Slit-Robo es el nombre de un complejo de proteínas de señalización celular con muchas funciones diversas, incluida la guía de axones y la angiogénesis .
Slit se refiere a una proteína secretada que es más conocida como una señal de guía axonal repulsiva, y Robo se refiere a su receptor de proteína transmembrana . Hay cuatro Robos diferentes y tres Slits en vertebrados: Robo1 , Robo2 , Robo3 /Rig-1 y Robo4 , y Slit1 , Slit2 , Slit3 . [1] Hay tres Robos y un solo Slit en Drosophila . Los homólogos correspondientes de Slit y Robo en C. elegans son Slt y Sax-3, respectivamente. [2]
Las hendiduras se caracterizan por cuatro dominios distintos, cada uno de los cuales contiene un número variable de repeticiones ricas en leucina (LRR), [3] de siete a nueve repeticiones de EGF , [4] [5] un dominio ALPS (Agrina, Perlecan, Laminina, Slit) y un nudo de cisteína . [6] Los robos se caracterizan por cinco dominios similares a Ig , tres repeticiones de fibronectina tipo III (FNIII), una porción transmembrana y una cola intracelular con hasta cuatro motivos citoplasmáticos conservados: CC0 (un sitio potencial de fosforilación de tirosina ), [7] CC1 (también un sitio potencial de fosforilación de tirosina y se une al dominio P3 del receptor de netrina-1 DCC ), [8] CC2 (tramo de poliprolina; sitio de unión de consenso para las proteínas Ena/Vasp ), [7] y CC3 (tramo de poliprolina). [9]
Antecedentes y descubrimiento
En el sistema nervioso en desarrollo de los bilaterales, la mayoría de los axones cruzan hacia el lado opuesto (contralateral) del cuerpo. ¿Cuáles son los genes que garantizan que este proceso se produzca de forma adecuada? Esta pregunta fundamental en la guía axonal condujo a los investigadores a Robo, que se identificó en una selección a gran escala de mutantes de Drosophila a principios de la década de 1990. [10] Se demostró que la expresión de Robo era necesaria para la repulsión de los axones de la línea media, tanto en axones ipsilaterales que nunca cruzan la línea media como en axones comisurales que ya la habían cruzado. [9] Se descubrió que otra proteína, Commissureless (Comm), era un regulador esencial de Robo: en mutantes comm, la actividad de Robo es demasiado alta y ningún axón cruza la línea media. [11] Varios años después, la evidencia genética, [12] los experimentos de unión bioquímica y los ensayos de explantos [13] identificaron a Slits como los ligandos repulsivos para los receptores Robo tanto en Drosophila como en vertebrados. También se descubrió que Slit actúa como una señal repulsiva en la guía del bulbo olfativo. [14] [15] La alta conservación de las estructuras Slit y Robo [16] y las similitudes en su función entre vertebrados e invertebrados [17] constituyen un sólido argumento a favor de un requisito evolutivamente conservado para la señalización Slit/Robo en el sistema nervioso en desarrollo.
Vías de señalización celular
Unión por hendidura y robot
La región funcional de las proteínas Slit se encuentra dentro de las repeticiones ricas en leucina (LRR). [18] [19] Slit2 se une a Robo1 en un enlace flexible entre su dominio D2 y los dos primeros dominios similares a Ig de Robo1. [20] Las investigaciones sugieren que los proteoglicanos de sulfato de heparán, que son necesarios para la señalización de Slit en Drosophila, [21] pueden apoyar esta interacción a través de la estabilización del complejo Slit-Robo o actuando como correceptores que presentan Slits a Robos. [22]
Eventos de unión robótica intracelular
La función de la señalización Slit-Robo está influenciada por la unión de factores intracelulares a los dominios citoplasmáticos de Robo.
