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Lípido A

Estructura química del lípido A que se encuentra en E. coli [1]

El lípido A es un componente lipídico de una endotoxina que se considera responsable de la toxicidad de las bacterias gramnegativas . Es la más interna de las tres regiones del lipopolisacárido (LPS), también llamado molécula de endotoxina , y su naturaleza hidrofóbica le permite anclar el LPS a la membrana externa . [2] Si bien sus efectos tóxicos pueden ser dañinos, la detección del lípido A por parte del sistema inmunológico también puede ser fundamental para el inicio de las respuestas inmunitarias a la infección por gramnegativos y para la posterior lucha exitosa contra la infección. [3]

Composición química

El lípido A consta de dos unidades de glucosamina ( aminoazúcar ), en un enlace β(1→6), con cadenas de acilo unidas (" ácidos grasos "), y que normalmente contienen un grupo fosfato en cada carbohidrato . [1]

Se cree que la estructura óptima del lípido A activador del sistema inmunitario contiene 6 cadenas de acilo. Cuatro cadenas de acilo unidas directamente a los azúcares de glucosamina son cadenas de betahidroxiacilo que suelen tener entre 10 y 16 carbonos de longitud. A menudo, dos cadenas de acilo adicionales están unidas al grupo betahidroxi . El lípido A de E. coli , por ejemplo, normalmente tiene cuatro cadenas de hidroxiacilo C14 unidas a los azúcares y una C14 y una C12 unidas a los grupos betahidroxi. [1]

La vía biosintética del lípido A en E. coli ha sido determinada por el trabajo de Christian RH Raetz en los últimos >32 años. [2] La estructura y los efectos del lípido A en las células eucariotas han sido determinados y examinados, entre otros, por los grupos de Otto Westphal, Chris Galanos, Ernst T. Rietschel y Hajime Takahashi a partir de la década de 1960 (Gmeiner, Luederitz, Westphal. Eur J Biochem 1969)(Kamio&Takahashi J Biochem 1971)(Luederitz, Galanos et al., J Infect Dis 1973).

Biosíntesis

Las enzimas implicadas en la síntesis del lípido A se conservan entre Pseudomonas aeruginosa , Escherichia coli , Bordetella bronchiseptica y Salmonella . [4]

Síntesis del precursor UDP-diacilglucosamina del lípido A [4]
Síntesis del lípido IV a [4]

Inhibición y activación de la respuesta inmune

Muchas de las capacidades de activación inmunitaria del LPS se pueden atribuir a la unidad de lípido A. Es un estimulante muy potente del sistema inmunitario , que activa células (por ejemplo, monocitos o macrófagos ) en cantidades de picogramos por mililitro.

Cuando está presente en el cuerpo en altas concentraciones durante una infección bacteriana gramnegativa, puede causar shock y muerte por una reacción inmunitaria excesiva "fuera de control".

El lípido A con un número reducido de cadenas de acilo (por ejemplo, cuatro) puede actuar como inhibidor de la activación inmunitaria inducida por bacterias gramnegativas, y las versiones sintéticas de estos inhibidores ( Eritoran ) se encontraban en ensayos clínicos para la prevención de los efectos nocivos causados ​​por infecciones bacterianas gramnegativas . Sin embargo, los ensayos se interrumpieron recientemente debido a la falta de eficacia observada en pacientes con sepsis grave. [5]

Por otra parte, las versiones modificadas del lípido A pueden utilizarse como componentes de las vacunas ( adyuvantes ) para mejorar su efecto. [6] El lípido A monofosforilado (MPL) es un adyuvante aprobado por la FDA que consiste en una mezcla heterogénea de lípido A de Salmonella minnesota R595. La principal especie de lípido A presente en MPL carece de uno de los dos grupos fosfato y cinco cadenas de acilo. Otros trabajos han demostrado que la eliminación de una o dos cadenas de acilo del lípido A nativo puede reducir significativamente la activación de las respuestas inflamatorias. [7]

