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Nucleasa S1

La nucleasa S1 ( EC 3.1.30.1) es una enzima endonucleasa que divide el ADN monocatenario (ADNss) y el ARN en oligonucleótidos o mononucleótidos. Esta enzima cataliza la siguiente reacción química.

Escisión endonucleolítica a productos finales de 5'-fosfomononucleótido y 5'-fosfooligonucleótido

Aunque su sustrato principal es monocatenario, ocasionalmente también puede introducir roturas monocatenarias en ADN o ARN bicatenario, o híbridos ADN-ARN. La enzima hidroliza regiones monocatenarias del ADN dúplex, como bucles o espacios. También escinde una hebra opuesta a una muesca en la hebra complementaria. No tiene especificidad de secuencia.

Las versiones más conocidas incluyen S1 que se encuentra en Aspergillus oryzae (moho koji amarillo) y Nuclease P1 que se encuentra en Penicillium citrinum . Los miembros de la familia S1/P1 se encuentran tanto en procariotas como en eucariotas y se cree que están asociados con la muerte celular programada y también con la diferenciación de tejidos. Además, se secretan extracelularmente, es decir, fuera de la célula. Su función y características distintivas significan que tienen potencial para ser explotados en el campo de la biotecnología .

Nomenclatura

Los nombres alternativos incluyen endonucleasa S1 (Aspergillus), endonucleasa nucleada monocatenaria, desoxirribonucleasa S1, desoxirribonucleasa S1, nucleasa S1 de Aspergillus, endonucleasa específica monocatenaria de Neurospora crassa, nucleasa S1, endodesoxirribonucleasa monocatenaria, endonucleasa específica de ADN monocatenario, monocatenaria -endodesoxirribonucleasa específica de cadena, ADNasa específica de cadena única y nucleasa S1 de Aspergillus oryzae.

Estructura

La mayoría de las nucleasas con actividad EC 3.1.30.1 son homólogas entre sí en una familia de dominios de proteínas llamada Nucleasa S1/P1. [1]

Los miembros de esta familia, incluidos P1 y S1, son glicoproteínas con características muy distintivas, son:

Estos requisitos y características distintivas son responsables de la eficacia de la función. Es una enzima y estas cuatro características son necesarias para la funcionalidad de la enzima. Los tres iones de zinc son vitales para la catálisis. Los dos primeros zinces activan el agua atacante en la hidrólisis, mientras que el tercer ion zinc estabiliza el oxianión saliente . [2] [3]

Propiedades

Aspergillus nucleasa S1 es una proteína monomérica de un peso molecular de 38 kilodalton. Requiere Zn 2+ como cofactor y es relativamente estable frente a agentes desnaturalizantes como urea, SDS o formaldehído. El pH óptimo para su actividad se sitúa entre 4-4,5. Se sabe que la nucleasa S1 de Aspergillus se inhibe algo con ATP 50 μM y casi por completo con ATP 1 mM. [4] [5] Se ha demostrado una inhibición del 50 % con dAMP 85 μM y dATP 1 μM, pero sin inhibición con AMPc. [6]

Mecanismo

Este dominio de proteína nucleasa dependiente de zinc produce nucleótidos 5' y escinde grupos fosfato de nucleótidos 3'. Además, la cadena lateral del triptófano ubicada en la cavidad del sitio activo y su columna vertebral apoyan la acción de los iones de zinc. Estos mecanismos son esenciales para la función catalítica de la enzima. [1]

Usos

Aspergillus nucleasa S1 se utiliza en el laboratorio como reactivo en ensayos de protección de nucleasas . En biología molecular, se utiliza para eliminar colas monocatenarias de moléculas de ADN para crear moléculas de extremos romos y abrir bucles en forma de horquilla generados durante la síntesis de ADNc bicatenario.

Ver también

Referencias

  1. ^ ab Balabanova LA, Gafurov YM, Pivkin MV, Terentyeva NA, Likhatskaya GN, Rasskazov VA (febrero de 2012). "Una nucleasa extracelular tipo S1 del hongo marino Penicillium melinii". Biotecnología Marina . 14 (1): 87–95. Código Bib : 2012MarBt..14...87B. doi :10.1007/s10126-011-9392-5. PMID  21647618. S2CID  17856850.
  2. ^ Podzimek T, Matoušek J, Lipovová P, Poučková P, Spiwok V, Santrůček J (febrero de 2011). "Propiedades bioquímicas de tres nucleasas vegetales con potencial anticancerígeno". Ciencia de las plantas . 180 (2): 343–51. doi :10.1016/j.plantsci.2010.10.006. PMID  21421379.
  3. ^ Romier C, Domínguez R, Lahm A, Dahl O, Suck D (septiembre de 1998). "Reconocimiento de ADN monocatenario por nucleasa P1: estructuras cristalinas de alta resolución de complejos con análogos de sustrato". Proteínas . 32 (4): 414–24. doi :10.1002/(sici)1097-0134(19980901)32:4<414::aid-prot2>3.0.co;2-g. PMID  9726413. S2CID  24233161.
  4. ^ Yang X, Pu F, Ren J, Qu X (julio de 2011). "Conjunto con plantilla de ADN para la detección de activación de fluorescencia en tiempo real y sin etiquetas de la escisión enzimática/oxidativa de ADN monocatenario". Comunicaciones Químicas . 47 (28): 8133–5. doi :10.1039/c1cc12216a. PMID  21629944.
  5. ^ Wrede P, Rich A (noviembre de 1979). "Estabilidad de la conformación única del bucle anticodón de tRNAfMet de E. coli". Investigación de ácidos nucleicos . 7 (6): 1457–67. doi :10.1093/nar/7.6.1457. PMC 342320 . PMID  41223. 
  6. ^ Wiegand RC, Godson GN, Radding CM (noviembre de 1975). "Especificidad de la nucleasa S1 de Aspergillus oryzae". La Revista de Química Biológica . 250 (22): 8848–55. doi : 10.1016/S0021-9258(19)40751-5 . PMID  171268.

Otras lecturas

Este artículo incorpora texto del dominio público Pfam e InterPro : IPR003154