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Pyrococcus furioso

Pyrococcus furiosus es unaespecie modelo de arquea heterótrofa ,estrictamente anaeróbica y extremófila . Se clasifica como hipertermófilo porque prospera mejor bajo temperaturas extremadamente altas y se destaca por tener una temperatura de crecimiento óptima de 100 °C (una temperatura que destruiría la mayoría de los organismos vivos). [1] P. furiosus pertenece al género Pyrococcus , que se encuentra más comúnmente en condiciones ambientales extremas de respiraderos hidrotermales . Es uno de los pocosorganismos procarióticos que posee enzimas que contienen tungsteno , un elemento que rara vez se encuentra en las moléculas biológicas.

Pyrococcus furiosus tiene muchas aplicaciones industriales potenciales debido a sus propiedades termoestables únicas. P. furiosus se utiliza en el proceso de amplificación de ADN mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) debido a su actividad correctora. La utilización de P. furiosus en la amplificación de ADN por PCR en lugar de la ADN polimerasa Taq utilizada tradicionalmente permite un proceso significativamente más preciso. [2] La estabilidad termodinámica de las enzimas de P. furiosus es útil en la creación de dioles para fines industriales y de laboratorio. Ciertas superóxido dismutasas que se encuentran en P. furiosus se pueden introducir en las plantas para aumentar su tolerancia en condiciones ambientalmente estresantes y, en última instancia, su supervivencia. [3]

Propiedades

Pyrococcus furiosus es una arquea reductora de azufre , heterótrofa estrictamente anaeróbica , aislada originalmente de sedimentos calentados en Vulcano, Italia, por Fiala y Stetter. Se caracteriza por su rápido tiempo de duplicación de 37 minutos en condiciones óptimas, lo que significa que cada 37 minutos el número de organismos individuales se multiplica por dos, lo que produce una curva de crecimiento exponencial. Cada organismo está rodeado por una envoltura celular compuesta de glicoproteína llamada capa S. Aparece como cocos en su mayoría regulares , lo que significa que es aproximadamente esférico, de 0,8 μm a 1,5 μm de diámetro con flagelación politrica monopolar . [1]

Una glicoproteína notable en las especies de arqueas constituye la mayor parte de la composición de los flagelos de P. furiosus . Además de usarlos potencialmente para nadar, estos flagelos se observaron en condiciones de laboratorio en uso para aplicaciones únicas, como la formación de conexiones entre células durante la fase de crecimiento estacionario. También se utilizan como conectores similares a cables para adherirse a diversas superficies sólidas, como granos de arena, en el hábitat en el que se descubrió esta especie. Esto puede conducir a la formación de estructuras similares a biopelículas microcoloniales .

P. furiosus crece entre 70 °C (158 °F ) y 103 °C (217 °F), con una temperatura óptima de 100 °C (212 °F), y entre pH 5 y 9 (con un óptimo a pH 7 ). Dado que utiliza la fermentación de carbohidratos, crece bien en extracto de levadura, maltosa , celobiosa , β-glucanos, almidón y fuentes de proteínas (triptona, peptona, caseína y extractos de carne) a través de la vía de Embden-Meyerhoff. Se trata de una gama relativamente amplia de fuentes en comparación con otras arqueas. El crecimiento es muy lento o inexistente en aminoácidos, ácidos orgánicos, alcoholes y la mayoría de los carbohidratos (incluidas la glucosa , la fructosa , la lactosa y la galactosa ). Los productos metabólicos de P. furiosus son CO 2 y H 2 . La presencia de hidrógeno inhibe gravemente su crecimiento y metabolismo; Sin embargo, este efecto puede evitarse introduciendo azufre en el entorno del organismo. En este caso, el H 2 S puede producirse a través de sus procesos metabólicos aparentemente con el propósito de desintoxicar o conservar energía, no para producir energía. Mientras que muchos otros hipertermófilos dependen del azufre para crecer, P. furiosus no. [4]

P. furiosus también se destaca por un sistema respiratorio inusual e intrigantemente simple, que obtiene energía reduciendo protones a gas hidrógeno y usa esta energía para crear un gradiente electroquímico a través de su membrana celular, impulsando así la síntesis de ATP . Este podría ser un precursor evolutivo muy temprano de los sistemas respiratorios en todos los organismos superiores actuales. [5]

Flagelos interconectados adheridos a una superficie sólida.