La actividad biológica del LPS depende de la estructura química de su lípido A. Principalmente, el TLR4 es necesario para la activación de la inmunidad innata tras el reconocimiento del LPS por parte de las bacterias gramnegativas . La capacidad del sistema TLR4 / MD-2 para responder a una especie de lípido A distinta es clínicamente importante. Las bacterias patógenas pueden emplear el LPS con una actividad biológica baja de su lípido A para evadir el reconocimiento adecuado por parte del complejo TLR4 /MD-2, lo que reduce la respuesta inmunitaria del huésped y aumenta el riesgo de diseminación bacteriana. Por otra parte, dicho lípido A no podría inducir un choque séptico en pacientes susceptibles, lo que haría que las complicaciones sépticas fueran más manejables. Sin embargo, definir y comprender cómo incluso las diferencias estructurales más pequeñas entre especies de lípido A muy similares pueden afectar la activación de la respuesta inmunitaria puede proporcionar el mecanismo para el ajuste fino de esta última y nuevos conocimientos sobre los procesos inmunomoduladores. [8]

Mecanismo de activación celular

Se ha demostrado que el lípido A (y el LPS) activan las células a través del receptor tipo Toll 4 ( TLR4 ), MD-2 y CD14 en la superficie celular. [9] [10] [11] En consecuencia, los análogos del lípido A como el eritoran pueden actuar como antagonistas del TLR4 . Se están desarrollando como medicamentos para el tratamiento de respuestas inflamatorias excesivas a infecciones con bacterias gramnegativas. [12]

