stringtranslate.com

Segregación cromosómica

La segregación cromosómica es el proceso en eucariotas por el cual dos cromátidas hermanas formadas como consecuencia de la replicación del ADN , o cromosomas homólogos apareados , se separan entre sí y migran a polos opuestos del núcleo . Este proceso de segregación ocurre tanto durante la mitosis como durante la meiosis . La segregación cromosómica también ocurre en procariotas . Sin embargo, a diferencia de la segregación cromosómica eucariota, la replicación y la segregación no están separadas temporalmente. En cambio, la segregación ocurre progresivamente después de la replicación. [1]

Segregación de cromátidas mitóticas

La mitosis divide los cromosomas en el núcleo de una célula .

Durante la mitosis, la segregación de cromosomas ocurre rutinariamente como un paso en la división celular (ver diagrama de mitosis). Como se indica en el diagrama de mitosis, la mitosis es precedida por una ronda de replicación de ADN, de modo que cada cromosoma forma dos copias llamadas cromátidas . Estas cromátidas se separan en polos opuestos, un proceso facilitado por un complejo proteico conocido como cohesina . Tras la segregación adecuada, un conjunto completo de cromátidas termina en cada uno de los dos núcleos, y cuando se completa la división celular, cada copia de ADN antes denominada cromátida ahora se llama cromosoma.

Segregación de cromátidas y cromosomas meióticos

La segregación cromosómica ocurre en dos etapas separadas durante la meiosis llamadas anafase I y anafase II (ver diagrama de meiosis). En una célula diploide hay dos conjuntos de cromosomas homólogos de diferente origen parental (por ejemplo, un conjunto paterno y uno materno). Durante la fase de la meiosis etiquetada como "interfase s" en el diagrama de meiosis hay una ronda de replicación del ADN, de modo que cada uno de los cromosomas inicialmente presentes ahora está compuesto por dos copias llamadas cromátidas . Estos cromosomas (cromátidas pareadas) luego se aparean con el cromosoma homólogo (también cromátidas pareadas) presente en el mismo núcleo (ver profase I en el diagrama de meiosis). El proceso de alineación de cromosomas homólogos pareados se llama sinapsis (ver Sinapsis ). Durante la sinapsis, generalmente ocurre la recombinación genética. Algunos de los eventos de recombinación ocurren por entrecruzamiento (que implica un intercambio físico entre dos cromátidas), pero la mayoría de los eventos de recombinación implican intercambio de información, pero no intercambio físico entre dos cromátidas (consulte la hibridación de cadenas dependiente de síntesis (SDSA) ). Después de la recombinación, se produce la segregación cromosómica, como lo indican las etapas metafase I y anafase I en el diagrama de la meiosis.

Los distintos pares de cromosomas se segregan de forma independiente, un proceso denominado “reparto independiente de cromosomas no homólogos” . Este proceso hace que cada gameto contenga normalmente una mezcla de cromosomas de ambos progenitores originales.

La segregación cromosómica inadecuada (véase no disyunción , disomía ) puede dar lugar a gametos aneuploides que tengan muy pocos o demasiados cromosomas.

La segunda etapa en la que se produce la segregación durante la meiosis es la profase II (véase el diagrama de la meiosis). Durante esta etapa, la segregación se produce mediante un proceso similar al de la mitosis, excepto que en este caso la profase II no está precedida por una ronda de replicación del ADN. Así, las dos cromátidas que componen cada cromosoma se separan en núcleos diferentes , de modo que cada núcleo obtiene un único conjunto de cromátidas (ahora llamadas cromosomas) y cada núcleo queda incluido en un gameto haploide (véase las etapas posteriores a la profase II en el diagrama de la meiosis). Este proceso de segregación también se ve facilitado por la cohesina . El fracaso de la segregación adecuada durante la profase II también puede dar lugar a gametos aneuploides. Los gametos aneuploides pueden sufrir fecundación para formar cigotos aneuploides y, por tanto, a graves consecuencias adversas para la progenie.

Los cruces facilitan la segregación, pero no son esenciales

Diagrama de las fases meióticas.
Un modelo actual de recombinación meiótica, iniciada por una rotura o brecha de doble cadena, seguida de un apareamiento con un cromosoma homólogo y una invasión de la cadena para iniciar el proceso de reparación recombinatoria. La reparación de la brecha puede conducir al entrecruzamiento (CO) o no entrecruzamiento (NCO) de las regiones flanqueantes. Se cree que la recombinación CO ocurre mediante el modelo de unión doble de Holliday (DHJ), ilustrado a la derecha, arriba. Se cree que los recombinantes NCO ocurren principalmente mediante el modelo de anexión de cadena dependiente de síntesis (SDSA), ilustrado a la izquierda, arriba. La mayoría de los eventos de recombinación parecen ser del tipo SDSA.

