En agricultura y jardinería , el trasplante o replantación es la técnica de trasladar una planta de un lugar a otro. La mayoría de las veces, esto se hace partiendo de una semilla en condiciones óptimas, como en un invernadero o en un vivero protegido , para luego replantarla en otro lugar de cultivo, normalmente al aire libre. La máquina agrícola que hace esto se llama trasplantadora . Esto es común en la horticultura y la agricultura de camiones, donde plantar o plantar son sinónimos de trasplantar. En la horticultura de algunas plantas ornamentales , los trasplantes se utilizan con poca frecuencia y con cuidado porque conllevan un riesgo significativo de matar la planta. [1]
El trasplante tiene una variedad de aplicaciones, entre ellas:
Las distintas especies y variedades reaccionan de forma diferente al trasplante; para algunas, no es recomendable. En todos los casos, la principal preocupación es evitar el shock del trasplante (el estrés o el daño recibido en el proceso). Las plantas cultivadas en condiciones protegidas suelen necesitar un período de aclimatación , conocido como endurecimiento (véase también resistencia a las heladas ). Además, se debe minimizar la perturbación de las raíces . La etapa de crecimiento en la que se realiza el trasplante, las condiciones climáticas durante el trasplante y el tratamiento inmediatamente después del trasplante son otros factores importantes.
Los productores comerciales emplean lo que se denomina producción de trasplantes en contenedores y no en contenedores. [2]
Los trasplantes en contenedores o tapones permiten trasplantar plantas cultivadas por separado con las raíces y el suelo intactos. Por lo general, se cultivan en macetas de turba (una maceta hecha de turba comprimida ), bloques de tierra (bloques de tierra comprimidos), macetas de papel o recipientes de múltiples celdas como paquetes de plástico (de cuatro a doce celdas) o bandejas de tapones más grandes hechas de plástico o poliestireno. [3]
Los trasplantes que no se realizan en contenedores se cultivan normalmente en camas o bancos de invernadero, al aire libre en el suelo con cobertores de hileras y semilleros, y en el suelo en campo abierto. [4] [2] Las plantas se extraen con las raíces desnudas para el trasplante, que es menos costoso que los trasplantes en contenedores, pero con rendimientos más bajos debido a un restablecimiento más deficiente de la planta. [4]
El material de plantación en contenedores se clasifica según el tipo y el tamaño del contenedor utilizado. Se ha utilizado una gran variedad de contenedores, con distintos grados de éxito. Algunos contenedores están diseñados para ser plantados con el árbol, por ejemplo, la maceta de papel alquitranado, la salchicha de turba de Alberta, la bala cuadrada de Walters y los sistemas de maceta de papel, que se llenan con un medio de enraizamiento y se plantan con el árbol (Tinus y McDonald 1979). [5] También se plantan con el árbol otros contenedores que no se llenan con un medio de enraizamiento, sino que el contenedor es un bloque moldeado de medio de cultivo, como Polyloam, Tree Start y BR-8 Blocks.
Los diseños de contenedores para el cultivo de material vegetal han sido muchos y variados. El material de abeto blanco en contenedores es ahora la norma. La mayoría de los contenedores tienen forma de tubo; tanto el diámetro como el volumen afectan al crecimiento del abeto blanco (Hocking y Mitchell 1975, Carlson y Endean 1976). [6] [7] El abeto blanco cultivado en un contenedor con una relación altura:diámetro de 1:1 produjo un peso seco significativamente mayor que aquellos en contenedores con configuraciones altura:diámetro de 3:1 y 6:1. El peso seco total y la longitud de los brotes aumentaron con el aumento del volumen del contenedor.
Cuanto mayor sea la bolsa, menos se utilizará por unidad de superficie. Sin embargo, la ventaja biológica del tamaño ha sido suficiente para influir en un cambio pronunciado hacia contenedores más grandes en Columbia Británica (Coates et al. 1994). [8] El número de tapones de poliestireno PSB211 (2 cm de diámetro superior, 11 cm de largo) pedidos en Columbia Británica disminuyó de 14.246.000 en 1981 a cero en 1990, mientras que los pedidos de tapones de poliestireno PSB415 (4 cm de diámetro superior, 15 cm de largo) aumentaron en el mismo período de 257.000 a 41.008.000, aunque es más caro criar, distribuir y plantar existencias grandes que pequeñas.
Otros contenedores no se plantan con el árbol, por ejemplo, los sistemas de contenedores Styroblock, Superblock, Copperblock y Miniblock, producen plántulas de Styroplug con raíces en un tapón cohesivo de medio de cultivo. Las cavidades del tapón varían en volumen mediante varias combinaciones de diámetro superior y profundidad, de 39 a 3260 ml, pero las más comúnmente utilizadas, al menos en Columbia Británica, están en el rango de 39 ml a 133 ml (Van Eerden y Gates 1990). [9] El tapón Styroblock BC-CFS, desarrollado en 1969/70, se ha convertido en el tipo de material dominante para el abeto de interior en Columbia Británica (Van Eerden y Gates 1990, Coates et al. 1994). [9] [8] Los tamaños de los tapones se indican mediante una designación de 3 cifras, la primera de las cuales da el diámetro superior y las otras 2 cifras la profundidad de la cavidad del tapón, ambas dimensiones son aproximaciones en centímetros. La demanda de tapones más grandes ha aumentado considerablemente (Tabla 6.24; Coates et al. 1994). [8] El ganado criado en algunos tamaños de tapones puede variar en cuanto a edad. En Columbia Británica, por ejemplo, los tapones PSB 415 y PSB 313 se crían como 1+0 o 2+0. Los tapones PSB 615 rara vez se crían en otro estado que no sea 2+0.
