stringtranslate.com

Doble hélice de ácido nucleico

Dos regiones complementarias de moléculas de ácido nucleico se unirán y formarán una estructura de doble hélice unida por pares de bases .

En biología molecular , el término doble hélice [1] se refiere a la estructura formada por moléculas de doble cadena de ácidos nucleicos como el ADN . La estructura de doble hélice de un complejo de ácido nucleico surge como consecuencia de su estructura secundaria , y es un componente fundamental para determinar su estructura terciaria . La estructura fue descubierta por Rosalind Franklin , su alumno Raymond Gosling , James Watson y Francis Crick , [2] mientras que el término "doble hélice" entró en la cultura popular con la publicación en 1968 de The Double Helix: A Personal Account of the Discovery of the Structure of DNA de Watson .

El biopolímero de doble hélice de ADN del ácido nucleico se mantiene unido por nucleótidos que se aparean entre sí. [3] En el ADN-B , la estructura de doble hélice más común que se encuentra en la naturaleza, la doble hélice es dextrógira con alrededor de 10–10,5 pares de bases por vuelta. [4] La estructura de doble hélice del ADN contiene un surco mayor y un surco menor . En el ADN-B, el surco mayor es más ancho que el surco menor. [3] Dada la diferencia en los anchos del surco mayor y el surco menor, muchas proteínas que se unen al ADN-B lo hacen a través del surco mayor más ancho. [5]

Historia

El modelo de doble hélice de la estructura del ADN fue publicado por primera vez en la revista Nature por James Watson y Francis Crick en 1953, [6] (las coordenadas X, Y, Z en 1954 [7] ) basándose en el trabajo de Rosalind Franklin y su estudiante Raymond Gosling , quienes tomaron la crucial imagen de difracción de rayos X del ADN etiquetada como " Foto 51 ", [8] [9] y Maurice Wilkins , Alexander Stokes y Herbert Wilson , [10] y la información química y bioquímica de apareamiento de bases de Erwin Chargaff . [11] [12] [13] [14] [15] [16] Antes de esto, Linus Pauling —quien ya había caracterizado con precisión la conformación de los motivos de estructura secundaria de las proteínas— y su colaborador Robert Corey habían postulado, erróneamente, que el ADN adoptaría una conformación de triple cadena . [17]

El descubrimiento de que la estructura del ADN es la de una doble hélice permitió esclarecer el mecanismo de apareamiento de bases mediante el cual se almacena y copia la información genética en los organismos vivos, y se considera ampliamente uno de los descubrimientos científicos más importantes del siglo XX. Crick, Wilkins y Watson recibieron cada uno un tercio del Premio Nobel de Fisiología o Medicina de 1962 por sus contribuciones al descubrimiento. [18]

Hibridación de ácidos nucleicos

La hibridación es el proceso de unión de pares de bases complementarios para formar una doble hélice. La fusión es el proceso por el cual se rompen las interacciones entre las hebras de la doble hélice, separando las dos hebras de ácido nucleico. Estos enlaces son débiles, se separan fácilmente mediante un calentamiento suave, enzimas o fuerza mecánica. La fusión ocurre preferentemente en ciertos puntos del ácido nucleico. [19] Las regiones ricas en T y A se funden más fácilmente que las regiones ricas en C y G. Algunos pasos de bases (pares) también son susceptibles a la fusión del ADN, como TA y TG . [20] Estas características mecánicas se reflejan en el uso de secuencias como TATA al comienzo de muchos genes para ayudar a la ARN polimerasa a fundir el ADN para la transcripción.

La separación de las hebras mediante un calentamiento suave, como se utiliza en la reacción en cadena de la polimerasa (PCR), es sencilla, siempre que las moléculas tengan menos de unos 10.000 pares de bases (10 kilopares de bases o 10 kbp). El entrelazamiento de las hebras de ADN hace que los segmentos largos sean difíciles de separar. [21] La célula evita este problema permitiendo que sus enzimas de fusión del ADN ( helicasas ) trabajen simultáneamente con las topoisomerasas , que pueden escindir químicamente la cadena principal de fosfato de una de las hebras para que pueda girar alrededor de la otra. [22] Las helicasas desenrollan las hebras para facilitar el avance de las enzimas de lectura de secuencias, como la ADN polimerasa . [23]

Geometría de pares de bases

Geometrías de pares de bases

La geometría de un paso de base o de un par de bases se puede caracterizar mediante seis coordenadas: desplazamiento, deslizamiento, elevación, inclinación, giro y torsión. Estos valores definen con precisión la ubicación y la orientación en el espacio de cada base o par de bases en una molécula de ácido nucleico en relación con su predecesor a lo largo del eje de la hélice. Juntos, caracterizan la estructura helicoidal de la molécula. En las regiones del ADN o del ARN donde se altera la estructura normal , el cambio en estos valores se puede utilizar para describir dicha alteración.

