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Toxina del cólera

Mecanismo de acción de la toxina del cólera

La toxina del cólera (también conocida como colerageno y a veces abreviada como CTX , Ctx o CT ) es un complejo proteico multimérico AB5 secretado por la bacteria Vibrio cholerae . [1] [2] La CTX es responsable de la diarrea acuosa masiva característica de la infección del cólera . [3] Es un miembro de la familia de las enterotoxinas termolábiles .

Historia

Robert Koch , un médico y microbiólogo alemán, fue la primera persona en postular la existencia de la toxina del cólera. En 1886, Koch propuso que Vibrio cholerae secretaba una sustancia que causaba los síntomas del cólera . [4] La postulación de Koch fue probada como correcta por el microbiólogo indio Sambhu Nath De , quien en 1951 estudió y documentó los efectos de inyectar a conejos bacterias del cólera muertas por calor. [5] De concluyó a partir de este experimento que una endotoxina liberada al desintegrarse la bacteria era la causa de los síntomas del cólera. [5] En 1959, De realizó otro experimento, esta vez utilizando un filtrado de cultivo libre de bacterias de V. Cholera inyectado en el intestino delgado de conejos. [6] La acumulación de líquido resultante en los intestinos demostró de manera concluyente la existencia de una toxina. [7]

Estructura

Pentámero de toxina B del cólera, Vibrio cholerae

La toxina completa es un hexámero formado por una única copia de la subunidad A (parte A, enzimática, P01555 ), y cinco copias de la subunidad B (parte B, de unión al receptor, P01556 ), denominada AB 5 . La subunidad B se une mientras que la subunidad A activa la proteína G que activa la adenilato ciclasa . La estructura tridimensional de la toxina fue determinada mediante cristalografía de rayos X por Zhang et al. en 1995. [8]

Las cinco subunidades B, cada una de las cuales pesa 11 kDa , forman un anillo de cinco miembros. La subunidad A, que pesa 28 kDa, tiene dos segmentos importantes. La porción A1 de la cadena (CTA1) es una carga enzimática globular que ADP-ribosila las proteínas G , mientras que la cadena A2 (CTA2) forma una hélice alfa extendida que se asienta cómodamente en el poro central del anillo de la subunidad B. [9]

Esta estructura es similar en forma, mecanismo y secuencia a la enterotoxina termolábil secretada por algunas cepas de la bacteria Escherichia coli .

Patogenesia

La toxina del cólera actúa mediante el siguiente mecanismo: primero, el anillo de la subunidad B de la toxina del cólera se une a los gangliósidos GM1 en la superficie de las células diana. Si una célula carece de GM1, la toxina probablemente se une a otros tipos de glicanos , como Lewis Y y Lewis X , unidos a proteínas en lugar de lípidos. [10] [11] [12] Una vez unido, todo el complejo de toxina es endocitado por la célula y la reducción de un puente disulfuro libera la cadena de toxina del cólera A1 (CTA1). El endosoma se mueve al aparato de Golgi , donde la proteína A1 es reconocida por la chaperona del retículo endoplasmático (RE) , la proteína disulfuro isomerasa . Luego, la cadena A1 se despliega y se envía a la membrana, donde Ero1 desencadena la liberación de la proteína A1 por oxidación del complejo de proteína disulfuro isomerasa. [13] A medida que la proteína A1 se mueve desde el RE hacia el citoplasma a través del canal Sec61 , se repliega y evita la desactivación como resultado de la ubiquitinación .

CTA1 queda entonces libre para unirse a una proteína humana asociada llamada ARF6 (factor 6 de ribosilación de ADP); la unión a Arf6 impulsa un cambio en la forma de CTA1 que expone su sitio activo y permite su actividad catalítica. [14] El fragmento CTA1 cataliza la ribosilación de ADP de las proteínas de la subunidad alfa Gs (Gα s ) utilizando NAD . La ribosilación de ADP hace que la subunidad Gα s pierda su actividad catalítica de hidrólisis de GTP en GDP + P i , manteniendo así a Gα s en su estado activado. El aumento de la activación de Gα s conduce a un aumento de la actividad de la adenilato ciclasa , que aumenta la concentración intracelular de 3',5'-AMP cíclico (cAMP) a más de 100 veces por encima de lo normal y sobreactiva la PKA citosólica . Estas PKA activas fosforilan entonces las proteínas del canal de cloruro reguladoras de la conductancia transmembrana de la fibrosis quística (CFTR) , lo que conduce a un eflujo de iones de cloruro mediado por ATP y a la secreción de H 2 O , Na + , K + y HCO 3 − en el lumen intestinal . Además, se reduce la entrada de Na + y, en consecuencia, la entrada de agua en los enterocitos . Los efectos combinados dan como resultado una rápida pérdida de líquido del intestino, hasta 2 litros por hora, lo que conduce a una deshidratación grave y a otros factores asociados al cólera, incluidas las heces con sabor a agua de arroz . [15]

La toxina pertussis (también una proteína AB 5 ) producida por Bordetella pertussis actúa de manera similar con la excepción de que ADP-ribosila la subunidad Gα i , volviéndola incapaz de inhibir la producción de AMPc. [16]

Origen

Comparación entre los fagos filamentosos RS1, CTXφ y f1. [17]

El gen que codifica la toxina del cólera se introdujo en V. cholerae mediante transferencia horizontal de genes . Las cepas virulentas de V. cholerae (los serogrupos O1 y O139 ) contienen genes de un virus conocido como bacteriófago CTXφ . [17] El gen CTXφ integrado contiene muchos de los genes de RS1, un fago "satélite" filamentoso, incluidos elementos para la replicación (RstA), la integración (RstB) y la regulación de la expresión génica (RstR), así como genes que codifican proteínas necesarias para el empaquetamiento y la secreción del fago (Psh, Cep, OrfU, Ace y Zot), que son muy similares a los genes de los colifagos filamentosos Ff. [17] Estos genes (y otros) permiten la replicación y posterior secreción del bacteriófago CTXφ, así como la codificación de CTX, lo que permite la transferencia horizontal de genes de CTXφ a otras células susceptibles. [17]

