa de Mycobacterium tuberculosis". Bioquímica . 50 (32): 6879–87. doi :10.1021/bi2007299. PMC 3153559 . PMID  21728344. 
  19. ^ Puckett S, Trujillo C, Wang Z, Eoh H, Ioerger TR, Krieger I, Sacchettini J, Schnappinger D, Rhee KY, Ehrt S (marzo de 2017). "La desintoxicación del glioxilato es una función esencial de la malato sintasa necesaria para la asimilación de carbono en Mycobacterium tuberculosis". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 114 (11): E2225–E2232. doi : 10.1073/pnas.1617655114 . PMC 5358392 . PMID  28265055. 
  20. ^ Singh KS, Sharma R, Keshari D, Singh N, Singh SK (septiembre de 2017). "La regulación negativa de la malato sintasa en Mycobacterium tuberculosis H37Ra conduce a una reducción de la tolerancia al estrés, la persistencia y la supervivencia en los macrófagos". Tuberculosis . 106 : 73–81. doi :10.1016/j.tube.2017.07.006. PMID  28802408. S2CID  38331939.
  21. ^ Mayo EE, Leitão A, Tropsha A, Oprea TI (diciembre de 2013). "Un estudio de biología química de sistemas de la inhibición de la malato sintasa y la isocitrato liasa en Mycobacterium tuberculosis durante el crecimiento activo y NRP". Biología y Química Computacional . 47 : 167–80. doi :10.1016/j.compbiolchem.2013.07.002. PMC 4010430 . PMID  24121675. 
  22. ^ McVey AC, Medarametla P, Chee X, Bartlett S, Poso A, Spring DR, Rahman T, Welch M (octubre de 2017). "Caracterización estructural y funcional de la malato sintasa G del patógeno oportunista Pseudomonas aeruginosa". Bioquímica . 56 (41): 5539–5549. doi : 10.1021/acs.biochem.7b00852 . PMID  28985053.
  23. ^ Adi PJ, Yellapu NK, Matcha B (diciembre de 2016). "Modelado, acoplamiento molecular, sondeo del modo de unión catalítica de acetil-CoA malato sintasa G en Brucella melitensis 16M". Informes de Bioquímica y Biofísica . 8 : 192-199. doi :10.1016/j.bbrep.2016.08.020. PMC 5613768 . PMID  28955956. 
  24. ^ Cortay JC, Bleicher F, Duclos B, Cenatiempo Y, Gautier C, Prato JL, Cozzone AJ (septiembre de 1989). "Utilización de acetato en Escherichia coli: organización estructural y expresión diferencial del operón ace". Bioquimia . 71 (9–10): 1043–9. doi :10.1016/0300-9084(89)90109-0. PMID  2512996.
  25. ^ Banco, datos de proteínas RCSB. "RCSB PDB: página de inicio". www.rcsb.org . Consultado el 5 de marzo de 2018 .