La recombinación por cruce cromosómico meiótico (CO) facilita la segregación adecuada de los cromosomas homólogos . Esto se debe a que, al final de la profase meiótica I , la recombinación CO proporciona un enlace físico que mantiene unidos los pares de cromosomas homólogos. Estos enlaces se establecen mediante quiasmas , que son las manifestaciones citológicas de la recombinación CO. Junto con el enlace de cohesión entre cromátidas hermanas , la recombinación CO puede ayudar a asegurar la segregación ordenada de los cromosomas homólogos emparejados a polos opuestos. En apoyo de esto, un estudio de aneuploidía en espermatozoides individuales mediante secuenciación del genoma completo encontró que, en promedio, los espermatozoides humanos con autosomas aneuploides exhiben significativamente menos entrecruzamientos que las células normales. [2] Después de que se completa la primera segregación cromosómica en la meiosis I , hay más segregación cromosómica durante la segunda división ecuacional de la meiosis II . Tanto la segregación inicial adecuada de los cromosomas en la profase I como la siguiente segregación cromosómica durante la división ecuacional en la meiosis II son necesarias para generar gametos con la cantidad correcta de cromosomas.

Los recombinantes de CO se producen mediante un proceso que implica la formación y resolución de intermediarios de unión de Holliday . Como se indica en la figura titulada "Un modelo actual de recombinación meiótica", la formación de entrecruzamientos meióticos puede iniciarse mediante una rotura de doble cadena (DSB). La introducción de DSB en el ADN a menudo emplea la proteína SPO11 similar a la topoisomerasa . [3] La recombinación de CO también puede iniciarse por fuentes externas de daño al ADN, como la irradiación con rayos X, [4] o fuentes internas. [5] [6]

Hay evidencia de que la recombinación de CO facilita la segregación cromosómica meiótica. [2] Sin embargo, otros estudios indican que los quiasmas , aunque apoyan, no son esenciales para la segregación cromosómica meiótica. La levadura en ciernes Saccharomyces cerevisiae es un organismo modelo utilizado para estudiar la recombinación meiótica. Se encontró que los mutantes de S. cerevisiae defectuosos en la recombinación de CO a nivel de resolución de la unión de Holliday experimentaban eficientemente una segregación cromosómica adecuada. La vía que produce la mayoría de CO en S. cerevisiae , y posiblemente en mamíferos, involucra un complejo de proteínas que incluye el heterodímero MLH1 - MLH3 (llamado MutL gamma). [7] MLH1-MLH3 se une preferentemente a las uniones de Holliday. [8] Es una endonucleasa que realiza roturas de cadena simple en ADN bicatenario superenrollado , [8] [9] y promueve la formación de recombinantes de CO. [10] Los mutantes dobles eliminados tanto de MLH3 (vía principal) como de MMS4 (que es necesaria para una vía de resolución de la unión de Holliday menor) mostraron una reducción drástica del entrecruzamiento en comparación con el tipo salvaje (reducción de 6 a 17 veces); sin embargo, la viabilidad de las esporas fue razonablemente alta (62%) y la disyunción cromosómica pareció mayoritariamente funcional. [10]

Las proteínas MSH4 y MSH5 forman una estructura hetero-oligomérica ( heterodímero ) en S. cerevisiae y humanos. [11] [12] [13] En S. cerevisiae , MSH4 y MSH5 actúan específicamente para facilitar los entrecruzamientos entre cromosomas homólogos durante la meiosis. [11] El complejo MSH4/MSH5 se une y estabiliza las uniones dobles de Holliday y promueve su resolución en productos de entrecruzamiento. Un mutante hipomórfico MSH4 (parcialmente funcional) de S. cerevisiae mostró una reducción del 30% en todo el genoma en los números de entrecruzamiento y una gran cantidad de meiosis con cromosomas sin intercambio. [14] Sin embargo, este mutante dio lugar a patrones de viabilidad de esporas que sugieren que la segregación de cromosomas sin intercambio ocurrió de manera eficiente. [14] Por lo tanto, parece que la recombinación de CO facilita la segregación cromosómica adecuada durante la meiosis en S. cerevisiae , pero no es esencial.

La levadura de fisión Schizosaccharomyces pombe tiene la capacidad de segregar cromosomas homólogos en ausencia de recombinación meiótica (segregación aquiasmática). [15] Esta capacidad depende del motor de microtúbulos dineína que regula el movimiento de los cromosomas hacia los polos del huso meiótico .