Abelson y Habilitado
En Drosophila, las dos proteínas, la tirosina quinasa de Abelson (Abl) y Enabled (Ena), median la remodelación del citoesqueleto después de la señalización Slit-Robo. Abl puede fosforilar los dominios CC0 y CC1 de Robo, regulando así negativamente su actividad, mientras que Ena interactúa con CC0 y CC2 para mediar la señalización repulsiva. [7] También se cree que Abl promueve la señalización repulsiva al unirse a las proteínas asociadas a la adenilil ciclasa (CAP), que regulan la polimerización de actina . [23]
GTPasas Rho
La unión de Slit a Robo induce la unión de SrGAP1 al dominio CC3 de Robo1, lo que conduce a la desactivación descendente de Cdc42 , una GTPasa Rho que media la polimerización de actina, y la activación de RhoA , una GTPasa Rho que media la despolimerización de actina. [24] En Drosophila, la proteína adaptadora SH3 - SH2 Dock se une directamente a los dominios CC2 y CC3 de Robo, reclutando la proteína quinasa activada por p21 (Pak) y Sos, lo que resulta en una mayor actividad de Rac. Esta asociación Robo-Dock aumenta con la unión de Slit-Robo, al igual que el reclutamiento de Sos. [25] Drosophila Robo también interactúa directamente con GAP Vilse o CrossGAP, que pueden funcionar para regular a la baja la actividad de Rac . [26]
Receptor de netrina DCC
Otra forma en que la señalización Slit-Robo podría mediar la repulsión desde la línea media es silenciando el receptor de la señal de guía atractiva netrina-1 , Deleted in Colorrectal Cancer (DCC), inactivando así la atracción mediada por netrina-1 hacia la línea media . [8] Robo se une directamente al dominio citoplasmático de DCC y los experimentos con explantos de Xenopus han demostrado que esta interacción silencia la atracción mediada por netrina; sin embargo, los experimentos in vivo aún no han confirmado la relevancia de este mecanismo para la guía axonal comisural en embriones.
Interacciones con sin comisura
La proteína Commissureless (Comm) de Drosophila es una proteína transmembrana expresada en las neuronas comisurales. Comm promueve el cruce de la línea media al regular negativamente a Robo. Se ha demostrado que un motivo de señal de clasificación LPSY es necesario para que Comm clasifique a Robo en endosomas, lo que evita que acceda a la superficie del cono de crecimiento. Por lo tanto, cuando se expresa Comm, los axones no se ven afectados por la presencia de Slit y pueden cruzar la línea media. [27] La expresión de Comm está regulada estrictamente para garantizar que los axones regulen negativamente a Robo en el momento correcto. En ausencia de Comm, Robo no se regula negativamente de manera adecuada y todos los axones no logran cruzar la línea media.
Funciones
Las rendijas median la comunicación celular en muchos sistemas diversos, regulando la guía, la migración celular y la polarización de muchos tipos de células diferentes. [16]
Guía axonal
Las interacciones Slit-Robo regulan la guía axonal en la línea media para los axones comisurales , [28] retinianos , [29] olfativos , [30] corticales , [31] y precerebelosos. [32] Las deleciones de robos individuales no coinciden fenotípicamente con los mutantes Slit, lo que indica que Robos1-3 desempeñan funciones distintas, complementarias pero no totalmente superpuestas en la guía axonal. En Drosophila, las interacciones Slit con Robo1 y Robo2 funcionan juntas para determinar si un axón cruzará la línea media, y ambas son necesarias para un cruce adecuado. [33] Robo2 y Robo3 funcionan juntas para especificar la posición lateral del axón en relación con la línea media. Los gradientes de expresión superpuestos de Robos a lo largo de los tractos longitudinales en el Sistema Nervioso Central (SNC) se han denominado "código Robo", pero se desconoce si la formación de tractos longitudinales específicos, mediada de esta manera por Robo, involucra la señalización Slit. [34] Se ha especulado que la unión homofílica y heterofílica entre Robos puede ser suficiente para mediar este efecto.