Para cada par de bases, considerado en relación con su predecesor, existen las siguientes geometrías de pares de bases a tener en cuenta: [24] [25] [26]

La elevación y la torsión determinan la lateralidad y el paso de la hélice. Las otras coordenadas, por el contrario, pueden ser cero. El deslizamiento y el desplazamiento son típicamente pequeños en el ADN-B, pero son sustanciales en el ADN-A y Z. El giro y la inclinación hacen que los pares de bases sucesivos sean menos paralelos y son típicamente pequeños.

En la literatura científica, el término "inclinación" se ha utilizado a menudo de forma diferente, haciendo referencia a la desviación del primer eje de pares de bases entre hebras con respecto a la perpendicularidad con respecto al eje de la hélice. Esto corresponde a un deslizamiento entre una sucesión de pares de bases y, en coordenadas basadas en hélices, se denomina correctamente "inclinación".

Geometrías de hélice

Se cree que en la naturaleza se encuentran al menos tres conformaciones de ADN: ADN-A , ADN-B y ADN-Z . Se cree que la forma B descrita por James Watson y Francis Crick predomina en las células. [27] Tiene 23,7 Å de ancho y se extiende 34 Å por cada 10 pb de secuencia. La doble hélice realiza una vuelta completa sobre su eje cada 10,4–10,5 pares de bases en solución. Esta frecuencia de torsión (denominada paso helicoidal ) depende en gran medida de las fuerzas de apilamiento que cada base ejerce sobre sus vecinas en la cadena. La configuración absoluta de las bases determina la dirección de la curva helicoidal para una conformación dada.

El ADN-A y el ADN-Z difieren significativamente en su geometría y dimensiones del ADN-B, aunque aún forman estructuras helicoidales. Durante mucho tiempo se pensó que la forma A solo se produce en muestras deshidratadas de ADN en el laboratorio, como las que se utilizan en experimentos cristalográficos , y en apareamientos híbridos de cadenas de ADN y ARN , pero la deshidratación del ADN ocurre in vivo , y ahora se sabe que el ADN-A tiene funciones biológicas . Los segmentos de ADN que las células han metilado con fines reguladores pueden adoptar la geometría Z, en la que las cadenas giran sobre el eje helicoidal en sentido opuesto al ADN-A y al ADN-B. También hay evidencia de complejos proteína-ADN que forman estructuras de ADN-Z.

Son posibles otras conformaciones; hasta ahora se han descrito A-ADN, B-ADN, C-ADN , E-ADN, [28] L -ADN (la forma enantiomérica de D -ADN), [29] P-ADN, [30] S-ADN, Z-ADN, etc. [31] De hecho, ahora solo están disponibles las letras F, Q, U, V e Y para describir cualquier nueva estructura de ADN que pueda aparecer en el futuro. [32] [33] Sin embargo, la mayoría de estas formas se han creado sintéticamente y no se han observado en sistemas biológicos naturales. [ cita requerida ] También hay formas de ADN de triple cadena y formas cuádruplex como el G-quadruplex y el i-motif .

Las estructuras del ADN A, B y Z.
El eje de la hélice del ADN A, B y Z.

Surcos

Surcos mayores y menores del ADN. El surco menor es un sitio de unión para el colorante Hoechst 33258 .

Las hebras helicoidales gemelas forman la estructura principal del ADN. Se puede encontrar otra doble hélice rastreando los espacios, o surcos, entre las hebras. Estos huecos son adyacentes a los pares de bases y pueden proporcionar un sitio de unión . [37] Como las hebras no están directamente opuestas entre sí, los surcos tienen un tamaño desigual. Un surco, el surco mayor, tiene 22 Å de ancho y el otro, el surco menor, tiene 12 Å de ancho. [38] La estrechez del surco menor significa que los bordes de las bases son más accesibles en el surco mayor. Como resultado, las proteínas como los factores de transcripción que pueden unirse a secuencias específicas en el ADN bicatenario generalmente hacen contacto con los lados de las bases expuestas en el surco mayor. [5] Esta situación varía en conformaciones inusuales del ADN dentro de la célula (ver más abajo) , pero los surcos mayor y menor siempre se nombran para reflejar las diferencias de tamaño que se verían si el ADN se retuerce de nuevo a la forma B ordinaria. [39]

Formas no helicoidales dobles

A finales de los años 1970 se consideraron brevemente modelos alternativos no helicoidales como una posible solución a los problemas de replicación del ADN en plásmidos y cromatina . Sin embargo, los modelos se dejaron de lado en favor del modelo de doble hélice debido a los avances experimentales posteriores, como la cristalografía de rayos X de los dúplex de ADN y más tarde la partícula central del nucleosoma , y ​​el descubrimiento de las topoisomerasas . Además, los modelos no de doble hélice no son aceptados actualmente por la comunidad científica convencional. [40] [41]

Doblado

El ADN es un polímero relativamente rígido, que se modela típicamente como una cadena con forma de gusano . Tiene tres grados de libertad importantes: flexión, torsión y compresión, cada uno de los cuales impone ciertos límites a lo que es posible con el ADN dentro de una célula. La rigidez de torsión es importante para la circularización del ADN y la orientación de las proteínas unidas al ADN entre sí, y la rigidez axial de flexión es importante para la envoltura y circularización del ADN y las interacciones proteicas. La compresión-extensión es relativamente poco importante en ausencia de alta tensión.

