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Análisis isotópico por resonancia magnética nuclear

El análisis isotópico por resonancia magnética nuclear permite cuantificar con gran precisión las diferencias de contenido isotópico en cada sitio de una molécula y medir así el fraccionamiento isotópico natural específico para cada sitio de esta molécula. El método analítico SNIF-NMR fue desarrollado para detectar el (sobre)azucarado del vino y el enriquecimiento de los mostos de uva , y se utiliza principalmente para verificar la autenticidad de los productos alimenticios (como vinos , licores , jugos de frutas , miel , azúcar y vinagre ) y para controlar la naturalidad de algunas moléculas aromáticas (como vainillina , benzaldehído , cetona de frambuesa y anetol ). El método SNIF-NMR ha sido adoptado por la Organización Internacional de la Viña y el Vino (OIV) y la Unión Europea como método oficial para el análisis del vino. También es un método oficial adoptado por la Asociación de Químicos Analíticos (AOAC) para el análisis de jugos de frutas, jarabe de arce , vainillina, y por el Comité Europeo de Normalización (CEN) para el vinagre.

Fondo

La OIV lo adopta como método oficial

SNIF-NMR en el mundo

→ Implementación del método SNIF-NMR para laboratorios oficiales en Europa

→ Implementación del método SNIF-NMR< para laboratorios oficiales en EE.UU.

→ Implementación del método SNIF-NMR para laboratorios oficiales en Asia

Principio

Distribución isotópica

Figura 2
Figura 3 - Fuentes de fraccionamiento isotópico

Los átomos de hidrógeno , oxígeno y carbono coexisten naturalmente en proporciones específicas con sus isótopos estables , 2H (o D), 18O y 13C respectivamente, en diferentes proporciones como se muestra en la figura 2 a continuación.

La cantidad y distribución de los diferentes isótopos en una molécula está influenciada por: [5]

Este fenómeno se conoce como fraccionamiento isotópico natural (véase la Figura 3). La huella isotópica resultante puede proporcionar información sobre el origen (botánico, sintético, geográfico) de la molécula o producto.

Principio general

El principio del SNIF-NMR se basa en el “Fraccionamiento Isotópico Natural”. Habitualmente, para la autenticidad de los alimentos, se utilizan dos núcleos:

Pasos del método

Figura 5 - Etapas de la SNIF-RMN del etanol - Método oficial

La RMN-SNIF se aplica a moléculas puras (o purificadas). Por lo tanto, pueden ser necesarios algunos pasos de preparación en el laboratorio antes del análisis. Por ejemplo, para la RMN-SNIF del etanol, según los métodos oficiales:

En cada paso del análisis SNIF-RMN se deben tomar medidas para evitar el fraccionamiento isotópico parásito. En cada muestra se realizan medidas de control como la determinación del grado alcohólico de los productos intermedios del análisis (jugo fermentado o destilado).

Ventajas del método

Figura 6 - Principio del IRMS

Las proporciones isotópicas de una molécula también se pueden determinar mediante espectrometría de masas de proporción isotópica (IRMS), la cantidad de muestra para IRMS es mucho menor que para RMN, y existe la posibilidad de acoplar el espectrómetro de masas a un sistema cromatográfico para permitir la purificación en línea o análisis de varios componentes de una mezcla compleja. Sin embargo, la muestra se quema después de una transformación física como la combustión o la pirólisis . Por lo tanto, da un valor medio de la concentración del isótopo estudiado entre todos los sitios de la molécula. IRMS es la técnica oficial de la AOAC utilizada para la proporción media 13 C/ 12 C (o δ 13 C) de azúcares o etanol, y el método oficial CEN y OIV para el 18O/16O en agua .

El método SNIF-NMR (Site-Specific Natural Isotope Fractionation study by Nuclear Magnetic Resonance) permite determinar con un alto nivel de precisión las proporciones isotópicas para cada uno de los sitios de la molécula, lo que permite una mejor discriminación. Por ejemplo, para el etanol (CH 3 CH 2 OH), se pueden obtener las tres proporciones ((D/H)CH 3 , (D/H)CH 2 y (D/H) OH ).

Ejemplos de aplicaciones de2RMN-H-SNIF

Figura 7 – Reconocimiento oficial del método isotópico para su aplicación en alimentos – 2013

Solicitud de zumo de frutas y jarabe de arce

Método oficial de la AOAC para detectar la adición de azúcar en un jugo de fruta [4] o en el jarabe de arce. Es el único método confiable para detectar la adición de azúcar C3 (p. ej.: azúcar de remolacha ).

