stringtranslate.com

CYP2E1

El citocromo P450 2E1 (abreviado CYP2E1 , EC 1.14.13.n7) es un miembro del sistema oxidasa de función mixta del citocromo P450 , que participa en el metabolismo de los xenobióticos en el cuerpo. Esta clase de enzimas se divide en varias subcategorías, incluidas CYP1, CYP2 y CYP3, que como grupo son en gran medida responsables de la degradación de compuestos extraños en los mamíferos. [5]

Si bien el propio CYP2E1 lleva a cabo un número relativamente bajo de estas reacciones (~4% de las oxidaciones de fármacos mediadas por P450 conocidas), él y las enzimas relacionadas CYP1A2 y CYP3A4 son responsables de la descomposición de muchos químicos ambientales tóxicos y carcinógenos que ingresan al cuerpo, en además de reacciones metabólicas básicas como las oxidaciones de ácidos grasos. [6]

La proteína CYP2E1 se localiza en el retículo endoplásmico y es inducida por el etanol, el estado diabético y la inanición. La enzima metaboliza tanto sustratos endógenos, como etanol, acetona y acetal, como sustratos exógenos, incluidos benceno, tetracloruro de carbono, etilenglicol y nitrosaminas, que son premutágenos que se encuentran en el humo del cigarrillo. Debido a sus numerosos sustratos, esta enzima puede estar involucrada en procesos tan variados como la gluconeogénesis, la cirrosis hepática, la diabetes y el cáncer. [7]

Función

CYP2E1 es una proteína de membrana expresada en niveles elevados en el hígado, donde compone casi el 50% del ARNm total del citocromo P450 hepático [8] y el 7% de la proteína del citocromo P450 hepático. [9] Por lo tanto, el hígado es donde la mayoría de los fármacos se desactivan por CYP2E1, ya sea directamente o mediante excreción facilitada del cuerpo.

La enzima CYP2E1 metaboliza principalmente moléculas polares pequeñas, incluidas sustancias químicas tóxicas de laboratorio como dimetilformamida , anilina e hidrocarburos halogenados (consulte la tabla a continuación) . Si bien estas oxidaciones suelen ser beneficiosas para el cuerpo, ciertos carcinógenos y toxinas son bioactivados por el CYP2E1, lo que implica a la enzima en la aparición de hepatotoxicidad causada por ciertas clases de medicamentos (consulte la sección de relevancia de la enfermedad a continuación).

CYP2E1 también desempeña un papel en varias reacciones metabólicas importantes, incluida la conversión de etanol en acetaldehído y acetato en humanos, [10] donde funciona junto con la alcohol deshidrogenasa y la aldehído deshidrogenasa . En la secuencia de conversión de acetil-CoA en glucosa, CYP2E1 transforma la acetona mediante hidroxiacetona (acetol) en propilenglicol y metilglioxal , los precursores del piruvato , acetato y lactato . [11] [12] [13]

