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Epitelio olfativo

El epitelio olfatorio es un tejido epitelial especializado dentro de la cavidad nasal que participa en el olfato . En los seres humanos, mide 5 cm 2 (0,78 pulgadas cuadradas) [1] y se encuentra en el techo de la cavidad nasal, aproximadamente 7 cm (2,8 pulgadas) por encima y detrás de las fosas nasales. [2] El epitelio olfativo es la parte del sistema olfativo directamente responsable de detectar los olores .

Estructura

El epitelio olfatorio consta de cuatro tipos de células distintas: [3]

Neuronas sensoriales olfativas

Las neuronas receptoras olfatorias son neuronas sensoriales del epitelio olfatorio. Son neuronas bipolares y sus polos apicales expresan receptores de olores en cilios no móviles en los extremos del botón dendrítico , [4] que se extienden hacia el espacio aéreo para interactuar con los olores. Los receptores de olores se unen a los olores en el espacio aéreo, que se vuelven solubles gracias a las secreciones serosas de las glándulas olfativas ubicadas en la lámina propia de la mucosa. [5] Los axones de las neuronas sensoriales olfatorias se congregan para formar el nervio olfatorio (CN I). Una vez que los axones pasan a través de la placa cribiforme , terminan y hacen sinapsis con las dendritas de las células mitrales en los glomérulos del bulbo olfatorio .

Células de soporte

De manera análoga a las células gliales neurales , las células de soporte son células no neurales del epitelio olfatorio que se encuentran en la capa apical del epitelio columnar ciliado pseudoestratificado. Hay dos tipos de células de sostén en el epitelio olfatorio: células sustentaculares y células microvillares. Las células sustentaculares funcionan como soporte metabólico y físico del epitelio olfatorio. Las células microvillares son otra clase de células de soporte que son morfológica y bioquímicamente distintas de las células sustentaculares y surgen de una población de células basales que expresa la proteína de superficie celular c-KIT . [6]

Células basales

Las células basales , que descansan sobre o cerca de la lámina basal del epitelio olfatorio, son células madre capaces de dividirse y diferenciarse en células de soporte u olfatorias. Si bien algunas de estas células basales se dividen rápidamente, una proporción significativa permanece relativamente inactiva y repone las células epiteliales olfatorias según sea necesario. Esto lleva a que el epitelio olfatorio se reemplace cada 6 a 8 semanas. [7]

Las células basales se pueden dividir según sus características celulares e histológicas en dos poblaciones: las células basales horizontales, que se dividen lentamente como células de reserva que expresan p63; y células basales globosas, que son una población heterogénea de células que consta de células de reserva, células progenitoras amplificadoras y células precursoras inmediatas. [8]

Celdas de cepillo

Una célula en cepillo es una célula columnar que contiene microvellosidades y cuya superficie basal está en contacto con las terminaciones nerviosas aferentes del nervio trigémino (CN V) y está especializada en la transducción de la sensación general.

Glándulas olfativas (de Bowman)

Glándulas secretoras serosas tubuloalveolares situadas en la lámina propia de la mucosa olfatoria . Estas glándulas liberan una secreción proteica a través de conductos hacia la superficie de la mucosa. La función de las secreciones es atrapar y disolver sustancias olorosas para las neuronas bipolares. El flujo constante de las glándulas olfativas permite que los viejos olores se eliminen constantemente. [5]

Desarrollo

Un dibujo esquemático de los componentes del epitelio olfatorio embrionario. ORN = neurona receptora olfatoria , OEC = célula envolvente olfatoria

El epitelio olfatorio deriva de dos estructuras durante el desarrollo embrionario : la placoda olfatoria , que durante mucho tiempo se creyó que era su único origen; y células de la cresta neural , cuyas contribuciones se han identificado más recientemente mediante estudios de mapeo del destino . [9]

El epitelio olfatorio embrionario consta de menos tipos de células que en el adulto, incluidas células progenitoras apicales y basales , así como neuronas sensoriales olfatorias inmaduras . [9] La neurogénesis embrionaria temprana se basa principalmente en las células apicales, mientras que la neurogénesis embrionaria en etapas posteriores y la neurogénesis secundaria en adultos se basa en las células madre basales. [10] Los axones de las neuronas sensoriales olfativas inmaduras , junto con una población mixta de células migratorias , incluidas las células envolventes olfativas inmaduras y las neuronas de la hormona liberadora de gonadotropina, forman una "masa migratoria" que viaja hacia el bulbo olfativo . [9] [10] Al final de la etapa embrionaria, el epitelio se convierte en un epitelio columnar pseudoestratificado y comienza la neurogénesis secundaria. [9]

Placoda olfativa

La señalización de morfógenos embrionarios en la placoda olfatoria y las células de la cresta neural contribuye a la formación de tejido neurogénico y no neurogénico del epitelio olfatorio.

