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Ribonucleasa

La ribonucleasa (abreviada comúnmente como ARNasa ) es un tipo de nucleasa que cataliza la degradación del ARN en componentes más pequeños. Las ribonucleasas se pueden dividir en endorribonucleasas y exorribonucleasas , y comprenden varias subclases dentro de las clases de enzimas EC 2.7 (para las enzimas fosforolíticas) y 3.1 (para las enzimas hidrolíticas).

Función

Todos los organismos estudiados contienen muchas ARNasas de dos clases diferentes, lo que demuestra que la degradación del ARN es un proceso muy antiguo e importante. Además de eliminar el ARN celular que ya no se necesita, las ARNasas desempeñan un papel fundamental en la maduración de todas las moléculas de ARN, tanto los ARN mensajeros que llevan material genético para la fabricación de proteínas como los ARN no codificantes que funcionan en diversos procesos celulares. Además, los sistemas de degradación activa del ARN son la primera defensa contra los virus ARN y proporcionan la maquinaria subyacente para estrategias inmunitarias celulares más avanzadas, como la RNAi .

Algunas células también secretan grandes cantidades de ARNasas no específicas, como A y T1. Por lo tanto, las ARNasas son extremadamente comunes, lo que da como resultado una vida útil muy corta para cualquier ARN que no esté en un entorno protegido. Vale la pena señalar que todos los ARN intracelulares están protegidos de la actividad de las ARNasas mediante una serie de estrategias, entre las que se incluyen la protección del extremo 5' , la poliadenilación del extremo 3' , la formación de un dúplex ARN·ARN y el plegamiento dentro de un complejo de proteína ARN ( partícula de ribonucleoproteína o RNP).

Otro mecanismo de protección es el inhibidor de ribonucleasa (RI) , que comprende una fracción relativamente grande de proteína celular (~0,1%) en algunos tipos de células, y que se une a ciertas ribonucleasas con la mayor afinidad de cualquier interacción proteína-proteína ; la constante de disociación para el complejo RI-RNasa A es ~20 fM en condiciones fisiológicas. El RI se utiliza en la mayoría de los laboratorios que estudian ARN para proteger sus muestras contra la degradación de las ARNasas ambientales.

De manera similar a las enzimas de restricción , que escinden secuencias altamente específicas de ADN bicatenario , recientemente se han clasificado una variedad de endorribonucleasas que reconocen y escinden secuencias específicas de ARN monocatenario.

Las ARNasas desempeñan un papel fundamental en muchos procesos biológicos, incluida la angiogénesis y la autoincompatibilidad en plantas con flores (angiospermas). [2] [3] Se ha demostrado que muchas toxinas de respuesta al estrés de los sistemas toxina-antitoxina procariotas tienen actividad y homología de ARNasa . [4]

Clasificación

Principales tipos de endorribonucleasas

Estructura de la ARNasa A

Principales tipos de exorribonucleasas

Especificidad de la ARNasa

El sitio activo se parece a un valle de rift donde todos los residuos del sitio activo crean la pared y el fondo del valle. El rift es muy delgado y el pequeño sustrato encaja perfectamente en el medio del sitio activo, lo que permite una interacción perfecta con los residuos. En realidad, tiene una pequeña curvatura en el sitio que también tiene el sustrato. Aunque normalmente la mayoría de las exo y endorribonucleasas no son específicas de la secuencia, recientemente se diseñó un sistema CRISPR /Cas que reconoce y corta el ADN de forma nativa para escindir el ARN monocatenario de una manera específica de la secuencia. [11]

Contaminación por ARNasa durante la extracción de ARN

La extracción de ARN en experimentos de biología molecular se complica enormemente por la presencia de ribonucleasas ubicuas y resistentes que degradan las muestras de ARN. Ciertas ARNasas pueden ser extremadamente resistentes e inactivarlas es difícil en comparación con la neutralización de las ADNasas . Además de las ARNasas celulares que se liberan, hay varias ARNasas que están presentes en el medio ambiente. Las ARNasas han evolucionado para tener muchas funciones extracelulares en varios organismos. [12] [13] [14] Por ejemplo, la ARNasa 7, un miembro de la superfamilia de las ARNasas A , es secretada por la piel humana y sirve como una potente defensa antipatógena. [15] [16] En estas ARNasas secretadas, la actividad enzimática de la ARNasa puede incluso no ser necesaria para su nueva función exaptada . Por ejemplo, las ARNasas inmunes actúan desestabilizando las membranas celulares de las bacterias. [17] [18]