Espectro de RMN (ejemplo de la2RMN-H-SNIF)

Figura 8 - Espectro RMN 2H del etanol

Las moléculas de etanol obtenidas tras la fermentación completa del azúcar coexisten con tres isotopómeros monodeuterados de forma natural (CH 2 D-CH 2 -OH, CH 3 -CHDOH y CH 3 -CH 2 OD), cuya presencia puede cuantificarse con relativa precisión. [6]

En el siguiente espectro de RMN 2H (Figura 8), un pico corresponde a uno de los tres isotopómeros del etanol observados. En el método oficial de la AOAC, las proporciones de (D/H)CH 3 y (D/H)CH 2 se calculan mediante comparación con un estándar interno, la tetrametilurea (TMU), con un valor (D/H) certificado.

Interpretación de los valores isotópicos de SNIF-RMN

Figura 9 - Triángulo de adulteración: repartición de proporciones isotópicas en las moléculas de etanol

La siguiente Figura 9 resume el principio de interpretación de:

Los valores obtenidos en una muestra de prueba se comparan luego con los valores de muestras auténticas (Base de datos).

Solicitud de autenticidad de vinos

Figura 10 - Aplicaciones de SNIF-NMR e IRMS a la autenticidad del vino

La SNIF-RMN es el método oficial de la OIV para determinar la autenticidad del origen del vino. Es el único método que permite detectar la adición de azúcares C3 (como el azúcar de remolacha).

Los parámetros isotópicos tanto del agua como del etanol están relacionados con la humedad y la temperatura de la región de crecimiento de la planta . Por lo tanto, la consideración de los datos meteorológicos de la región y del año ayuda a realizar un diagnóstico. En el caso del vino y las frutas, se ha demostrado que los parámetros isotópicos del etanol responden incluso a variaciones ambientales sutiles y caracterizan eficientemente la región de producción. [6] [7]

Desde 1991, en el Centro Común de Investigación de la Comisión Europea (CE-CCI) se ha creado un banco de datos isotópicos sobre vinos de todos los miembros europeos. La base de datos contiene varios miles de entradas de vinos europeos [8] y se mantiene y actualiza cada año. Esta base de datos es accesible para todos los laboratorios públicos oficiales. Las empresas privadas que participan en los controles de alimentos y bebidas también han recopilado muestras auténticas y han creado bancos de datos específicos. [9]

De este modo, comparando el fraccionamiento isotópico natural específico correspondiente a cada sitio de una molécula de etanol de vino con el de una molécula conocida y referenciada en una base de datos, se puede comprobar el origen geográfico, botánico y de producción de la molécula de etanol y, por tanto, la autenticidad del vino. [10]

Aplicación de vinagre y ácido acético

Figura 11 – Aplicación del vinagre

El origen de los vinagres obtenidos por oxidación bacteriana o química del etanol resultante de la fermentación de diversos azúcares se puede identificar mediante la técnica de RMN 2 H-SNIF. Permite controlar la calidad del vinagre y determinar si procede de caña de azúcar, vino, malta, sidra y alcohol o de una síntesis química. [11]

Aplicación de vainillina

2 H-SNIF-NMR es el método oficial de la AOAC para determinar la vainillina natural.

La abundancia de cinco isotopómeros monodeuterados de vainillina se puede medir mediante RMN 2 H-SNIF. La molécula de vainillina se representa en la figura 11; todos los sitios observables para los que se pueden medir las concentraciones de deuterio específicas del sitio están referenciados con un número.

En cuanto al vino o la fruta, la interpretación de los resultados en términos de origen se realiza mediante la comparación de los parámetros isotópicos de la muestra analizada con los de un grupo de moléculas de referencia de origen conocido. Parece que todos los orígenes de la vainillina se discriminan bien utilizando los datos de RMN de 2 H. En particular, la vainillina ex-vaina se puede distinguir bien de las otras fuentes, como podemos ver en la figura 12 a continuación.

Además, este método es el único que permite discriminar entre fuentes naturales y biosintéticas de vainillina. [12]

Aplicación para otros aromas

La naturalidad de diferentes aromas también se puede comprobar mediante SNIF-NMR: por ejemplo, para el anetol, la abundancia de solo seis isotopómeros monodeuterados se puede medir mediante 2 H-SNIF-NMR que permite diferenciar los orígenes botánicos del hinojo, el anís estrellado o el pino. [13]

Otras aplicaciones: La SNIF-RMN aplicada al benzaldehído permite detectar aceites adulterados de almendras amargas y canela . Está demostrado que los contenidos de deuterio sitio-específicos del benzaldehído permiten determinar el origen de la molécula: sintético (ex- tolueno y ex- cloruro de benzal ), natural (ex-pepitas de albaricoque , melocotón , cereza y ex-almendra amarga) y semisintético (ex- cinamaldehído extraído de la canela). [14] También se han publicado otras aplicaciones: cetona de frambuesa), [15] heliotropina, ...

13RMN-C-SNIF

Figura 12 - Con este método se separan bien el metabolismo de las plantas C3, C4 y CAM.