Longitud de persistencia, rigidez axial

El ADN en solución no adopta una estructura rígida, sino que cambia continuamente de conformación debido a la vibración térmica y a las colisiones con las moléculas de agua, lo que hace imposible aplicar las medidas clásicas de rigidez. Por lo tanto, la rigidez a la flexión del ADN se mide mediante la longitud de persistencia, definida como:

La flexibilidad de flexión de un polímero se cuantifica convencionalmente en términos de su longitud de persistencia, Lp, una escala de longitud por debajo de la cual el polímero se comporta más o menos como una varilla rígida. Específicamente, Lp se define como la longitud del segmento de polímero sobre el cual la orientación promediada en el tiempo del polímero deja de estar correlacionada... [42]

Este valor se puede medir directamente utilizando un microscopio de fuerza atómica para obtener imágenes directas de moléculas de ADN de varias longitudes. En una solución acuosa, se ha descubierto que la longitud de persistencia promedio es de alrededor de 50 nm (o 150 pares de bases). [43] En términos más generales, se ha observado que es de entre 45 y 60 nm [44] o 132-176 pares de bases (el diámetro del ADN es de 2 nm) [45]. Esto puede variar significativamente debido a las variaciones de temperatura, las condiciones de la solución acuosa y la longitud del ADN. [44] Esto hace que el ADN sea una molécula moderadamente rígida. [43]

La duración de persistencia de una sección de ADN depende en cierta medida de su secuencia, y esto puede causar una variación significativa. La variación se debe en gran medida a las energías de apilamiento de bases y a los residuos que se extienden hacia los surcos mayor y menor .

Modelos de curvatura del ADN

En escalas de longitud mayores que la longitud de persistencia , la flexibilidad entrópica del ADN es notablemente consistente con los modelos estándar de física de polímeros , como el modelo de cadena similar a un gusano de Kratky-Porod . [47] En consonancia con el modelo de cadena similar a un gusano está la observación de que la curvatura del ADN también se describe mediante la ley de Hooke a fuerzas muy pequeñas (sub- piconewton ). Para segmentos de ADN menores que la longitud de persistencia, la fuerza de curvatura es aproximadamente constante y el comportamiento se desvía de las predicciones de la cadena similar a un gusano.

Este efecto da como resultado una facilidad inusual para circularizar pequeñas moléculas de ADN y una mayor probabilidad de encontrar secciones de ADN muy dobladas. [48]

Preferencia de flexión

Las moléculas de ADN suelen tener una dirección preferida para doblarse, es decir, una curvatura anisotrópica . Esto se debe, nuevamente, a las propiedades de las bases que componen la secuencia de ADN: una secuencia aleatoria no tendrá una dirección preferida para doblarse, es decir, una curvatura isotrópica.

La dirección preferida de curvatura del ADN está determinada por la estabilidad del apilamiento de cada base sobre la siguiente. Si siempre se encuentran pasos de apilamiento de bases inestables en un lado de la hélice del ADN, entonces el ADN se curvará preferentemente en dirección opuesta a esa dirección. A medida que aumenta el ángulo de curvatura, los impedimentos estéricos y la capacidad de hacer rodar los residuos entre sí también juegan un papel, especialmente en el surco menor. Los residuos A y T se encontrarán preferentemente en los surcos menores en el interior de las curvaturas. Este efecto se observa particularmente en la unión de ADN y proteína donde se induce una curvatura fuerte del ADN, como en las partículas de nucleosomas . Vea las distorsiones de los pasos de base más arriba.

Las moléculas de ADN con una preferencia excepcional por la curvatura pueden llegar a ser intrínsecamente curvas. Esto se observó por primera vez en el ADN del cinetoplasto de los tripanosomátidos . Las secuencias típicas que provocan esto contienen tramos de 4 a 6 residuos T y A separados por secciones ricas en G y C que mantienen los residuos A y T en fase con el surco menor en un lado de la molécula. Por ejemplo:

La estructura intrínsecamente curvada se induce por la "torsión de hélice" de los pares de bases entre sí, lo que permite la formación de enlaces de hidrógeno bifurcados inusuales entre los escalones de las bases. A temperaturas más altas, esta estructura se desnaturaliza y, por lo tanto, se pierde la curvatura intrínseca.