Referencias

  1. ^ Noguchi S (julio de 2010). "Mecanismo de isomerización del aspartato a sexxxxxxxx implicado por las estructuras de la ribonucleasa U2 de Ustilago sphaerogena complejada con adenosina 3'-monofosfato". Acta Crystallographica D . 66 (Pt 7): 843–9. doi :10.1107/S0907444910019621. PMID  20606265.
  2. ^ Sporn MB, Roberts AB (6 de diciembre de 2012). Factores de crecimiento de péptidos y sus receptores II. Springer Science & Business Media. pág. 556. ISBN 978-3-642-74781-6.
  3. ^ Raghavan V (6 de diciembre de 2012). Biología del desarrollo de las plantas con flores. Springer Science & Business Media. pág. 237. ISBN 978-1-4612-1234-8.
  4. ^ Ramage HR, Connolly LE, Cox JS (diciembre de 2009). "Análisis funcional integral de los sistemas toxina-antitoxina de Mycobacterium tuberculosis: implicaciones para la patogénesis, las respuestas al estrés y la evolución". PLOS Genetics . 5 (12): e1000767. doi : 10.1371/journal.pgen.1000767 . PMC 2781298 . PMID  20011113. 
  5. ^ Cuchillo CM, Nogués MV, Raines RT (septiembre de 2011). "Ribonucleasa pancreática bovina: cincuenta años del primer mecanismo de reacción enzimática". Bioquímica . 50 (37): 7835–41. doi :10.1021/bi201075b. PMC 3172371 . PMID  21838247. 
  6. ^ "Kits de preparación para la biblioteca".
  7. ^ Nowotny M (febrero de 2009). "Superfamilia de integrasas retrovirales: la perspectiva estructural". EMBO Reports . 10 (2): 144–51. doi :10.1038/embor.2008.256. PMC 2637324 . PMID  19165139. 
  8. ^ Holzmann J, Frank P, Löffler E, Bennett KL, Gerner C, Rossmanith W (octubre de 2008). "RNasa P sin ARN: identificación y reconstitución funcional de la enzima de procesamiento del ARNt mitocondrial humano". Cell . 135 (3): 462–74. doi : 10.1016/j.cell.2008.09.013 . PMID  18984158.
  9. ^ Shamsher S. Kanwar*, Puranjan Mishra, Khem Raj Meena, Shruti Gupta y Rakesh Kumar, Ribonucleasas y sus aplicaciones, 2016, Revista de biotecnología y bioingeniería avanzadas
  10. ^ Wachi M, Umitsuki G, Shimizu M, Takada A, Nagai K. El gen cafA de Escherichia coli codifica una nueva ARNasa, denominada ARNasa G, implicada en el procesamiento del extremo 5' del ARNr 16S. Biochem Biophys Res Commun. 1999;259(2):483‐488. doi:10.1006/bbrc.1999.0806
  11. ^ Tamulaitis G, Kazlauskiene M, Manakova E, Venclovas Č, Nwokeoji AO, Dickman MJ, Horvath P, Siksnys V (noviembre de 2014). "Trituración programable de ARN mediante el sistema CRISPR-Cas tipo III-A de Streptococcus thermophilus". Molecular Cell . 56 (4): 506–17. doi : 10.1016/j.molcel.2014.09.027 . PMID  25458845.
  12. ^ Rossier O, Dao J, Cianciotto NP (marzo de 2009). "Una ARNasa de tipo II secretada por Legionella pneumophila facilita la infección intracelular óptima de Hartmannella vermiformis". Microbiología . 155 (Pt 3): 882–90. doi : 10.1099/mic.0.023218-0 . PMC 2662391 . PMID  19246759. 
  13. ^ Luhtala N, Parker R (mayo de 2010). "Ribonucleasas de la familia T2: enzimas antiguas con funciones diversas". Tendencias en ciencias bioquímicas . 35 (5): 253–9. doi :10.1016/j.tibs.2010.02.002. PMC 2888479 . PMID  20189811. 
  14. ^ Dyer KD, Rosenberg HF (noviembre de 2006). "La ARNasa, una superfamilia: generación de diversidad y defensa innata del huésped". Diversidad molecular . 10 (4): 585–97. doi :10.1007/s11030-006-9028-2. PMID  16969722. S2CID  20922592.
  15. ^ Harder J, Schroder JM (noviembre de 2002). "RNasa 7, una nueva proteína antimicrobiana de defensa inmunitaria innata de la piel humana sana". The Journal of Biological Chemistry . 277 (48): 46779–84. doi : 10.1074/jbc.M207587200 . PMID  12244054.
  16. ^ Köten B, Simanski M, Gläser R, Podschun R, Schröder JM, Harder J (julio de 2009). "La ARNasa 7 contribuye a la defensa cutánea contra Enterococcus faecium". PLOS ONE . ​​4 (7): e6424. Bibcode :2009PLoSO...4.6424K. doi : 10.1371/journal.pone.0006424 . PMC 2712763 . PMID  19641608. 
  17. ^ Huang YC, Lin YM, Chang TW, Wu SJ, Lee YS, Chang MD, Chen C, Wu SH, Liao YD (febrero de 2007). "Los residuos de lisina flexibles y agrupados de la ribonucleasa 7 humana son fundamentales para la permeabilidad de la membrana y la actividad antimicrobiana". The Journal of Biological Chemistry . 282 (7): 4626–33. doi : 10.1074/jbc.M607321200 . PMID  17150966.
  18. ^ Rosenberg HF (mayo de 2008). "Ribonucleasas de ARNasa A y defensa del huésped: una historia en evolución". Journal of Leukocyte Biology . 83 (5): 1079–87. doi :10.1189/jlb.1107725. PMC 2692241 . PMID  18211964. 

Ahmed TAE, Udenigwe CC, Gomaa A. Editorial: Aplicaciones de biotecnología y bioingeniería para biomateriales derivados de huevos. Front Bioeng Biotechnol. 20 de septiembre de 2021;9:756058

Fuentes

Enlaces externos