Véase también

Referencias

  1. ^ abc Raetz, Christian RH; Guan, Ziqiang; Ingram, Brian O.; Six, David A.; Song, Feng; Wang, Xiaoyuan; Zhao, Jinshi (2009). "Descubrimiento de nuevas vías biosintéticas: la historia del lípido A". Journal of Lipid Research . 50 Suppl (Suppl): S103–S108. doi : 10.1194/jlr.R800060-JLR200 . PMC  2674688 . PMID  18974037.
  2. ^ ab Raetz C, Whitfield C (2002). "Endotoxinas de lipopolisacáridos". Annu Rev Biochem . 71 (1): 635–700. doi :10.1146/annurev.biochem.71.110601.135414. PMC 2569852 . PMID  12045108. 
  3. ^ Tzeng YL, Datta A, Kolli VK, Carlson RW, Stephens DS (mayo de 2002). "Endotoxina de Neisseria meningitidis compuesta únicamente de lípido A intacto: inactivación de la transferasa del ácido 3-desoxi-D-mano-octulosónico meningocócico". J. Bacteriol . 184 (9): 2379–88. doi :10.1128/JB.184.9.2379-2388.2002. PMC 134985 . PMID  11948150. 
  4. ^ abc King, Jerry D; Kocíncová, Dana; Westman, Erin L; Lam, Joseph S (2009). "Biosíntesis de lipopolisacáridos en Pseudomonas aeruginosa". Inmunidad innata . 15 (5): 261–312. doi : 10.1177/1753425909106436 . PMID  19710102. S2CID  23755382.
  5. ^ Ópalo, Steven M.; Laterre, Pierre-François; Francois, Bruno; Larosa, Steven P.; Angus, Derek C.; Mira, Jean-Paul; Wittebole, Xavier; Dugernier, Thierry; Perrotin, Dominique; Tidswell, Marcos; Jáuregui, Luis; Krell, Kenneth; Pachl, enero; Takahashi, Takeshi; Peckelsen, Claus; Cordasco, Eduardo; Chang, Chia-Sheng; Oeyen, Sandra; Aikawa, Naoki; Maruyama, Tatsuya; Schein, Roland; Kalil, André C.; Van Nuffelen, Marc; Lynn, Melvyn; Rossignol, Daniel P.; Gogate, Jagadish; Roberts, María B.; Wheeler, Janice L.; Vicente, Jean-Louis; Grupo de Estudio de Acceso, para el (2013). "Efecto del eritoran, un antagonista de MD2-TLR4, sobre la mortalidad en pacientes con sepsis grave". JAMA . 309 (11): 1154–62. doi :10.1001/jama.2013.2194. hdl : 1854/LU-4222072 . PMID  23512062 .
  6. ^ Coler RN; Bertholet S; Moutaftsi M; Guderian JA; Windish HP; et al. (2010). "Desarrollo y caracterización del sistema adyuvante sintético de lípido glucopiranosilo como adyuvante de vacunas". PLOS ONE . ​​6 (1): e16333. Bibcode :2011PLoSO...616333C. doi : 10.1371/journal.pone.0016333 . PMC 3027669 . PMID  21298114. 
  7. ^ Needham, Brittany D.; Carroll, Sean M.; Giles, David K.; Georgiou, George; Whiteley, Marvin; Trent, M. Stephen (22 de enero de 2013). "Modulación de la respuesta inmunitaria innata mediante ingeniería combinatoria de endotoxinas". Actas de la Academia Nacional de Ciencias . 110 (4): 1464–1469. Bibcode :2013PNAS..110.1464N. doi : 10.1073/pnas.1218080110 . ISSN  0027-8424. PMC 3557076 . PMID  23297218. 
  8. ^ Korneev, K; Arbatsky, N; Molinaro, A; Palmigiano, A; Shaikhutdinova, R; Shneider, M; Muelle, G; Kondakova, A; Sviriaeva, E; Sturiale, L; Garozzo, D; Kruglov, A; Nedospasov, S; Drutskaya, M; Knirel, Y; Kuprash, D (2015). "Relación estructural de los grupos acilo del lípido A con la activación del receptor tipo peaje 4 murino por lipopolisacáridos de cepas patógenas de Burkholderia mallei, Acinetobacter baumannii y Pseudomonas aeruginosa". Fronteras en Inmunología . 6 : 595. doi : 10.3389/fimmu.2015.00595 . PMC 4655328 . Número de modelo:  PMID26635809. 
  9. ^ Poltorak, Alexander; He, Xiaolong; Smirnova, Irina; Liu, Mu-Ya; Huffel, Christophe Van; Du, Xin; Birdwell, Dale; Alejos, Erica; Silva, Maria (11 de diciembre de 1998). "Señalización de LPS defectuosa en ratones C3H/HeJ y C57BL/10ScCr: mutaciones en el gen Tlr4". Science . 282 (5396): 2085–2088. Bibcode :1998Sci...282.2085P. doi :10.1126/science.282.5396.2085. ISSN  0036-8075. PMID  9851930.
  10. ^ Park, Beom Seok; Song, Dong Hyun; Kim, Ho Min; Choi, Byong-Seok; Lee, Hayyoung; Lee, Jie-Oh (2009). "La base estructural del reconocimiento de lipopolisacáridos por el complejo TLR4–MD-2". Nature . 458 (7242): 1191–1195. Bibcode :2009Natur.458.1191P. doi :10.1038/nature07830. PMID  19252480. S2CID  4396446.
  11. ^ Beutler, B.; Poltorak, A. (1 de abril de 2001). "La única vía de acceso a la respuesta a las endotoxinas: cómo se identificó el LPS como Tlr4 y su papel en la inmunidad innata". Metabolismo y disposición de fármacos . 29 (4 Pt 2): 474–478. ISSN  0090-9556. PMID  11259335.
  12. ^ Tidswell, M; Tillis, W; Larosa, SP; Lynn, M; Wittek, AE; Kao, R; Wheeler, J; Gogate, J; et al. (2010). "Ensayo de fase 2 de eritoran tetrasodium (E5564), un antagonista del receptor tipo Toll 4, en pacientes con sepsis grave". Medicina de cuidados críticos . 38 (1): 72–83. doi :10.1097/CCM.0b013e3181b07b78. PMID  19661804. S2CID  19160973. {{cite journal}}: |first10=tiene nombre genérico ( ayuda )

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