genómica

La secuenciación del genoma completo de Pyrococcus furiosus fue completada en 2001 por científicos del Instituto de Biotecnología de la Universidad de Maryland . El equipo de Maryland descubrió que el genoma tiene 1.908 kilobases, incluidos 2.065 marcos de lectura abiertos (ORF) que codifican proteínas. [6] Un estudio realizado en 2005 reveló 17 nuevos ORF específicos de Pyrococcus furiosus que no estaban anotados originalmente, lo que eleva el número de ORF a 2.082. [7]

Una cepa de laboratorio de Pyrococcus furiosus llamada COM1 se usa comúnmente por su "alta plasticidad" y capacidad para absorber ADN extraño, debido a su alta recombinación y actividad de transposones . Tiene 1.571 pares de bases más que el genoma NCBI al que se hace referencia y 10 secuencias de inserción (IS) más. Estos IS han desactivado 13 genes y muchos más están alterados, pero el crecimiento de la cepa aún es comparable al de su cepa original. [8]

enzimas

Alcohol deshidrogenasas

Pyrococcus furiosus posee varias alcohol deshidrogenasas (ADH) altamente termoestables: la AdhA de cadena corta, la AdhB que contiene hierro, la AdhC que contiene zinc y más. [9] [10] Cada uno de estos ADH depende de NADP y sirve para reponer NADP + utilizando el NADPH producido por la fermentación para reducir los aldehídos a alcoholes. Los aldehídos también son productos de la fermentación y son tóxicos para la célula, por lo que es necesaria su eliminación. Los ADH de P. furiosus suelen tener una amplia gama de sustratos de aldehído que pueden utilizar y también pueden catalizar la reacción inversa (oxidación de alcoholes) utilizando etanol, 1,3-propanodiol y otros alcoholes como sustrato. Como ocurre con la mayoría de las enzimas de las arqueas, las ADH son sensibles al oxígeno. [11]

Oxidorreductasas

"Pyrococcus furiosus tiene cinco oxidorreductasas únicas que contienen tungsteno que forman parte de su vía glicolítica independiente de NAD(P)H" . Estas enzimas funcionan de manera óptima por encima de los 90 °C. El primero en ser descubierto fue la aldehído ferredoxina oxidorreductasa, o AOR, que utiliza tungsteno, azufre y hierro para catalizar la oxidación de aldehídos y reducir la ferredoxina (siendo éste el portador de electrones en lugar de NAD(P)H). [12] Como este fue el primero, se dice que todas las oxidorreductasas que contienen tungsteno son parte de la familia AOR. La siguiente oxidorreductasa descubierta fue la gliceraldehído-3-fosfato ferredoxina oxidorreductasa, o GAPOR, que utiliza tungsteno y hierro para catalizar la oxidación específicamente de gliceraldehído-3-fosfato. GAPOR solo funciona en condiciones anaeróbicas, como ocurre con muchas enzimas en P. furiosus . [13] Otra oxidorreductasa es la formaldehído ferredoxina oxidorreductasa, o FOR, que cataliza la oxidación de aldehídos en ácidos carboxílicos . Esta enzima utiliza cuatro tipos de cofactores: tungsteno, hierro, azufre y calcio. [14] La siguiente oxidorreductasa, WOR4, no ayuda a oxidar los aldehídos, sino que tiene un papel en la reducción del azufre elemental (S 0 ) a H 2 S. Utiliza los mismos cofactores que FOR y solo se encuentra en P. Células furiosas que se cultivan en presencia de azufre elemental. [15] La quinta y última oxidorreductasa se denomina WOR5 y tiene una amplia especificidad por especies de aldehídos aromáticos y alifáticos . [dieciséis]

Una especie de oxidorreductasa en P. furiosus que no contiene tungsteno es la piruvato ferredoxina oxidorreductasa, o POR, que cataliza el paso final de la vía glucolítica. Es posible que POR sea un antepasado de las piruvato oxidorreductasas mesófilas. [17] También existe la indolpiruvato ferredoxina oxidorreductasa, o IOR, que utiliza hierro y azufre para catalizar la " descarboxilación oxidativa de los arilpiruvatos ". [18]

Usos

Diagrama de cinta de polimerasa Pfu.