CYP2E1 también lleva a cabo el metabolismo de ácidos grasos endógenos como la hidroxilación ω-1 de ácidos grasos como el ácido araquidónico , involucrándolo en importantes vías de señalización que pueden vincularlo con la diabetes y la obesidad. [14] Por lo tanto, actúa como monooxigenasa para metabolizar el ácido araquidónico en ácido 19-hidroxieicosatetraenoico (19-HETE) (ver Ácido 20-hidroxieicosatetraenoico ). Sin embargo, también actúa como una actividad epoxigenasa para metabolizar el ácido docosahexaenoico en epóxidos , principalmente el ácido 19 R , 20 S -epoxieicosapentaenoico y los isómeros del ácido 19 S , 20 R -epoxieicosapentaenoico (denominados 19,20-EDP) y el ácido eicosapentaenoico en epóxidos, principalmente. Isómeros del ácido 17 R ,18 S -eicosatetraenoico y del ácido 17 S ,18 R -eicosatetraenoico (denominados 17,18-EEQ). [15] El 19-HETE es un inhibidor del 20-HETE, una molécula de señalización ampliamente activa; por ejemplo, contrae las arteriolas , eleva la presión arterial, promueve respuestas inflamatorias y estimula el crecimiento de varios tipos de células tumorales; sin embargo , no se ha demostrado la capacidad in vivo ni la importancia del 19-HETE para inhibir el 20-HETE (ver Ácido 20-hidroxieicosatetraenoico ). Los metabolitos EDP (ver ácido epoxidocosapentaenoico ) y EEQ (ver ácido epoxieicosatetraenoico ) tienen una amplia gama de actividades. En diversos modelos animales y estudios in vitro en tejidos animales y humanos disminuyen la hipertensión y la percepción del dolor; suprimir la inflamación; inhibir la angiogénesis , la migración de células endoteliales y la proliferación de células endoteliales; e inhibir el crecimiento y la metástasis de líneas celulares de cáncer de mama y próstata humanos. [16] [17] [18] [19] Se sugiere que los metabolitos EDP y EEQ funcionan en humanos como lo hacen en modelos animales y que, como productos de los ácidos grasos omega-3 , el ácido docosahexaenoico y el ácido eicosapentaenoico, el Los metabolitos de EDP y EEQ contribuyen a muchos de los efectos beneficiosos atribuidos a los ácidos grasos omega-3 de la dieta. [16] [19] [20] Los metabolitos de EDP y EEQ son de vida corta y se inactivan a los pocos segundos o minutos de su formación por las epóxido hidrolasas , particularmente la epóxido hidrolasa soluble , y por lo tanto actúan localmente. No se considera que CYP2E1 contribuya de manera importante a la formación de los epóxidos citados [19]pero podría actuar localmente en ciertos tejidos para hacerlo.

Sustratos

A continuación se muestra una tabla de sustratos seleccionados de CYP2E1. Cuando se enumeran clases de agentes, puede haber excepciones dentro de la clase.

Estructura

CYP2E1 exhibe motivos estructurales comunes a otras enzimas del citocromo P450 unidas a membranas humanas y está compuesto por 12 hélices α principales y 4 láminas β con hélices intermedias cortas intercaladas entre las dos. [14] Al igual que otras enzimas de esta clase, el sitio activo de CYP2E1 contiene un átomo de hierro unido por un centro hemo que media en los pasos de transferencia de electrones necesarios para llevar a cabo la oxidación de sus sustratos. El sitio activo de CYP2E1 es el más pequeño observado en las enzimas P450 humanas, y su pequeña capacidad se atribuye en parte a la introducción de una isoleucina en la posición 115. La cadena lateral de este residuo sobresale por encima del centro hemo, lo que restringe el volumen del sitio activo en comparación. a enzimas relacionadas que tienen residuos menos voluminosos en esta posición. [14] T 303 , que también sobresale en el sitio activo, es particularmente importante para el posicionamiento del sustrato sobre el centro de hierro reactivo y, por lo tanto, está altamente conservado por muchas enzimas del citocromo P450. [14] Su grupo hidroxilo está bien posicionado para donar un enlace de hidrógeno a aceptores potenciales en el sustrato, y su grupo metilo también ha sido implicado en el posicionamiento de ácidos grasos dentro del sitio activo. [25] , [26] Varios residuos próximos al sitio activo, incluido L 368 , ayudan a formar un canal de acceso hidrofóbico restringido que también puede ser importante para determinar la especificidad de la enzima hacia moléculas pequeñas y la hidroxilación ω-1 de ácidos grasos. [14]

Residuos seleccionados en el sitio activo de CYP2E1. Creado usando 3E4E (unido al inhibidor 4-metilpirazol)

.

Regulación

Regulación genética

En humanos, la enzima CYP2E1 está codificada por el gen CYP2E1 . [27] La ​​enzima se ha identificado en el hígado fetal, donde se postula que es la enzima metabolizadora de etanol predominante y puede estar relacionada con la teratogénesis mediada por etanol . [28] En ratas, al día siguiente del nacimiento, el gen hepático CYP2E1 se activa transcripcionalmente.