Aplicaciones

Debido a que la subunidad B parece ser relativamente no tóxica, los investigadores han encontrado varias aplicaciones para ella en biología celular y molecular. Se utiliza rutinariamente como un trazador neuronal . [18]

El tratamiento de células madre neurales cultivadas de roedores con toxina del cólera induce cambios en la localización del factor de transcripción Hes3 y aumenta su número. [19]

Los gangliósidos GM1 se encuentran en las balsas lipídicas de la superficie celular. Los complejos de subunidades B marcados con marcadores fluorescentes o posteriormente dirigidos con anticuerpos se pueden utilizar para identificar las balsas.

Vacuna

Actualmente existen dos vacunas contra el cólera: Dukoral y Shanchol. Ambas vacunas utilizan células enteras muertas de V. cholerae , pero Dukoral también contiene toxina colérica β recombinante (rCTB). Algunos estudios sugieren que la inclusión de rCTB puede mejorar la eficacia de la vacuna en niños pequeños (2-10) y aumentar la duración de la protección. Esto se ve contrarrestado por los costos de protección y almacenamiento de rCTB contra la degradación. [20]

Adyuvante de vacuna

Otra aplicación de la subunidad CTB puede ser como adyuvante de vacunas para otras vacunas. Se ha demostrado que la unión de CTB y antígenos mejora la respuesta de la vacuna. Actualmente, el potencial adyuvante de CTB se ha demostrado en modelos animales grandes, por lo que se necesita más investigación. Esto puede permitir que CTB se use como adyuvante para vacunar contra muchos tipos de enfermedades. Esto puede incluir infecciones bacterianas y virales, alergias y diabetes. Cabe destacar que, como se ha demostrado que CTB induce respuestas inmunitarias humorales de las mucosas , las vacunas contra virus de las mucosas como el VIH son un objetivo potencial. [20]

Biología de membranas

Balsas lipídicas

Como se ha demostrado que la toxina del cólera se une preferentemente a los gangliósidos GM1, esta característica se puede utilizar para estudios de membranas. Las balsas lipídicas son difíciles de estudiar, ya que varían en tamaño y duración, además de ser parte de un componente extremadamente dinámico de las células. Usando la toxina del cólera β como marcador, podemos obtener una mejor comprensión de las propiedades y funciones de las balsas lipídicas. [21]

Endocitosis

La endocitosis se divide en dos grandes grupos: el proceso dependiente de clatrina y el proceso independiente de clatrina, y la toxina del cólera utiliza ambas vías. Se ha demostrado que la toxina del cólera entra en las células a través de la endocitosis en múltiples vías. Estas vías incluyen caveolas , fosas recubiertas de clatrina, transportadores independientes de clatrina (CLIC), la vía de los compartimentos endocíticos enriquecidos con GPI (GEEC), la endocitosis mediada por ARF6 y la endocitosis rápida mediada por endofilina (FEME). No se entiende completamente cómo la toxina del cólera desencadena estas vías de endocitosis, pero el hecho de que la toxina del cólera desencadene estas vías muestra el uso de la toxina como un marcador importante para investigar estos mecanismos. [21]

Tráfico retrógrado

Uno de los aspectos más importantes de la toxina del cólera es el mecanismo de tráfico retrógrado que transporta la toxina desde la membrana celular de vuelta a la red trans-Golgi y al retículo endoplasmático. Dado que tanto la toxina del cólera como las especies GM1 pueden marcarse con marcadores fluorescentes, se puede monitorear el mecanismo de tráfico retrógrado. Esto abre la posibilidad de monitorear el mecanismo en tiempo real. Esto puede abrir la puerta a nuevos descubrimientos sobre cómo funciona el transporte intracelular y cómo funciona la clasificación de proteínas y lípidos en la vía endocítica . [21]

Véase también

Referencias

  1. ^ Ryan KJ; Ray CG, eds. (2004). Microbiología médica de Sherris (4.ª ed.). McGraw Hill. pág. 375. ISBN 978-0-8385-8529-0.
  2. ^ Faruque, Shah M; Nair, G. Balakrish, eds. (julio de 2008). Vibrio cholerae: Genómica y biología molecular. Caister Academic Press. ISBN 978-1-904455-33-2.
  3. ^ Aizpurua-Olaizola, Oier; Sastre Torano, Javier; Pukin, Aliaksei; Fu, Ou; Boons, Geert Jan; de Jong, Gerhardus J.; Pieters, Roland J. (2018). "Electroforesis capilar de afinidad para la evaluación de la afinidad de unión de los inhibidores de la toxina del cólera basados ​​en carbohidratos". Electroforesis . 39 (2): 344–347. doi :10.1002/elps.201700207. ISSN  1522-2683. PMID  28905402. S2CID  33657660.
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  6. ^ De, SN (30 de mayo de 1959). "Enterotoxicidad del filtrado de cultivo libre de bacterias de Vibrio cholerae". Nature . 183 (4674): 1533–1534. doi :10.1038/1831533a0. ISSN  0028-0836. PMID  13666809.
  7. ^ Bharati, Kaushik; Ganguly, Nirmal K. (febrero de 2011). "Toxina del cólera: un paradigma de una proteína multifuncional". Revista india de investigación médica . 133 (2): 179–187. ISSN  0971-5916. PMC 3089049. PMID  21415492 . 
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