Véase también

Referencias

  1. ^ Nielsen, HJ; Youngren, B.; Hansen, FG; Austin, S. (1 de diciembre de 2007). "Dinámica de la segregación cromosómica de Escherichia coli durante la replicación multihorquilla". Journal of Bacteriology . 189 (23): 8660–8666. doi :10.1128/JB.01212-07. ISSN  0021-9193. PMC  2168957 . PMID  17905986.
  2. ^ ab Lu S, Zong C, Fan W, Yang M, Li J, Chapman AR, Zhu P, Hu X, Xu L, Yan L, Bai F, Qiao J, Tang F, Li R, Xie XS (2012). "Investigación de la recombinación meiótica y la aneuploidía de células espermáticas individuales mediante secuenciación del genoma completo". Science . 338 (6114): 1627–30. Bibcode :2012Sci...338.1627L. doi :10.1126/science.1229112. PMC 3590491 . PMID  23258895. 
  3. ^ Sansam CL, Pezza RJ (2015). "Conexión por rotura y reparación: mecanismos de intercambio de cadenas de ADN en la recombinación meiótica". FEBS J . 282 (13): 2444–57. doi :10.1111/febs.13317. PMC 4573575 . PMID  25953379. 
  4. ^ Dernburg AF, McDonald K, Moulder G, Barstead R, Dresser M, Villeneuve AM (1998). "La recombinación meiótica en C. elegans se inicia mediante un mecanismo conservado y es prescindible para la sinapsis de cromosomas homólogos". Cell . 94 (3): 387–98. doi : 10.1016/s0092-8674(00)81481-6 . PMID  9708740. S2CID  10198891.
  5. ^ Farah JA, Cromie G, Davis L, Steiner WW, Smith GR (2005). "Activación de una vía alternativa, independiente de rec12 (spo11) de recombinación meiótica de levadura de fisión en ausencia de una endonucleasa de solapa de ADN". Genética . 171 (4): 1499–511. doi :10.1534/genetics.105.046821. PMC 1456079 . PMID  16118186. 
  6. ^ Pauklin S, Burkert JS, Martin J, Osman F, Weller S, Boulton SJ, Whitby MC, Petersen-Mahrt SK (2009). "Inducción alternativa de la recombinación meiótica a partir de lesiones de una sola base de las desaminasas del ADN". Genética . 182 (1): 41–54. doi :10.1534/genetics.109.101683. PMC 2674839 . PMID  19237686. 
  7. ^ Zakharyevich K, Tang S, Ma Y, Hunter N (2012). "La delineación de las vías de resolución de moléculas conjuntas en la meiosis identifica una resolvasa específica de cruce". Cell . 149 (2): 334–47. doi :10.1016/j.cell.2012.03.023. PMC 3377385 . PMID  22500800. 
  8. ^ ab Ranjha L, Anand R, Cejka P (2014). "El heterodímero Mlh1-Mlh3 de Saccharomyces cerevisiae es una endonucleasa que se une preferentemente a las uniones de Holliday". J. Biol. Chem . 289 (9): 5674–86. doi : 10.1074/jbc.M113.533810 . PMC 3937642. PMID  24443562 . 
  9. ^ Rogacheva MV, Manhart CM, Chen C, Guarne A, Surtees J, Alani E (2014). "Mlh1-Mlh3, un factor de reparación de errores de emparejamiento y cruce meiótico de ADN, es una endonucleasa estimulada por Msh2-Msh3". J. Biol. Chem . 289 (9): 5664–73. doi : 10.1074/jbc.M113.534644 . PMC 3937641. PMID  24403070 . 
  10. ^ ab Sonntag Brown M, Lim E, Chen C, Nishant KT, Alani E (2013). "El análisis genético de las mutaciones mlh3 revela interacciones entre los factores que promueven el entrecruzamiento durante la meiosis en la levadura de panadería". G3: Genes, Genomas, Genética . 3 (1): 9–22. doi :10.1534/g3.112.004622. PMC 3538346 . PMID  23316435. 
  11. ^ ab Pochart P, Woltering D, Hollingsworth NM (1997). "Propiedades conservadas entre homólogos de MutS funcionalmente distintos en levadura". J. Biol. Chem . 272 ​​(48): 30345–9. doi : 10.1074/jbc.272.48.30345 . PMID  9374523.
  12. ^ Winand NJ, Panzer JA, Kolodner RD (1998). "Clonación y caracterización de los homólogos humanos y de Caenorhabditis elegans del gen MSH5 de Saccharomyces cerevisiae". Genómica . 53 (1): 69–80. doi : 10.1006/geno.1998.5447 . PMID  9787078.
  13. ^ Bocker T, Barusevicius A, Snowden T, Rasio D, Guerrette S, Robbins D, Schmidt C, Burczak J, Croce CM, Copeland T, Kovatich AJ, Fishel R (1999). "hMSH5: un homólogo de MutS humano que forma un nuevo heterodímero con hMSH4 y se expresa durante la espermatogénesis". Cancer Res . 59 (4): 816–22. PMID  10029069.
  14. ^ ab Krishnaprasad GN, Anand MT, Lin G, Tekkedil MM, Steinmetz LM, Nishant KT (2015). "La variación en las frecuencias de cruce perturba la seguridad del cruce sin afectar la segregación cromosómica meiótica en Saccharomyces cerevisiae". Genética . 199 (2): 399–412. doi :10.1534/genetics.114.172320. PMC 4317650 . PMID  25467183. 
  15. ^ Davis L, Smith GR (2005). "La dineína promueve la segregación de aquiasmatos en Schizosaccharomyces pombe". Genética . 170 (2): 581–90. doi :10.1534/genetics.104.040253. PMC 1450395 . PMID  15802518.