Todo ADN que se dobla de manera anisotrópica tiene, en promedio, una mayor duración de persistencia y una mayor rigidez axial. Esta mayor rigidez es necesaria para evitar una flexión aleatoria que haría que la molécula actúe de manera isotrópica.

Circularización

La circularización del ADN depende tanto de la rigidez axial (de flexión) como de la rigidez torsional (rotacional) de la molécula. Para que una molécula de ADN se circularice con éxito, debe ser lo suficientemente larga como para doblarse fácilmente en el círculo completo y debe tener el número correcto de bases para que los extremos estén en la rotación correcta para permitir que se produzca la unión. La longitud óptima para la circularización del ADN es de alrededor de 400 pares de bases (136 nm) [ cita requerida ] , con un número entero de vueltas de la hélice de ADN, es decir, múltiplos de 10,4 pares de bases. Tener un número no entero de vueltas presenta una barrera energética significativa para la circularización, por ejemplo, una molécula de 10,4 x 30 = 312 pares de bases se circularizará cientos de veces más rápido que una molécula de 10,4 x 30,5 ≈ 317 pares de bases. [49]

La curvatura de los segmentos cortos de ADN circularizados no es uniforme. En cambio, en el caso de los segmentos de ADN circularizados de longitud inferior a la de persistencia, la curvatura del ADN se localiza en 1 o 2 pliegues que se forman preferentemente en los segmentos ricos en AT. Si hay una muesca , la curvatura se localizará en el sitio de la muesca. [48]

Extensión

Régimen de estiramiento elástico

Los tramos más largos de ADN son entrópicamente elásticos bajo tensión. Cuando el ADN está en solución, sufre variaciones estructurales continuas debido a la energía disponible en el baño térmico del disolvente. Esto se debe a la vibración térmica de la molécula combinada con colisiones continuas con moléculas de agua. Por razones entrópicas , los estados relajados más compactos son térmicamente accesibles que los estados estirados, y por eso las moléculas de ADN se encuentran casi universalmente en disposiciones relajadas enredadas. Por esta razón, una molécula de ADN se estirará bajo una fuerza, enderezándola. Utilizando pinzas ópticas , se ha estudiado y analizado el comportamiento de estiramiento entrópico del ADN desde una perspectiva de física de polímeros , y se ha descubierto que el ADN se comporta en gran medida como el modelo de cadena similar a un gusano de Kratky-Porod en escalas de energía fisiológicamente accesibles.

Transiciones de fase bajo estiramiento

Se cree que, bajo una tensión suficiente y un par positivo, el ADN experimenta una transición de fase en la que las bases se expanden hacia afuera y los fosfatos se desplazan hacia el centro. Esta estructura propuesta para el ADN sobreestirado se ha denominado ADN en forma P , en honor a Linus Pauling, quien la presentó originalmente como una posible estructura del ADN. [30]

La evidencia del estiramiento mecánico del ADN en ausencia de un torque impuesto apunta a una transición o transiciones que conducen a estructuras adicionales que generalmente se conocen como ADN en forma S. Estas estructuras aún no se han caracterizado definitivamente debido a la dificultad de realizar imágenes de resolución atómica en solución mientras se aplica fuerza, aunque se han realizado muchos estudios de simulación por computadora (por ejemplo, [50] [51] ).

Las estructuras de S-ADN propuestas incluyen aquellas que preservan el apilamiento de pares de bases y los enlaces de hidrógeno (ricas en GC), mientras liberan la extensión por inclinación, así como estructuras en las que tiene lugar una fusión parcial del apilamiento de bases, mientras que la asociación base-base se conserva en general (ricas en AT).

Se ha propuesto la fractura periódica de la pila de pares de bases con una ruptura que ocurre una vez cada tres pb (por lo tanto, uno de cada tres pasos pb-pb) como una estructura regular que preserva la planaridad de la pila de bases y libera la cantidad apropiada de extensión, [52] con el término "Σ-ADN" introducido como un mnemónico, con los tres puntos orientados hacia la derecha del carácter Sigma sirviendo como recordatorio de los tres pares de bases agrupados. Se ha demostrado que la forma Σ tiene una preferencia de secuencia por los motivos GNC que se cree que, según la hipótesis GNC, son de importancia evolutiva. [53]

Superenrollamiento y topología

Estructura superenrollada de moléculas de ADN circulares con poca ondulación. Se omite el aspecto helicoidal del dúplex de ADN para mayor claridad.

La forma B de la hélice de ADN gira 360° cada 10,4-10,5 pb en ausencia de tensión torsional. Pero muchos procesos biológicos moleculares pueden inducir tensión torsional. Un segmento de ADN con torsión helicoidal excesiva o insuficiente se denomina, respectivamente, superenrollado positiva o negativamente . El ADN in vivo suele estar superenrollado negativamente, lo que facilita el desenrollado (fusión) de la doble hélice necesaria para la transcripción del ARN .