La expresión de CYP2E1 es fácilmente inducible y puede ocurrir en presencia de varios de sus sustratos, incluido etanol , [22] isoniazida , [22] tabaco , [29] isopropanol , [6] benceno , [6] tolueno , [6] y acetona . [6] Para el etanol específicamente, parece que existen dos etapas de inducción, un mecanismo postraduccional para una mayor estabilidad de las proteínas en niveles bajos de etanol y una inducción transcripcional adicional en niveles altos de etanol. [30]

Regulación química

CYP2E1 es inhibido por una variedad de moléculas pequeñas, muchas de las cuales actúan de manera competitiva . Dos de estos inhibidores, indazol y 4-metilpirazol , se coordinan con el átomo de hierro del sitio activo y se cristalizaron con CYP2E1 humano recombinante en 2008 para dar las primeras estructuras cristalinas verdaderas de la enzima. [14] Otros inhibidores incluyen dietilditiocarbamato [21] (en el cáncer ) y disulfiram [22] (en el alcoholismo ).

Relevancia de la enfermedad

CYP2E1 se expresa en niveles elevados en el hígado, donde actúa para eliminar las toxinas del cuerpo. [8] [9] Al hacerlo, CYP2E1 bioactiva una variedad de anestésicos comunes, incluidos el paracetamol (acetaminofén) , halotano , enflurano e isoflurano. [6] La oxidación de estas moléculas por CYP2E1 puede producir sustancias nocivas como el cloruro de ácido trifluoroacético del halotano [31] o NAPQI del paracetamol (acetaminofén) y es una de las principales razones de la hepatotoxicidad observada en los pacientes.

CYP2E1 y otras enzimas del citocromo P450 pueden producir inadvertidamente especies reactivas de oxígeno (ROS) en su sitio activo cuando la catálisis no se coordina correctamente, lo que resulta en una posible peroxidación de lípidos , así como oxidación de proteínas y ADN. [14] CYP2E1 es particularmente susceptible a este fenómeno en comparación con otras enzimas P450, lo que sugiere que sus niveles de expresión pueden ser importantes para los efectos fisiológicos negativos observados en varios estados patológicos. [14]

Los niveles de expresión de CYP2E1 se han correlacionado con una variedad de factores dietéticos y fisiológicos, como el consumo de etanol, [32] diabetes, [33] ayuno, [34] y obesidad. [35] Parece que los niveles celulares de la enzima pueden estar controlados por la chaperona molecular HSP90 , que al asociarse con CYP2E1 permite el transporte al proteosoma y su posterior degradación. El etanol y otros sustratos pueden alterar esta asociación, lo que lleva a niveles de expresión más altos observados en su presencia. [36] Por lo tanto, el aumento de la expresión de CYP2E1 que acompaña a estas condiciones de salud puede contribuir a su patogénesis al aumentar la tasa de producción de ROS en el cuerpo. [14]

Según una publicación de 1995 de Y Hu et al., un estudio en ratas reveló una elevación de 8 a 9 veces del CYP2E1 con el ayuno solo, en comparación con un aumento de 20 veces en el nivel de enzima acompañado por un aumento de 16 veces en el total. capacidad catalítica en ratas que estuvieron en ayunas y recibieron grandes cantidades de etanol durante 3 días consecutivos. La inanición parece regular positivamente la producción de ARNm de CYP2E1 en las células hepáticas, mientras que el alcohol parece estabilizar la propia enzima después de la traducción y así protegerla de la degradación por procesos proteolíticos celulares normales, dando a los dos un efecto sinérgico independiente.

Aplicaciones

Los árboles han sido modificados genéticamente para sobreexpresar la enzima CYP2E1 de conejo. Estos árboles transgénicos se han utilizado para eliminar contaminantes de las aguas subterráneas, un proceso conocido como fitorremediación . [37]

