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Criopreservación de semen

La criopreservación de semen (comúnmente llamada banco de esperma o congelación de esperma ) es un procedimiento para preservar las células espermáticas. El semen se puede utilizar con éxito de forma indefinida [ cita requerida ] después de la criopreservación . Se puede utilizar para la donación de esperma cuando el receptor desea el tratamiento en un momento o lugar diferente, o como un medio para preservar la fertilidad en el caso de los hombres que se someten a una vasectomía o a tratamientos que pueden comprometer su fertilidad, como la quimioterapia , la radioterapia o la cirugía. También lo utilizan a menudo las mujeres trans antes de realizar una transición médica que afecte a la fertilidad, como la terapia hormonal feminizante y las orquiectomías .

Congelación

El crioprotector más común utilizado para el semen es el glicerol (10% en el medio de cultivo). A menudo se añade sacarosa u otros di- , trisacáridos a la solución de glicerol. Los medios crioprotectores pueden complementarse con yema de huevo o lecitina de soja, y los dos no tienen diferencias estadísticamente significativas entre sí en cuanto a motilidad, morfología, capacidad de unirse al hialuronato in vitro o integridad del ADN después de la descongelación. [1]

Se pueden utilizar crioprotectores adicionales para aumentar la viabilidad de los espermatozoides y las tasas de fertilidad después de la congelación. El tratamiento de los espermatozoides con proteínas de unión a heparina antes de la criopreservación mostró una disminución de las lesiones criogénicas y la generación de ROS. [2] La adición de factor de crecimiento nervioso como crioprotector disminuye las tasas de muerte de los espermatozoides y aumenta la motilidad después de la descongelación. [3] La incorporación de colesterol en las membranas de los espermatozoides con el uso de ciclodextrinas antes de la congelación también aumenta la viabilidad de los espermatozoides. [4]

El semen se congela mediante un método de enfriamiento lento y controlado ( congelación lenta programable o SPF) o mediante un proceso de congelación ultrarrápida más reciente conocido como vitrificación . La vitrificación proporciona una motilidad y una criosupervivencia superiores a la congelación lenta programable . [5] Esta técnica actual, inventada por los japoneses, se utiliza en los mejores centros del mundo. Es extremadamente rápida (-23000 °C/min), por lo que evita la aparición de pequeños cristales de hielo, lo que evita el efecto "cuchillo".

Descongelación

La descongelación a 40 °C (104 °F) parece dar como resultado una motilidad óptima de los espermatozoides. Por otra parte, la temperatura exacta de descongelación parece tener solo un efecto menor en la viabilidad de los espermatozoides, el estado acrosómico, el contenido de ATP y el ADN. [6] Al igual que con la congelación, se han desarrollado varias técnicas para el proceso de descongelación, ambas analizadas por Di Santo et al. [7]

Recongelación

En cuanto al nivel de fragmentación del ADN de los espermatozoides , se pueden realizar hasta tres ciclos de congelación y descongelación sin que se produzca un nivel de riesgo significativamente mayor que tras un único ciclo de congelación y descongelación, siempre que las muestras se vuelvan a congelar en su crioprotector original y no se sometan a un lavado de espermatozoides ni a ninguna otra alteración entre medias, y siempre que se separen mediante centrifugación en gradiente de densidad o swim-up antes de su uso en tecnología de reproducción asistida . [8]

Efecto sobre la calidad

Algunas evidencias sugieren un aumento de las roturas de cadena sencilla , la condensación y la fragmentación del ADN en los espermatozoides después de la criopreservación. Esto puede aumentar potencialmente el riesgo de mutaciones en el ADN de la descendencia. Los antioxidantes y el uso de regímenes de enfriamiento bien controlados podrían mejorar potencialmente los resultados. [9]

En estudios de seguimiento a largo plazo, no se ha encontrado evidencia de un aumento de defectos congénitos o anomalías cromosómicas en personas concebidas a partir de esperma criopreservado en comparación con la población general. [9]

Véase también

Referencias

  1. ^ Reed, ML; Ezeh, PC; Hamic, A; Thompson, DJ; Caperton, CL (2009). "La lecitina de soja reemplaza a la yema de huevo para la criopreservación de esperma humano sin afectar negativamente la motilidad post-descongelación, la morfología, la integridad del ADN del esperma o la unión del esperma al hialuronato". Fertilidad y esterilidad . 92 (5): 1787–1790. doi : 10.1016/j.fertnstert.2009.05.026 . PMID  19539916.
  2. ^ Patel, M; Gandotra, VK; Cheema, RS; Bansal, AK; Kumar, A (2016). "Las proteínas de unión a heparina del plasma seminal mejoran la calidad del semen al reducir el estrés oxidativo durante la criopreservación del semen de toro bovino". Revista asiática-australasia de ciencias animales . 29 (9): 1247–1255. doi :10.5713/ajas.15.0586. PMC 5003984 . PMID  26954172. 
  3. ^ Saeednia, S; Bahadoran, H; Amidi, F; Asadi, MH; Naji, M; Fallahi, P; Nejad, NA (2015). "Factor de crecimiento nervioso en el semen humano: efecto del factor de crecimiento nervioso en los hombres normozoospérmicos durante el proceso de criopreservación". Revista iraní de ciencias médicas básicas . 18 (3): 292–299. doi :10.22038/IJBMS.2015.4134. PMC 4414996 . PMID  25945243. 
  4. ^ Purdy, PH; Graham, JK (2004). "Efecto de la ciclodextrina cargada de colesterol en la criosupervivencia del esperma de toro". Criobiología . 48 (1): 36–45. doi :10.1016/j.cryobiol.2003.12.001. PMID  14969680.
  5. ^ Vutyavanich, T; Piromlertamorn, W; Nunta, S (2010). "Congelación rápida versus congelación lenta programable de espermatozoides humanos". Fertilidad y esterilidad . 93 (6): 1921–1928. doi : 10.1016/j.fertnstert.2008.04.076 . PMID  19243759.
  6. ^ Calamera, JC; Buffone, MG; Doncel, GF; Brugo-Olmedo, S; de Vincentiis, S; Calamera, MM; Storey, BT; Alvarez, JG (2010). "Efecto de la temperatura de descongelación en la recuperación de la motilidad de espermatozoides humanos criopreservados". Fertilidad y esterilidad . 93 (3): 789–794. doi : 10.1016/j.fertnstert.2008.10.021 . hdl : 11336/14695 . PMID  19059590.
  7. ^ Di Santo, M; Tarozzi, N; Nadalini, M; Borini, A (2012). "Crioconservación de esperma humano: actualización de las técnicas, efecto sobre la integridad del ADN e implicaciones para la tecnología de reproducción asistida". Avances en urología . 2012 : 854837. doi : 10.1155/2012/854837 . PMC 3238352. PMID  22194740 . 
  8. ^ Thomson, LK; Fleming, SD; Barone, K; Zieschang, JA; Clark, AM (2010). "El efecto de la congelación y descongelación repetidas en la fragmentación del ADN del esperma humano". Fertilidad y esterilidad . 93 (4): 1147–1156. doi : 10.1016/j.fertnstert.2008.11.023 . PMID  19135665.
  9. ^ ab Kopeika, J.; Thornhill, A.; Khalaf, Y. (2014). "El efecto de la criopreservación en el genoma de gametos y embriones: principios de criobiología y evaluación crítica de la evidencia". Actualización de la reproducción humana . 21 (2): 209–227. doi : 10.1093/humupd/dmu063 . PMID  25519143.