Dentro de la célula, la mayor parte del ADN está restringido topológicamente. El ADN se encuentra típicamente en bucles cerrados (como los plásmidos en los procariotas) que están topológicamente cerrados, o como moléculas muy largas cuyos coeficientes de difusión producen dominios topológicamente cerrados de manera efectiva. Las secciones lineales de ADN también suelen estar unidas a proteínas o estructuras físicas (como las membranas) para formar bucles topológicos cerrados.

Francis Crick fue uno de los primeros en proponer la importancia de los números de enlace al considerar las superenrollaciones del ADN. En un artículo publicado en 1976, Crick describió el problema de la siguiente manera:

Al considerar las superenrollaciones formadas por moléculas de ADN bicatenarias cerradas, se necesitan ciertos conceptos matemáticos, como el número de enlace y el giro. Se explica el significado de estos para una cinta cerrada y también el del número de sinuosidad de una curva cerrada. Se dan algunos ejemplos simples, algunos de los cuales pueden ser relevantes para la estructura de la cromatina. [54]

El análisis de la topología del ADN utiliza tres valores:

Cualquier cambio de T en un dominio topológico cerrado debe ser compensado por un cambio de W, y viceversa. Esto da como resultado una estructura de orden superior del ADN. Una molécula de ADN circular con una torsión de 0 será circular. Si la torsión de esta molécula se incrementa o disminuye posteriormente mediante superenrollamiento, entonces la torsión se alterará apropiadamente, haciendo que la molécula experimente un enrollamiento superhelicoidal plectonémico o toroidal.

Cuando los extremos de un fragmento de ADN helicoidal de doble cadena se unen de forma que forman un círculo, las hebras están anudadas topológicamente . Esto significa que las hebras simples no se pueden separar mediante ningún proceso que no implique romper una hebra (como el calentamiento). La tarea de desanudar las hebras de ADN unidas topológicamente recae en enzimas denominadas topoisomerasas . Estas enzimas se dedican a desanudar el ADN circular cortando una o ambas hebras para que pueda pasar otro segmento de cadena simple o doble. Este desanudamiento es necesario para la replicación del ADN circular y varios tipos de recombinación en el ADN lineal que tienen restricciones topológicas similares.

La paradoja de los números de enlace

Durante muchos años, el origen del superenrollamiento residual en los genomas eucariotas permaneció incierto. Algunos se refirieron a este rompecabezas topológico como la "paradoja del número de enlace". [55] Sin embargo, cuando las estructuras determinadas experimentalmente del nucleosoma mostraron una envoltura de ADN levógira sobretorcida alrededor del octámero de histonas , [56] [57] la comunidad científica consideró que esta paradoja estaba resuelta.