Ver también

Referencias

  1. ^ abc GRCh38: Ensembl lanzamiento 89: ENSG00000130649 - Ensembl , mayo de 2017
  2. ^ abc GRCm38: Ensembl lanzamiento 89: ENSMUSG00000025479 - Ensembl , mayo de 2017
  3. ^ "Referencia humana de PubMed:". Centro Nacional de Información Biotecnológica, Biblioteca Nacional de Medicina de EE. UU .
  4. ^ "Referencia de PubMed del ratón:". Centro Nacional de Información Biotecnológica, Biblioteca Nacional de Medicina de EE. UU .
  5. ^ Lewis DF, Lake BG, Bird MG, Loizou GD, Dickins M, Goldfarb PS (febrero de 2003). "Modelado de homología del CYP2E1 humano basado en la estructura cristalina del CYP2C5: investigación de las interacciones enzima-sustrato y enzima-inhibidor". Toxicología in Vitro . 17 (1): 93-105. doi :10.1016/s0887-2333(02)00098-x. PMID  12537967.
  6. ^ abcdef Rendic S, Di Carlo FJ (1997). "Enzimas del citocromo P450 humano: un informe de estado que resume sus reacciones, sustratos, inductores e inhibidores". Reseñas del metabolismo de los fármacos . 29 (1–2): 413–580. doi :10.3109/03602539709037591. PMID  9187528.
  7. ^ Dominio publico  Este artículo incorpora material de dominio público de "CYP2E1 citocromo P450 familia 2 subfamilia E miembro 1 [Homo sapiens (humano)]". Colección de secuencias de referencia . Centro Nacional de Información Biotecnológica .
  8. ^ ab Bièche I, Narjoz C, Asselah T, Vacher S, Marcellin P, Lidereau R, Beaune P, de Waziers I (septiembre de 2007). "Cuantificación por PCR con transcriptasa inversa de los niveles de ARNm de las familias de citocromo (CYP) 1, CYP2 y CYP3 en 22 tejidos humanos diferentes". Farmacogenética y Genómica . 17 (9): 731–42. doi :10.1097/FPC.0b013e32810f2e58. PMID  17700362. S2CID  23317899.
  9. ^ ab Shimada T, Yamazaki H, Mimura M, Inui Y, Guengerich FP (julio de 1994). "Variaciones interindividuales en las enzimas del citocromo P-450 del hígado humano implicadas en la oxidación de fármacos, carcinógenos y sustancias químicas tóxicas: estudios con microsomas hepáticos de 30 japoneses y 30 caucásicos". La Revista de Farmacología y Terapéutica Experimental . 270 (1): 414–23. PMID  8035341.
  10. ^ Hayashi S, Watanabe J, Kawajiri K (octubre de 1991). "Los polimorfismos genéticos en la región flanqueante 5' cambian la regulación transcripcional del gen del citocromo P450IIE1 humano". Revista de Bioquímica . 110 (4): 559–65. doi : 10.1093/oxfordjournals.jbchem.a123619. PMID  1778977.
  11. ^ Glew, Robert H. "Puede llegar allí desde aquí: la acetona, las cetonas aniónicas y los ácidos grasos uniformes pueden proporcionar sustratos para la gluconeogénesis". Archivado desde el original el 26 de septiembre de 2013 . Consultado el 8 de marzo de 2014 .
  12. ^ Miller ON, Bazzano G (julio de 1965). "Metabolismo del propanodiol y su relación con el metabolismo del ácido láctico". Anales de la Academia de Ciencias de Nueva York . 119 (3): 957–73. Código bibliográfico : 1965NYASA.119..957M. doi :10.1111/j.1749-6632.1965.tb47455.x. PMID  4285478. S2CID  37769342.
  13. ^ Ruddick JA (1972). "Toxicología, metabolismo y bioquímica del 1,2-propanodiol". Toxicol Appl Pharmacol . 21 (1): 102–111. doi :10.1016/0041-008X(72)90032-4. PMID  4553872.