En la amplificación del ADN

Se descubrió una ADN polimerasa en P. furiosus que se pensaba que no estaba relacionada con otras ADN polimerasas conocidas, ya que no se encontró ninguna homología de secuencia significativa entre sus dos proteínas y las de otras ADN polimerasas conocidas. Esta ADN polimerasa tiene una fuerte actividad exonucleolítica de 3' a 5' y una preferencia de cebador de plantilla que es característica de una ADN polimerasa replicativa, lo que lleva a los científicos a creer que esta enzima puede ser la ADN polimerasa replicativa de P. furiosus . [19] Desde entonces se ha colocado en la familia B de polimerasas, la misma familia que la ADN polimerasa II. También se ha resuelto su estructura, que parece bastante típica de la polimerasa B. [20] [21]

Dado que las enzimas de P. furiosus son extremadamente termoestables, la ADN polimerasa de P. furiosus (también conocida como ADN polimerasa Pfu ) se puede utilizar en el proceso de amplificación de ADN por reacción en cadena de la polimerasa (PCR). El proceso de PCR debe utilizar una ADN polimerasa termoestable para la amplificación in vitro automatizada y la ADN polimerasa Taq utilizada originalmente . [22] Sin embargo, dado que la ADN polimerasa Taq purificada carece de actividad exonucleasa (corrección), no puede eliminar los nucleótidos no coincidentes . Los investigadores descubrieron a principios de la década de 1990 que la ADN polimerasa Pfu de P. furiosus en realidad posee una actividad exonucleasa requerida de 3' a 5' que permite la eliminación de errores. Las pruebas posteriores que utilizaron la ADN polimerasa Pfu en el proceso de PCR revelaron una mejora de más de diez veces con respecto a la precisión del uso de la ADN polimerasa Taq . [2]

En la producción de dioles.

Una aplicación práctica de P. furiosus es la producción de dioles para diversos procesos industriales. Puede ser posible utilizar las enzimas de P. furiosus para aplicaciones en industrias como la alimentaria, la farmacéutica y la química fina en las que las alcohol deshidrogenasas son necesarias en la producción de dioles enantio y diastereoisómeros puros. Las enzimas de hipertermófilos como P. furiosus pueden funcionar bien en procesos de laboratorio porque son relativamente resistentes: generalmente funcionan bien a altas temperaturas y altas presiones, así como en altas concentraciones de sustancias químicas.

Para que las enzimas de origen natural sean útiles en el laboratorio, a menudo es necesario alterar su composición genética. De lo contrario, las enzimas naturales pueden no ser eficientes en un procedimiento inducido artificialmente. Aunque las enzimas de P. furiosus funcionan de manera óptima a altas temperaturas, es posible que los científicos no quieran necesariamente realizar un procedimiento a 100 °C (212 °F). En consecuencia, en este caso, la enzima específica AdhA se tomó de P. furiosus y se sometió a varias mutaciones en un laboratorio para obtener una alcohol deshidrogenasa adecuada para su uso en procesos artificiales. Esto permitió a los científicos obtener una enzima mutante que podría funcionar eficientemente a temperaturas más bajas y mantener la productividad. [23]

en plantas

La expresión de un determinado gen que se encuentra en P. furiosus en las plantas también puede hacerlas más duraderas al aumentar su tolerancia al calor. En respuesta al estrés ambiental, como la exposición al calor, las plantas producen especies reactivas de oxígeno que pueden provocar la muerte celular. Si se eliminan estos radicales libres, se puede retrasar la muerte celular. Las enzimas de las plantas llamadas superóxido dismutasas eliminan los radicales aniónicos superóxido de las células, pero aumentar la cantidad y la actividad de estas enzimas es difícil y no es la forma más eficiente de mejorar la durabilidad de las plantas. [24]

Introduciendo las superóxido reductasas de P. furiosus en las plantas, se pueden reducir rápidamente los niveles de O 2 . [ cita necesaria ] Los científicos probaron este método utilizando la planta Arabidopsis thaliana . Como resultado de este procedimiento, la muerte celular en las plantas ocurre con menos frecuencia, lo que resulta en una reducción en la severidad de las respuestas al estrés ambiental. Esto mejora la supervivencia de las plantas, haciéndolas más resistentes al estrés lumínico, químico y térmico.

Este estudio podría utilizarse potencialmente como punto de partida para crear plantas que podrían sobrevivir en climas más extremos en otros planetas como Marte. Al introducir más enzimas de extremófilos como P. furiosus en otras especies de plantas, puede ser posible crear especies increíblemente resistentes. [3]

En la investigación de aminoácidos.