Como se describe en el trabajo de E. Tenailleau y S. Akoka, una optimización de los parámetros técnicos ha permitido alcanzar una mejor precisión en las mediciones de RMN de 13 C). [16]

El método 13 C-SNIF-NMR se denomina método “nueva frontera” porque es el primer método analítico que puede diferenciar azúcares provenientes de plantas de metabolismo C4 (caña, maíz, etc.) y algunas plantas de metabolismo ácido crasuláceo (metabolismo CAM) como la piña o el agave . [17]

Este método también se puede aplicar a los productos de tequila , donde puede diferenciar el auténtico tequila 100% de agave, el tequila misto (elaborado con al menos 51% de agave) y los productos elaborados con una mayor proporción de azúcar de caña o maíz y, por lo tanto, que no cumplen con la definición legal de tequila. [17]

Este método seguramente tendrá más aplicaciones en el futuro, en el campo del análisis de autenticidad de alimentos y bebidas.

Referencias

  1. ^ ab Eurofins Scientific – Worldwide laboratory testing services, “Eurofins Scientific - 1987 - 1997 - The Start-up Phase”, (consultado el 2 de enero de 2014). http://www.eurofins.com/en/about-us/our-history/start-up-phase.aspx Archivado el 10 de febrero de 2015 en Wayback Machine.
  2. ^ INPI: Institut National de la Propriété Industrielle, "Bases de Données Marques", (consultado el 6 de enero de 2014). http://bases-marques.inpi.fr/
  3. ^ Reglamento de la Comisión de las Comunidades Europeas, 1990. (CEE) n° 000/90: “por el que se determinan los métodos comunitarios de análisis del vino”. Bruselas, Diario Oficial de las Comunidades Europeas, p. 64-73
  4. ^ ab Método oficial AOAC 995.17, Azúcar de remolacha en jugos de frutas, SNIF-NMR, AOAC International 1996
  5. ^ Akoka, Serge; Remaud, Gérald (octubre-diciembre de 2020). «Análisis isotópico e isotopómico basado en RMN». Progreso en espectroscopia de resonancia magnética nuclear . 120–121: 1–24. Bibcode :2020PNMRS.120....1A. doi :10.1016/j.pnmrs.2020.07.001. PMID  33198965 . Consultado el 11 de febrero de 2024 .
  6. ^ ab G. Martin, ML Martin. Métodos modernos de análisis de plantas: “El método de fraccionamiento de isótopos naturales específicos del sitio-RMN aplicado al estudio de los vinos”, edición: HF Linskens y JF Jackson Springer Verlag, Berlín, 1988, págs. 258-275
  7. ^ Martin GJ, Guillou C, Martin ML, Cabanis MT, Tep Y, Aerny JJ Agric. Química de los alimentos. 1988;36:316–22
  8. ^ Diario Oficial de las Comunidades Europeas. Off. J. Eur. Commun. 1991;L214:39–43
  9. ^ Guillou C, Jamin E, Martin GJ, Reniero F, Wittkowski R, Wood R. Boletín OIV. 2001;74:26–36
  10. ^ G. Martin, C. Guillou, YL Martin, Factores naturales del fraccionamiento isotópico y caracterización de los vinos”, Journal of Agricultural and Food chemistry, n°36, 1988, págs. 316-322
  11. ^ Fraccionamiento isotópico específico del sitio de hidrógeno en la oxidación del etanol en ácido acético. Aplicación a los vinagres. (C. Vallet, M. Arendt, G. Martin), Biotechnology Techniques, vol. 2 N° 2, 1988
  12. ^ Método oficial AOAC 2006.05, Relaciones deuterio/hidrógeno (D/H) específicas del sitio en vainillina, AOAC International 2007
  13. ^ La Résonnance Magnétique Nucléaire du Deutérium en Abondance Naturelle, un nouvelle méthode d'identification de l'origine de produits alimentaires appliquée à la reconnaissance des Anétholes et des Estragoles. (G. Martin, M. Martin, F. Mabon, J. Bricout), Sciences des Aliments, 1983
  14. ^ G. Remaud, A. Debon, Y. Martin, G. Martin. Autenticación de aceite de almendras amargas y aceite de canela: aplicación del método SNIF-NMR al benzaldehído, Journal of Agricultural and Food chemistry, n° 45, 1997
  15. ^ Revista de cromatografía de alta resolución, vol. 18, mayo de 1995, 279-285
  16. ^ E. Tenailleau, S. Akoka. Esquema de desacoplamiento adiabático de 1H para mediciones de intensidad muy precisas en RMN de 13C, Journal of Magnetic Resonance, n°185, 2007, págs. 50-58
  17. ^ ab F. Thomas, C. Randet, A. Gilbert, V. Silvestre, E. Jamin y otros. Caracterización mejorada del origen botánico del azúcar mediante SNIF-NMR de carbono-13 aplicada al etanol, Journal of Agricultural and Food chemistry, n° 58, 2010, p11580-11585

Véase también