Véase también

Referencias

  1. ^ Kabai S (2007). "Doble hélice". El proyecto de demostraciones de Wolfram .
  2. ^ Cobb M, Comfort N (abril de 2023). "Lo que Rosalind Franklin realmente contribuyó al descubrimiento de la estructura del ADN". Nature . 616 (7958): 657–660. Bibcode :2023Natur.616..657C. doi :10.1038/d41586-023-01313-5. PMID  37100935.
  3. ^ ab Alberts B, Johnson A, Lewis J, Raff M, Roberts K, Walter P (1994). La biología molecular de la célula (3.ª ed.). Nueva York: Garland Science. ISBN 978-0-8153-4105-5.
  4. ^ Wang JC (enero de 1979). "Repetición helicoidal de ADN en solución". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 76 (1): 200–203. Bibcode :1979PNAS...76..200W. doi : 10.1073/pnas.76.1.200 . PMC 382905 . PMID  284332. 
  5. ^ ab Pabo CO, Sauer RT (1984). "Reconocimiento proteína-ADN". Revisión anual de bioquímica . 53 : 293–321. doi :10.1146/annurev.bi.53.070184.001453. PMID  6236744.
  6. ^ Watson JD, Crick FH (abril de 1953). "Estructura molecular de los ácidos nucleicos; una estructura para el ácido desoxirribonucleico". Nature . 171 (4356): 737–738. Bibcode :1953Natur.171..737W. doi :10.1038/171737a0. PMID  13054692. S2CID  4253007.
  7. ^ Crick F, Watson JD (1954). "La estructura complementaria del ácido desoxirribonucleico". Actas de la Royal Society de Londres . 223, Serie A (1152): 80–96. Bibcode :1954RSPSA.223...80C. doi : 10.1098/rspa.1954.0101 .
  8. ^ "Crédito debido". Nature . 496 (7445): 270. Abril de 2013. doi : 10.1038/496270a . PMID  23607133.
  9. ^ Witkowski J (2019). "Los científicos olvidados que allanaron el camino hacia la doble hélice". Nature . 568 (7752): 308–309. Bibcode :2019Natur.568..308W. doi : 10.1038/d41586-019-01176-9 .
  10. ^ Wilkins MH, Stokes AR, Wilson HR (abril de 1953). "Estructura molecular de los ácidos nucleicos desoxipentosos". Nature . 171 (4356): 738–740. Bibcode :1953Natur.171..738W. doi :10.1038/171738a0. PMID  13054693. S2CID  4280080.
  11. ^ Elson D, Chargaff E (abril de 1952). "Sobre el contenido de ácido desoxirribonucleico de los gametos de erizo de mar". Experientia . 8 (4): 143–145. doi :10.1007/BF02170221. PMID  14945441. S2CID  36803326.
  12. ^ Chargaff E, Lipshitz R, Green C (marzo de 1952). "Composición de los ácidos nucleicos desoxipentosa de cuatro géneros de erizos de mar". The Journal of Biological Chemistry . 195 (1): 155–160. doi : 10.1016/S0021-9258(19)50884-5 . PMID  14938364.
  13. ^ Chargaff E, Lipshitz R, Green C, Hodes ME (septiembre de 1951). "La composición del ácido desoxirribonucleico del esperma de salmón". The Journal of Biological Chemistry . 192 (1): 223–230. doi : 10.1016/S0021-9258(18)55924-X . PMID  14917668.
  14. ^ Chargaff E (julio de 1951). "Algunos estudios recientes sobre la composición y estructura de los ácidos nucleicos". Journal of Cellular and Comparative Physiology . 38 (Supl 1): 41–59.
  15. ^ Magasanik B, Vischer E, Doniger R, Elson D, Chargaff E (septiembre de 1950). "La separación y estimación de ribonucleótidos en cantidades diminutas". The Journal of Biological Chemistry . 186 (1): 37–50. doi : 10.1016/S0021-9258(18)56284-0 . PMID  14778802.
  16. ^ Chargaff E (junio de 1950). "Especificidad química de los ácidos nucleicos y mecanismo de su degradación enzimática". Experientia . 6 (6): 201–209. doi :10.1007/BF02173653. PMID  15421335. S2CID  2522535.
  17. ^ Pauling L, Corey RB (febrero de 1953). "Una estructura propuesta para los ácidos nucleicos". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 39 (2): 84–97. Bibcode :1953PNAS...39...84P. doi : 10.1073/pnas.39.2.84 . PMC 1063734 . PMID  16578429. 
  18. ^ "Premio Nobel - Lista de todos los premios Nobel".
  19. ^ Breslauer KJ, Frank R, Blöcker H, Marky LA (junio de 1986). "Predicción de la estabilidad del dúplex de ADN a partir de la secuencia de bases". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 83 (11): 3746–3750. Bibcode :1986PNAS...83.3746B. doi : 10.1073/pnas.83.11.3746 . PMC 323600 . PMID  3459152. 
  20. ^ Owczarzy R (28 de agosto de 2008). "Temperatura de fusión del ADN: ¿cómo calcularla?". Biofísica de ADN de alto rendimiento . owczarzy.net. Archivado desde el original el 30 de abril de 2015. Consultado el 2 de octubre de 2008 .
  21. ^ "Chromosome 16: PV92 PCR Informatics Kit". Biotechnology Explorer (1.ª ed.). Estados Unidos : Bio-Rad Laboratories. 2016. pág. 104.
  22. ^ "Capítulo 9: Replicación del ADN – Química". CH450 y CH451: Bioquímica – Definición de la vida a nivel molecular . Universidad de Western Oregon . Consultado el 10 de junio de 2022 .