Inicialmente, la intención era dejar los tapones in situ en los bloques de poliestireno hasta inmediatamente antes de la plantación, pero esto provocó problemas logísticos y redujo la eficiencia de las operaciones de plantación. Parece que no se han realizado estudios para comparar el rendimiento del material extraído y envasado con el del material in situ , pero el material envasado ha tenido un buen rendimiento y no ha dado indicios de problemas.
Como lo recomiendan Coates et al. (1994), [8] lo mejor es mantener el material de plantación descongelado que se lleva al campo a una temperatura fresca de entre 1 °C y 2 °C con una humedad relativa superior al 90 % (Ronco 1972a). [10] Durante unos días, se pueden tolerar temperaturas de almacenamiento de alrededor de 4,5 °C y humedades de alrededor del 50 %. Binder y Fielder (1988) [11] recomendaron que las plántulas en cajas recuperadas del almacenamiento en frío no se expongan a temperaturas superiores a los 10 °C. Los camiones frigoríficos que se utilizan habitualmente para el transporte y el almacenamiento in situ normalmente "mantienen las plántulas a una temperatura de entre 2 °C y 4 °C" (Mitchell et al. 1980). [12] Ronco (1972a, b) [10] [13] advirtió contra el uso de hielo seco (dióxido de carbono sólido) para enfriar las plántulas; afirmó que la respiración y el transporte de agua en las plántulas se ven alterados por las altas concentraciones de dióxido de carbono gaseoso.
Las plantas de coníferas se suelen almacenar congeladas, generalmente a -2 °C, durante períodos prolongados y luego se almacenan en frío (+2 °C) para descongelar el cepellón antes de trasplantarlas. La descongelación es necesaria si las plántulas congeladas no se pueden separar unas de otras y algunos la han defendido para evitar la posible pérdida de contacto entre el cepellón y el suelo con la contracción del cepellón al derretirse el hielo en el cepellón. La actividad fisiológica también es mayor en almacenamiento en frío que en congelado, pero las plántulas de abeto de interior y abeto de Engelmann que se plantaron mientras aún estaban congeladas solo tuvieron efectos fisiológicos breves y transitorios, incluido el potencial hídrico del xilema (Camm et al. 1995, Silem y Guy 1998). [14] [15] Después de una temporada de crecimiento, los parámetros de crecimiento no difirieron entre las plántulas plantadas congeladas y las plantadas descongeladas.
Los estudios sobre prácticas de almacenamiento y plantación se han centrado generalmente en los efectos de la duración del almacenamiento congelado y los efectos del posterior almacenamiento en frío (por ejemplo, Ritchie et al. 1985, Chomba et al. 1993, Harper y Camm 1993). [16] [17] [18] Las revisiones de técnicas de almacenamiento en frío han prestado poca atención al proceso de descongelación (Camm et al. 1994), [19] o simplemente han señalado que es poco probable que la velocidad de descongelación cause daños ( McKay 1997). [20]
Kooistra y Bakker (2002) [21] observaron varias líneas de evidencia que sugieren que el almacenamiento en frío puede tener efectos negativos en la salud de las plántulas. La tasa de respiración es más rápida durante el almacenamiento en frío que en el almacenamiento congelado, por lo que las reservas de carbohidratos se agotan más rápidamente. Ciertamente, en ausencia de luz durante el almacenamiento en frío, y en un grado indeterminado si las plántulas están expuestas a la luz (inusual), las reservas de carbohidratos se agotan (Wang y Zwiacek 1999). [22] Además, Silem y Guy (1998), [15] por ejemplo, encontraron que las plántulas de abeto de interior tenían reservas totales de carbohidratos significativamente más bajas si se almacenaban durante 2 semanas a 2 °C que si se descongelaban rápidamente durante 24 horas a 15 °C. Las plántulas pueden perder rápidamente la resistencia al frío en el almacenamiento en frío a través del aumento de la respiración y el consumo de azúcares intracelulares que funcionan como crioprotectores (Ogren 1997). [23] Además, el agotamiento de las reservas de carbohidratos perjudica la capacidad de las plántulas para generar crecimiento radicular. Por último, los mohos durante el almacenamiento son un problema mucho mayor durante el almacenamiento en frío que durante el almacenamiento congelado.
Por lo tanto, Kooistra y Bakker (2002), [21] probaron la hipótesis de que tal descongelación es innecesaria. Se plantaron plántulas de 3 especies, incluida la picea de interior, con tapones de raíz congelados (plántulas congeladas) y con tapones de raíz descongelados (plántulas descongeladas). Los tapones de raíz descongelados se calentaron a la temperatura del suelo en aproximadamente 20 minutos; los tapones de raíz congelados tardaron aproximadamente 2 horas, y el hielo en el tapón tuvo que derretirse antes de que la temperatura pudiera subir por encima de cero. El tamaño del tapón de raíz influyó en el tiempo de descongelación. Estas plantaciones se realizaron en suelo cálido según los estándares boreales , y las plántulas con tapones congelados podrían comportarse de manera diferente si se trasplantan en suelo a temperaturas más típicas de los sitios de plantación en primavera y a grandes elevaciones. La fluorescencia variable no difirió entre las plántulas descongeladas y congeladas. La brotación no fue más rápida entre las plántulas de picea de interior descongeladas que entre las congeladas. El rendimiento en el campo no difirió entre las plántulas descongeladas y congeladas.