  14. ^ abcdefghi Porubsky PR, Meneely KM, Scott EE (noviembre de 2008). "Estructuras del citocromo P-450 2E1 humano. Información sobre la unión de inhibidores y sustratos de ácidos grasos y de peso molecular pequeño". La Revista de Química Biológica . 283 (48): 33698–707. doi : 10.1074/jbc.M805999200 . PMC 2586265 . PMID  18818195. 
  15. ^ Westphal C, Konkel A, Schunck WH (noviembre de 2011). "CYP-eicosanoides: ¿un nuevo vínculo entre los ácidos grasos omega-3 y las enfermedades cardíacas?". Prostaglandinas y otros mediadores lipídicos . 96 (1–4): 99–108. doi :10.1016/j.prostaglandins.2011.09.001. PMID  21945326.
  16. ^ ab Fleming I (octubre de 2014). "La farmacología del eje citocromo P450 epoxigenasa / epóxido hidrolasa soluble en la vasculatura y la enfermedad cardiovascular". Revisiones farmacológicas . 66 (4): 1106–40. doi :10.1124/pr.113.007781. PMID  25244930. S2CID  39465144.
  17. ^ Zhang G, Kodani S, Hammock BD (enero de 2014). "Los ácidos grasos epoxigenados estabilizados regulan la inflamación, el dolor, la angiogénesis y el cáncer". Avances en la investigación de lípidos . 53 : 108–23. doi :10.1016/j.plipres.2013.11.003. PMC 3914417 . PMID  24345640. 
  18. ^ He J, Wang C, Zhu Y, Ai D (diciembre de 2015). "Epóxido hidrolasa soluble: un objetivo potencial para enfermedades metabólicas". Revista de Diabetes . 8 (3): 305–13. doi : 10.1111/1753-0407.12358 . PMID  26621325.
  19. ^ abc Wagner K, Vito S, Inceoglu B, Hammock BD (octubre de 2014). "El papel de los ácidos grasos de cadena larga y sus metabolitos epóxido en la señalización nociceptiva". Prostaglandinas y otros mediadores lipídicos . 113–115: 2–12. doi :10.1016/j.prostaglandins.2014.09.001. PMC 4254344 . PMID  25240260. 
  20. ^ Fischer R, Konkel A, Mehling H, Blossey K, Gapelyuk A, Wessel N, von Schacky C, Dechend R, Muller DN, Rothe M, Luft FC, Weylandt K, Schunck WH (marzo de 2014). "Los ácidos grasos omega-3 de la dieta modulan el perfil de eicosanoides en el hombre principalmente a través de la vía CYP-epoxigenasa". Revista de investigación de lípidos . 55 (6): 1150-1164. doi : 10.1194/jlr.M047357 . PMC 4031946 . PMID  24634501. 
  21. ^ abcde Clasificación medioambiental sueca de productos farmacéuticos Información para prescriptores (Fakta för förskrivare)
  22. ^ abcdefghijklmno Flockhart DA (2007). "Interacciones farmacológicas: tabla de interacciones farmacológicas del citocromo P450". Facultad de Medicina de la Universidad de Indiana .Recuperado en julio de 2011.
  23. ^ "Evaluación de zopiclona" (PDF) . Organización Mundial de la Salud. Medicamentos Esenciales y Productos Sanitarios . Organización Mundial de la Salud. 2006. pág. 9 (Sección 5. Farmacocinética) . Consultado el 5 de diciembre de 2015 .
  24. ^ "Verapamilo: información sobre medicamentos. Lexicomp". A hoy . Consultado el 13 de enero de 2019 .
  25. ^ Fukuda T, Imai Y, Komori M, Nakamura M, Kusunose E, Satouchi K, Kusunose M (enero de 1993). "La sustitución de Thr-303 de P450 2E1 por serina modifica la regioselectividad de su actividad hidroxilasa de ácidos grasos". Revista de Bioquímica . 113 (1): 7–12. doi : 10.1093/oxfordjournals.jbchem.a124006. PMID  8454577.
  26. ^ Fukuda T, Imai Y, Komori M, Nakamura M, Kusunose E, Satouchi K, Kusunose M (febrero de 1994). "Diferentes mecanismos de regioselección de la hidroxilación de ácidos grasos por P450, P450 2C2 y P450 2E1 que hidroxilan laurato (omega-1)". Revista de Bioquímica . 115 (2): 338–44. doi : 10.1093/oxfordjournals.jbchem.a124339. PMID  8206883.