En los vertebrados, Robo1 y Robo2 trabajan juntos para mediar la repulsión de los ligandos Slit expresados en la placa del suelo, mientras que Robo3/Rig-1 tiene la actividad opuesta y funciona para promover la atracción hacia la línea media (muy probablemente inhibiendo los otros dos receptores Robo, a través de un mecanismo desconocido). Los ratones que carecen de los tres Robos o de los tres Slits exhiben un fenotipo similar al mutante Slit de Drosophila. [35]
Ramificación axonal y dendrítica
Se ha demostrado que Slit2 y Slit1 funcionan como posibles reguladores positivos de la formación de colaterales axónicas durante el establecimiento o remodelación de circuitos neuronales. De hecho, se ha demostrado que Slit2-N, un fragmento N-terminal de Slit2, induce la elongación y ramificación del ganglio de la raíz dorsal (DRG), mientras que Slit2 de longitud completa antagoniza este efecto. [36] Sin embargo, en los axones sensoriales centrales del trigémino, Slit2 de longitud completa, a través de interacciones con el receptor de semaforina plexina-A4, regula la ramificación axonal. [37] Las interacciones entre Slit y Robo en este proceso no están claras, pero DRG expresa Robo2 y los axones trigéminos expresan Robo1-2. [38] Sin embargo, las interacciones Slit-Robo están altamente implicadas en el desarrollo dendrítico de las neuronas corticales, ya que la exposición a Slit1 conduce a un mayor crecimiento y ramificación dendrítica , mientras que la inhibición de las interacciones Slit-robo atenúa la ramificación dendrítica. [39]
Proyecciones topográficas
La orientación axonal por Slit-Robo parece desempeñar un papel importante en la organización de las proyecciones topográficas de los axones que corresponden a los campos receptivos somatosensoriales . En el sistema visual de Drosophila , Slit y Robo evitan la mezcla de células de láminas y lóbulos. [40] La expresión variable de los receptores Robo en las neuronas olfativas de Drosophila controla la organización axonal en los lóbulos olfativos. [41] En los vertebrados, Slit1 desempeña un papel importante en la orientación axonal del órgano vomeronasal (VNO) al bulbo olfatorio accesorio (AOB). [42] En 2009, se demostró que una combinación de señalización Slit-Robo y Netrin-Frazzled en Drosophila rige el establecimiento de mapas miotópicos, que describen la inervación de las dendritas de las neuronas motoras en el campo muscular. [43] [44]
Migración celular
Se ha demostrado que Slit-Robo influye en la migración de neuronas y glía , leucocitos , [45] y células endoteliales . [46] Slit1 y Slit2 median la actividad repulsiva del tabique y el plexo coroideo que orientan la migración de células indiferenciadas de la zona subventricular (SVZ) en la corriente migratoria rostral (RMS) al bulbo olfatorio, donde se diferencian en neuronas olfativas. [47] La contribución de la señalización de Robo en este sistema no está clara, pero se sabe que los neuroblastos migrantes expresan ARNm de Robo2 y Robo3 . [48]
Durante el desarrollo del sistema auditivo periférico del ratón, la señalización Slit/Robo impone una fuerza de restricción sobre las neuronas de los ganglios espirales para asegurar su posicionamiento preciso para la inervación correcta de los ganglios espirales y las células ciliadas cocleares. [49]
Implicaciones en la enfermedad
Cáncer y enfermedades vasculares
La inhibición de Robo1, que se colocaliza con el factor de von Willebrand en las células endoteliales tumorales , conduce a una densidad de microvasos reducida y a una masa tumoral reducida del melanoma maligno . Se sabe que Slit2 media este efecto. [50] Robo4, también conocido como rotonda mágica, [51] es un Robo específico del endotelio que, al unirse a Slit2, bloquea la activación de la quinasa de la familia Src , inhibiendo así la migración y la permeabilidad inducidas por VEGF -165 in vitro y la fuga vascular in vivo . [52] Esto sugiere que las terapias combinadas VEGF/Slit2 podrían ser útiles para prevenir la angiogénesis tumoral y la fuga vascular o el edema después de un ataque cardíaco o un accidente cerebrovascular . [53]
Parálisis de la mirada horizontal con escoliosis progresiva
Las mutaciones homocigóticas de Robo3 se han asociado con la parálisis de la mirada horizontal oftalmológica típica con escoliosis progresiva , que se caracteriza por problemas oculomotores y alteraciones generales en la inervación. [54]
Dislexia
Se ha implicado a Robo1 como uno de los 14 genes candidatos diferentes para la dislexia y uno de los 10 que encajan en una red molecular teórica involucrada en la migración neuronal y el crecimiento de las neuritas. Se predice que Slit2 desempeñará un papel en la red. [55]
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Lectura adicional
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- Chétodal A (2010). "Las rendijas y sus receptores". En Bagnard D (ed.). Crecimiento y guía de los axones (Advances in Experimental Medicine and Biology) . Berlín: Springer. pp. 65–79. ISBN 978-1-4419-2634-0.