  23. ^ Alberts B, Johnson A, Lewis J, Raff M, Roberts K, Walter P (2002). "Mecanismos de replicación del ADN". Biología molecular de la célula (4.ª ed.).
  24. ^ Dickerson RE (marzo de 1989). "Definiciones y nomenclatura de los componentes de la estructura de los ácidos nucleicos". Nucleic Acids Research . 17 (5): 1797–1803. doi :10.1093/nar/17.5.1797. PMC 317523 . PMID  2928107. 
  25. ^ Lu XJ, Olson WK (enero de 1999). "Resolución de las discrepancias entre los análisis conformacionales de ácidos nucleicos". Journal of Molecular Biology . 285 (4): 1563–1575. doi :10.1006/jmbi.1998.2390. PMID  9917397.
  26. ^ Olson WK, Bansal M, Burley SK, Dickerson RE, Gerstein M, Harvey SC, et al. (octubre de 2001). "Un marco de referencia estándar para la descripción de la geometría de pares de bases de ácidos nucleicos". Journal of Molecular Biology . 313 (1): 229–237. doi :10.1006/jmbi.2001.4987. PMID  11601858.
  27. ^ Richmond TJ, Davey CA (mayo de 2003). "La estructura del ADN en el núcleo del nucleosoma". Nature . 423 (6936): 145–150. Bibcode :2003Natur.423..145R. doi :10.1038/nature01595. PMID  12736678. S2CID  205209705.
  28. ^ Vargason JM, Eichman BF, Ho PS (septiembre de 2000). "La estructura extendida y excéntrica del ADN-E inducida por la metilación o bromación de la citosina". Nature Structural Biology . 7 (9): 758–761. doi :10.1038/78985. PMID  10966645. S2CID  4420623.
  29. ^ Hayashi G, Hagihara M, Nakatani K (2005). "Aplicación del L-ADN como etiqueta molecular". Serie de simposios sobre ácidos nucleicos . 49 (49): 261–262. doi : 10.1093/nass/49.1.261 . PMID:  17150733.
  30. ^ ab Allemand JF, Bensimon D, Lavery R, ​​Croquette V (noviembre de 1998). "El ADN estirado y enrollado forma una estructura similar a la de Pauling con bases expuestas". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 95 (24): 14152–14157. Bibcode :1998PNAS...9514152A. doi : 10.1073/pnas.95.24.14152 . PMC 24342 . PMID  9826669. 
  31. ^ Xiang J. "Lista de 55 estructuras de fibras". Departamento de Química y Biología Química . New Brunswick: Universidad Rutgers. Archivado desde el original el 26 de mayo de 2007.
  32. ^ Bansal M (2003). "Estructura del ADN: revisitando la doble hélice Watson-Crick". Current Science . 85 (11): 1556–1563.
  33. ^ Ghosh A, Bansal M (abril de 2003). "Un glosario de estructuras de ADN de la A a la Z". Acta Crystallographica. Sección D, Cristalografía biológica . 59 (parte 4): 620–626. doi :10.1107/S0907444903003251. PMID  12657780.
  34. ^ Rich A, Nordheim A, Wang AH (1984). "La química y la biología del ADN-Z zurdo". Revisión anual de bioquímica . 53 : 791–846. doi :10.1146/annurev.bi.53.070184.004043. PMID  6383204.
  35. ^ Sinden RR (15 de enero de 1994). Estructura y función del ADN (1.ª ed.). Academic Press. pág. 398. ISBN 0-12-645750-6.
  36. ^ Ho PS (septiembre de 1994). "La estructura no B-ADN de d(CA/TG)n no difiere de la del Z-ADN". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 91 (20): 9549–9553. Bibcode :1994PNAS...91.9549H. doi : 10.1073/pnas.91.20.9549 . PMC 44850 . PMID  7937803. 
  37. ^ "Doble hélice". Genome.gov . Consultado el 10 de junio de 2022 .
  38. ^ Wing R, Drew H, Takano T, Broka C, Tanaka S, Itakura K, et al. (octubre de 1980). "Análisis de la estructura cristalina de una vuelta completa de ADN-B". Nature . 287 (5784): 755–758. Bibcode :1980Natur.287..755W. doi :10.1038/287755a0. PMID  7432492. S2CID  4315465.
  39. ^ Neidle S, Sanderson M (2022). "Estructura del ADN observada en fibras y cristales". Principles of Nucleic Acid Structure . Elsevier. págs. 53–108. doi :10.1016/B978-0-12-819677-9.00007-X. ISBN 9780128196779.S2CID239504252  .​
  40. ^ Stokes TD (mayo de 1982). "La doble hélice y la cremallera deformada: un relato ejemplar". Estudios sociales de la ciencia . 12 (2): 207–240. doi :10.1177/030631282012002002. PMID  11620855. S2CID  29369576.
  41. ^ Gautham N (25 de mayo de 2004). "Respuesta a 'Variedad en la estructura secundaria del ADN'" (PDF) . Current Science . 86 (10): 1352–1353 . Consultado el 25 de mayo de 2012 . Sin embargo, el descubrimiento de las topoisomerasas eliminó "el aguijón" de la objeción topológica a la doble hélice plectonémica. La solución más reciente de la estructura de rayos X del monocristal de la partícula central del nucleosoma mostró casi 150 pares de bases del ADN (es decir, alrededor de 15 vueltas completas), con una estructura que es en todos los aspectos esenciales la misma que el modelo de Watson-Crick. Esto asestó un golpe mortal a la idea de que otras formas de ADN, en particular el ADN de doble hélice, existen como algo más que estructuras locales o transitorias.[ enlace muerto permanente ]