Al comparar P. furiosus con una especie relacionada de arquea, Pyrococcus abyssi , los científicos han intentado determinar la correlación entre ciertos aminoácidos y la afinidad por ciertas presiones en diferentes especies. P. furiosus no es barófilo , mientras que P. abyssi sí lo es, lo que significa que funciona de manera óptima a presiones muy altas. El uso de dos especies de arqueas hipertermófilas disminuye la posibilidad de desviaciones relacionadas con la temperatura del ambiente, reduciendo esencialmente las variables en el diseño experimental. [25]

Además de proporcionar información sobre la barofilicidad de ciertos aminoácidos, el experimento también proporcionó información valiosa sobre el origen del código genético y sus influencias organizativas. Se descubrió que la mayoría de los aminoácidos que determinaban la barofilicidad también eran importantes en la organización del código genético. También se descubrió que los aminoácidos más polares y los aminoácidos más pequeños tenían más probabilidades de ser barófilos. A través de la comparación de estas dos arqueas, se llegó a la conclusión de que el código genético probablemente estaba estructurado bajo una alta presión hidrostática, y que la presión hidrostática era un factor más influyente en la determinación del código genético que la temperatura. [25]

Historia

Pyrococcus furiosus se aisló originalmente anaeróbicamente de sedimentos marinos geotérmicos con temperaturas entre 90 °C (194 °F) y 100 °C (212 °F) recolectados en la playa de Porto Levante, Isla Vulcano , Italia. Fue descrito por primera vez por Karl Stetter de la Universidad de Ratisbona en Alemania y su colega Gerhard Fiala. Pyrococcus furiosus en realidad originó un nuevo género de arqueas con su descubrimiento relativamente reciente en 1986. [1]

El nombre Pyrococcus significa "bola de fuego" en griego , para referirse a la forma redonda del extremófilo y su capacidad de crecer a temperaturas de alrededor de 100 grados centígrados. El nombre de la especie furiosus significa "correr" en latín y se refiere al tiempo de duplicación del extremófilo y a su rápida natación. [1]