  27. ^ Kölble K (diciembre de 1993). "Mapeo regional de repeticiones cortas en tándem en el cromosoma 10 humano: gen CYP2E, D10S196, D10S220 y D10S225 del citocromo P450". Genómica . 18 (3): 702–4. doi :10.1016/S0888-7543(05)80378-7. PMID  8307581.
  28. ^ Raucy JL, Schultz ED, Wester MR, Arora S, Johnston DE, Omdahl JL, Carpenter SP (diciembre de 1997). "Citocromo P450 2E1 de linfocitos humanos, un supuesto marcador de cambios mediados por alcohol en la actividad de la clorzoxazona hepática". Metabolismo y disposición de fármacos . 25 (12): 1429–35. PMID  9394034.
  29. ^ Desai HD, Seabolt J, Jann MW (2001). "Fumar en pacientes que reciben medicamentos psicotrópicos: una perspectiva farmacocinética". Fármacos del SNC . 15 (6): 469–94. doi :10.2165/00023210-200115060-00005. PMID  11524025. S2CID  13197188.
  30. ^ Lieber CS (junio de 1999). "Sistema microsomal de oxidación de etanol (MEOS): los primeros 30 años (1968-1998) - una revisión". Alcoholismo: investigación clínica y experimental . 23 (6): 991–1007. doi :10.1111/j.1530-0277.1999.tb04217.x. PMID  10397283.
  31. ^ Ray DC, Drummond GB (julio de 1991). "Hepatitis por halotano". Revista británica de anestesia . 67 (1): 84–99. doi : 10.1093/bja/67.1.84 . PMID  1859766.
  32. ^ Nanji AA, Zhao S, Sadrzadeh SM, Dannenberg AJ, Tahan SR, Waxman DJ (octubre de 1994). "La inducción del citocromo P450 2E1 y la peroxidación lipídica notablemente mejoradas se asocian con una lesión hepática grave en ratas alimentadas con aceite de pescado y etanol". Alcoholismo: investigación clínica y experimental . 18 (5): 1280–5. doi :10.1111/j.1530-0277.1994.tb00119.x. PMID  7847620.
  33. ^ Koide CL, Collier AC, Berry MJ, Panee J (enero de 2011). "El efecto del extracto de bambú sobre las enzimas biotransformadoras hepáticas: hallazgos de un modelo de ratón obeso-diabético". Revista de Etnofarmacología . 133 (1): 37–45. doi : 10.1016/j.jep.2010.08.062. PMC 3471658 . PMID  20832461. 
  34. ^ Johansson I, Ekström G, Scholte B, Puzycki D, Jörnvall H, Ingelman-Sundberg M (marzo de 1988). "Citocromos P-450 inducibles por etanol, ayuno y acetona en hígado de rata: regulación y características de las enzimas pertenecientes a las subfamilias de genes IIB y IIE". Bioquímica . 27 (6): 1925–34. doi :10.1021/bi00406a019. PMID  3378038.
  35. ^ Raucy JL, Lasker JM, Kraner JC, Salazar DE, Lieber CS, Corcoran GB (marzo de 1991). "Inducción del citocromo P450IIE1 en la rata obesa sobrealimentada". Farmacología molecular . 39 (3): 275–80. PMID  2005876.
  36. ^ Kitam VO, Maksymchuk OV, Chashchyn MO (17 de diciembre de 2012). "Los posibles mecanismos de interacciones de CYP2E1 con HSP90 y la influencia del etanol sobre ellos". Biología estructural BMC . 12 (1): 33. doi : 10.1186/1472-6807-12-33 . PMC 3544703 . PMID  23241420. 
  37. ^ Doty SL, James CA, Moore AL, Vajzovic A, Singleton GL, Ma C, Khan Z, Xin G, Kang JW, Park JY, Meilan R, Strauss SH, Wilkerson J, Farin F, Strand SE (octubre de 2007). "Fitorremediación mejorada de contaminantes ambientales volátiles con árboles transgénicos". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 104 (43): 16816-21. Código Bib : 2007PNAS..10416816D. doi : 10.1073/pnas.0703276104 . PMC 2040402 . PMID  17940038. 

Otras lecturas

enlaces externos