  42. ^ Drozdetski AV, Mukhopadhyay A, Onufriev AV (noviembre de 2019). "ADN de doble cadena fuertemente doblado: reconciliando la teoría y el experimento". Frontiers in Physics . 7 : 195. arXiv : 1907.01585 . Bibcode :2019FrP.....7..195O. doi : 10.3389/fphy.2019.00195 . PMC 7323118 . PMID  32601596. 
  43. ^ ab Manning GS (noviembre de 2006). "La longitud de persistencia del ADN se alcanza a partir de la longitud de persistencia de su isómero nulo mediante una fuerza de estiramiento electrostático interno". Biophysical Journal . 91 (10): 3607–3616. doi :10.1529/biophysj.106.089029. PMC 1630458 . PMID  16935960. 
  44. ^ ab Mohammed Khalid AA, Parisse P, Medagli B, Onesti S, Casalis L (febrero de 2021). "Investigación mediante microscopía de fuerza atómica de las interacciones entre la helicasa MCM y el ADN". Materiales . 14 (3): 687. doi : 10.3390/ma14030687 . PMC 7867263 . PMID  33540751. 
  45. ^ Maeshima K, Eltsov M (febrero de 2008). "Empaquetado del genoma: la estructura de los cromosomas mitóticos". Journal of Biochemistry . 143 (2): 145–153. doi :10.1093/jb/mvm214. PMC 3943392 . PMID  17981824. 
  46. ^ Protozanova E, Yakovchuk P, Frank-Kamenetskii MD (septiembre de 2004). "Equilibrio apilado-desapilado en el sitio de corte del ADN". Journal of Molecular Biology . 342 (3): 775–785. doi :10.1016/j.jmb.2004.07.075. PMID  15342236.
  47. ^ Shimada J, Yamakawa H (1984). "Probabilidades de cierre de anillo para cadenas retorcidas similares a gusanos. Aplicación al ADN". Macromolecules . 17 (4): 4660–4672. Bibcode :1984MaMol..17..689S. doi :10.1021/ma00134a028.
  48. ^ ab Harrison RM, Romano F, Ouldridge TE, Louis AA, Doye JP (agosto de 2019). "Identificación de causas físicas de la aparente ciclización mejorada de moléculas cortas de ADN con un modelo de grano grueso". Journal of Chemical Theory and Computation . 15 (8): 4660–4672. doi : 10.1021/acs.jctc.9b00112 . PMC 6694408 . PMID  31282669. 
  49. ^ Travers A (mayo de 2005). "Dinámica del ADN: ¿burbuja y volteo para la ciclización del ADN?". Current Biology . 15 (10): R377–R379. Bibcode :2005CBio...15.R377T. doi : 10.1016/j.cub.2005.05.007 . PMID  15916938. S2CID  10568179.
  50. ^ Konrad MW, Bolonick JW (1996). "La simulación de dinámica molecular del estiramiento del ADN es consistente con la tensión observada para la extensión y la separación de cadenas y predice una nueva estructura en escalera". Journal of the American Chemical Society . 118 (45): 10989–10994. doi :10.1021/ja961751x.
  51. ^ Roe DR, Chaka AM (noviembre de 2009). "Base estructural de los perfiles de fuerza dependientes de la vía en el ADN estirado". The Journal of Physical Chemistry B . 113 (46): 15364–15371. doi :10.1021/jp906749j. PMID  19845321.
  52. ^ Bosaeus N, Reymer A, Beke-Somfai T, Brown T, Takahashi M, Wittung-Stafshede P, et al. (enero de 2017). "¿Una conformación estirada del ADN con un papel biológico?". Quarterly Reviews of Biophysics . 50 : e11. doi : 10.1017/S0033583517000099 . PMID  29233223.
  53. ^ Taghavi A, van der Schoot P, Berryman JT (enero de 2017). "El ADN se divide en tripletes bajo tensión en presencia de cationes orgánicos, y la edad evolutiva de la secuencia predice la estabilidad de la fase de triplete". Quarterly Reviews of Biophysics . 50 : e15. doi : 10.1017/S0033583517000130 . PMID  29233227.
  54. ^ Crick FH (agosto de 1976). "Números de enlace y nucleosomas". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 73 (8): 2639–2643. Bibcode :1976PNAS...73.2639C. doi : 10.1073/pnas.73.8.2639 . PMC 430703 . PMID  1066673. 
  55. ^ Prunell A (mayo de 1998). "Un enfoque topológico de la estructura y dinámica de los nucleosomas: la paradoja del número de enlace y otras cuestiones". Biophysical Journal . 74 (5): 2531–2544. Bibcode :1998BpJ....74.2531P. doi :10.1016/S0006-3495(98)77961-5. PMC 1299595 . PMID  9591679. 
  56. ^ Luger K, Mäder AW, Richmond RK, Sargent DF, Richmond TJ (septiembre de 1997). "Estructura cristalina de la partícula del núcleo del nucleosoma a una resolución de 2,8 A". Nature . 389 (6648): 251–260. Bibcode :1997Natur.389..251L. doi :10.1038/38444. PMID  9305837. S2CID  4328827.
  57. ^ Davey CA, Sargent DF, Luger K, Maeder AW, Richmond TJ (junio de 2002). "Interacciones mediadas por solventes en la estructura de la partícula del núcleo del nucleosoma a una resolución de 1,9 a". Journal of Molecular Biology . 319 (5): 1097–1113. doi :10.1016/S0022-2836(02)00386-8. PMID  12079350.