Ver también

Referencias

  1. ^ abcd Fiala, Gerhard; Stetter, Karl O (1986). " Pyrococcus furiosus sp. nov. Representa un nuevo género de arqueobacterias heterótrofas marinas que crecen de manera óptima a 100 °C". Archivos de Microbiología . 145 (1): 56–61. Código bibliográfico : 1986ArMic.145...56F. doi :10.1007/BF00413027. S2CID  41589578.
  2. ^ ab Lundberg, Kelly S.; Zapatero, Dan D.; Adams, Michael WW; Breve, Jay M.; Sorge, José A.; Mathur, Eric J. (diciembre de 1991). "Amplificación de alta fidelidad utilizando una ADN polimerasa termoestable aislada de Pyrococcus furiosus". Gen.108 (1): 1–6. doi :10.1016/0378-1119(91)90480-y. ISSN  0378-1119. PMID  1761218.
  3. ^ ab Karen Miller (5 de agosto de 2005). "Prozac para plantas". Centro Nacional de Datos de Ciencias Espaciales . NASA. Archivado desde el original el 8 de agosto de 2005.
  4. ^ Silva, Pedro J.; Ban, Eyke CD van den; Wassink, Hans; Haaker, Huub; Castro, Baltazar de; Robb, Frank T.; Hagen, Wilfred R. (2000). "Enzimas del metabolismo del hidrógeno en Pyrococcus furiosus". Revista europea de bioquímica . 267 (22): 6541–6551. doi :10.1046/j.1432-1327.2000.01745.x. ISSN  0014-2956. PMID  11054105.
  5. ^ Sapra, R; Bagramyan, K; Adams, MWW (2003). "Un sistema simple de conservación de energía: reducción de protones acoplada a translocación de protones". Procedimientos de la Academia Nacional de Ciencias . 100 (13): 7545–50. Código Bib : 2003PNAS..100.7545S. doi : 10.1073/pnas.1331436100 . PMC 164623 . PMID  12792025. 
  6. ^ Robb, Frank T; Maeder, Dennis L; Marrón, James R; DiRuggiero, Jocelyne; Tocón, Mark D; Sí, Raymond K; Weiss, Robert B; Dunn, Dianne M (2001), "Secuencia genómica del hipertermófilo, Pyrococcus furiosus: implicaciones para la fisiología y la enzimología", Enzimas hipertermófilas, parte A, Métodos en enzimología, vol. 330, Elsevier, págs. 134-157, doi :10.1016/s0076-6879(01)30372-5, ISBN 9780121822316, PMID  11210495 , consultado el 6 de octubre de 2022
  7. ^ W., Poole, Farris L. Gerwe, Brian A. Hopkins, Robert C. Schut, Gerrit J. Weinberg, Michael V. Jenney, Francis E. Adams, Michael W. Definición de genes en el genoma del archaeon hipertermófilo Pyrococcus furiosus : Implicaciones para todos los genomas microbianos†. Sociedad Estadounidense de Microbiología. OCLC  678564723.{{cite book}}: Mantenimiento CS1: varios nombres: lista de autores ( enlace )
  8. ^ Bridger, Stephanie L.; Lancaster, W. Andrés; Poole, Farris L.; Schut, Gerrit J.; Adams, Michael WW (agosto de 2012). "La secuenciación del genoma de una cepa de Pyrococcus furiosus genéticamente manejable revela un genoma altamente dinámico". Revista de Bacteriología . 194 (15): 4097–4106. doi :10.1128/jb.00439-12. ISSN  0021-9193. PMC 3416535 . PMID  22636780. 
  9. ^ van der Oost, Juan; Voorhorst, Wilfried GB; Kengen, Servé WM; Geerling, y CM; Wittenhorst, Vicente; Gueguen, Yannick; de Vos, Willem M. (15 de mayo de 2001). "Caracterización genética y bioquímica de una alcohol deshidrogenasa de cadena corta del arqueón hipertermófilo Pyrococcus furiosus". Revista europea de bioquímica . 268 (10): 3062–3068. doi : 10.1046/j.1432-1327.2001.02201.x . ISSN  0014-2956. PMID  11358525.
  10. ^ Kube, Jürgen; Brokamp, ​​cristiano; Machielsen, Ronnie; van der Oost, John; Markl, Herbert (7 de febrero de 2006). "Influencia de la temperatura en la producción de una alcohol deshidrogenasa termoactiva de arqueas de Pyrococcus furiosus con Escherichia coli recombinante". Extremófilos . 10 (3): 221–227. doi :10.1007/s00792-005-0490-z. ISSN  1431-0651. PMID  16463078. S2CID  28865345.
  11. ^ Ma, Kesen, Adams, Michael WW (15 de febrero de 1999). "Una alcohol deshidrogenasa inusual, sensible al oxígeno, que contiene hierro y zinc, del Archaeon hipertermófilo Pyrococcus furiosus". Revista de Bacteriología . 181 (4): 1163-1170. doi :10.1128/JB.181.4.1163-1170.1999. PMC 93493 . PMID  9973342. {{cite journal}}: Mantenimiento CS1: varios nombres: lista de autores ( enlace )
  12. ^ Makund, S.; Adams, MWW (agosto de 1991). "La nueva proteína tungsteno-hierro-azufre de la arquebacteria hipertermófila, Pyrococcus furiosus, es una aldehído ferredoxina oxidorreductasa: evidencia de su participación en una vía glucolítica única". Revista de bioquímica inorgánica . 43 (2–3): 257. doi :10.1016/0162-0134(91)84247-7. ISSN  0162-0134.
  13. ^ Mukund, Swarnalatha; Adams, Michael WW (abril de 1995). "Gliceraldehído-3-fosfato ferredoxina oxidorreductasa, una nueva enzima que contiene tungsteno con un papel glicolítico potencial en el Archaeon hipertermófilo Pyrococcus furiosus". Revista de Química Biológica . 270 (15): 8389–8392. doi : 10.1074/jbc.270.15.8389 . ISSN  0021-9258. PMID  7721730.
  14. ^ Hu, Yonglin; Faham, Salem; Roy, Roopali; Adams, Michael WW; Rees, Douglas C (febrero de 1999). "Formaldehído ferredoxina oxidorreductasa de Pyrococcus furiosus: la estructura cristalina de resolución de 1,85 Å y sus implicaciones mecanísticas 1 1 Editado por IA Wilson". Revista de biología molecular . 286 (3): 899–914. doi :10.1006/jmbi.1998.2488. PMID  10024458.
  15. ^ Roy, Roopali; Adams, Michael WW (15 de diciembre de 2002). "Caracterización de una cuarta enzima que contiene tungsteno del Archaeon hipertermófilo Pyrococcus furiosus". Revista de Bacteriología . 184 (24): 6952–6956. doi :10.1128/JB.184.24.6952-6956.2002. ISSN  0021-9193. PMC 135473 . PMID  12446645. 
  16. ^ Bevers, Loes E.; Bol, Emilio; Hagedoorn, Peter-León; Hagen, Wilfred R. (15 de octubre de 2005). "WOR5, una nueva aldehído oxidorreductasa que contiene tungsteno de Pyrococcus furiosus con una amplia especificidad de sustrato". Revista de Bacteriología . 187 (20): 7056–7061. doi :10.1128/JB.187.20.7056-7061.2005. ISSN  0021-9193. PMC 1251609 . PMID  16199576. 
  17. ^ Culpa, Jenny M.; Adams, Michael WW (enero de 1993). "Purificación y caracterización de piruvato ferredoxina oxidorreductasa de la arqueona hipertermófila Pyrococcus furiosus". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Estructura de proteínas y enzimología molecular . 1161 (1): 19–27. doi :10.1016/0167-4838(93)90190-3. PMID  8380721.
  18. ^ Mai, X.; Adams, MW (junio de 1994). "Indolpiruvato ferredoxina oxidorreductasa de la arqueona hipertermófila Pyrococcus furiosus. Una nueva enzima implicada en la fermentación de péptidos". Revista de Química Biológica . 269 ​​(24): 16726–16732. doi : 10.1016/S0021-9258(19)89451-6 . PMID  8206994.
  19. ^ Uemori, Takashi; Sato, Yoshimi; Kato, Ikunoshin; Doi, Hirofumi; Ishino, Yoshizumi (1997). "Una nueva ADN polimerasa en la arqueona hipertermófila, Pyrococcus furiosus: clonación, expresión y caracterización de genes". De genes a células . 2 (8): 499–512. doi : 10.1046/j.1365-2443.1997.1380336.x . PMID  9348040.
  20. ^ Ishino, S; Ishino, Y (2014). "ADN polimerasas como reactivos útiles para la biotecnología: la historia del desarrollo de la investigación en este campo". Fronteras en Microbiología . 5 : 465. doi : 10.3389/fmicb.2014.00465 . PMC 4148896 . PMID  25221550. 
  21. ^ Kim, Suhng Wook; Kim, Dong-Reino Unido; Kim, Jin Kwang; Kang, Lin Woo; Cho, Hyun-Soo (mayo de 2008). "Estructura cristalina de Pfu, la ADN polimerasa de alta fidelidad de Pyrococcus furiosus". Revista Internacional de Macromoléculas Biológicas . 42 (4): 356–361. doi :10.1016/j.ijbiomac.2008.01.010. PMID  18355915.
  22. ^ Saiki, RK; Gelfand, DH; Stoffel, S; Scharf, SJ; Higuchi, R; Cuerno, GT; Mullis, KB; Erlich, HA (29 de enero de 1988). "Amplificación enzimática de ADN dirigida por cebador con una ADN polimerasa termoestable". Ciencia . 239 (4839): 487–491. doi : 10.1126/ciencia.239.4839.487. ISSN  0036-8075. PMID  2448875.
  23. ^ Machielsen, Ronnie; Leferink, Nicole G. H; Hendriks, Annemarie; Brouns, Stan J. J; Hennemann, Hans-Georg; Dauβmann, Thomas; Van Der Oost, John (2008). "Evolución de laboratorio de la alcohol deshidrogenasa de Pyrococcus furiosus para mejorar la producción de (2S, 5S) -hexanodiol a temperaturas moderadas". Extremófilos . 12 (4): 587–94. doi :10.1007/s00792-008-0164-8. PMC 2467505 . PMID  18452026. 
  24. ^ Soy, YJ; Ji, M; Lee, A; Killens, R; Grunden, AM; Boss, WF (2009). "La expresión de superóxido reductasa de Pyrococcus furiosus en Arabidopsis mejora la tolerancia al calor". Fisiología de las plantas . 151 (2): 893–904. doi : 10.1104/pp.109.145409. PMC 2754621 . PMID  19684226. 
  25. ^ ab Di Giulio, Massimo (2005). "Una comparación de proteínas de Pyrococcus furiosus y Pyrococcus abyssi: barofilia en las propiedades fisicoquímicas de los aminoácidos y en el código genético". Gen.346 : 1–6. doi :10.1016/j.gene.2004.10.008. PMID  15716096.

Otras lecturas

enlaces externos