Las placodas son agregaciones focales y transitorias de ectodermo ubicadas en la región de desarrollo de la futura cabeza del vertebrado y dan lugar a órganos sensoriales . [11] Las primeras placodas sensoriales craneales están marcadas por la expresión de Six1 , parte de la familia Six de factores de transcripción que regulan la especificación del ectodermo preplacodal. [12] La placoda olfativa se forma como dos engrosamientos de la región no neural del ectodermo embrionario . [13] En ratones, la placoda olfativa se deriva de una porción anterior del tubo neural , aproximadamente entre 9 y 9,5 días después del desarrollo y poco después del cierre de la placa neural . [9] El desarrollo de la placoda olfatoria requiere la presencia de tejido mesenquimatoso subyacente derivado de la cresta neural . [12] La especificación del tejido placoda olfativo implica la señalización de múltiples redes genéticas , comenzando con señales de proteínas morfogenéticas óseas (BMP), ácido retinoico (RA) y factor de crecimiento de fibroblastos (FGF), específicamente FGF8 . [14] La expresión regulada resultante de factores de transcripción , como Pax6 , Dlx3 , Sox2 y otros, dentro de la presunta placa olfativa, es crucial para la subregionalización dentro del futuro epitelio olfativo y es responsable de la diversidad de células que componen el futuro epitelio. [9] [12] [15]

Al igual que las otras placodas embrionarias, la placoda olfativa da lugar a estructuras tanto neurales como no neurales, lo que en última instancia da como resultado la formación del epitelio nasal. [16] La especificación del tejido neural versus no neural implica señales tanto dentro de la placoda olfatoria como entre la placoda olfatoria y el compartimento mesenquimatoso subyacente . [12] La señalización continua por BMP, FGF y RA, los morfógenos que inicialmente indujeron la formación de placodas, coordinan colectivamente el patrón del tejido de la placoda olfatoria en los distintos tipos de células futuras que conforman el epitelio olfatorio. [16] Los tipos de células derivadas de la placa olfativa incluyen: [17]

Sin embargo, también existe evidencia significativa de un origen adicional de la cresta neural para muchos de estos tipos de células. [13]

Desarrollo de las neuronas sensoriales olfativas.

Las neuronas sensoriales olfativas (OSN) expresan receptores odorantes. Los axones de las OSN que expresan los mismos receptores olfativos convergen en el mismo glomérulo en el bulbo olfatorio, lo que permite la organización de la información olfativa.

El olfato resulta del desarrollo adecuado y la interacción de los dos componentes de la vía olfatoria primaria : el epitelio olfatorio y el bulbo olfatorio . [18] El epitelio olfatorio contiene neuronas sensoriales olfatorias , cuyos axones inervan el bulbo olfatorio. Para que las neuronas sensoriales olfativas funcionen correctamente, deben expresar receptores odorantes y las proteínas de transducción adecuadas en los cilios no móviles que se extienden desde el botón dendrítico , además de proyectar sus axones al bulbo olfativo. [19]

Las células del epitelio olfatorio, incluidas las neuronas sensoriales olfatorias, comienzan a diferenciarse poco después de la inducción de la placoda olfatoria . Una vez que las neuronas sensoriales olfativas se diferencian, expresan receptores odorantes, que transducen información odorífera del medio ambiente al sistema nervioso central y ayudan en el desarrollo del mapa odorífero. [20] Las neuronas sensoriales olfativas diferenciadas extienden los axones pioneros , que siguen señales de guía liberadas por el mesénquima subyacente , así como otras señales quimiotróficas liberadas desde el telencéfalo . [10] A medida que avanza el desarrollo de la vía olfatoria, más axones inervan el bulbo olfatorio, que se desarrolla desde la región más rostral del telencéfalo. La organización y el procesamiento posterior de la información olfativa es posible debido a la convergencia de los axones de las neuronas sensoriales olfativas que expresan los mismos receptores odorantes en el mismo glomérulo en el bulbo olfatorio. [21]

Significación clínica

El epitelio olfativo puede dañarse por la inhalación de vapores tóxicos, lesiones físicas en el interior de la nariz y posiblemente por el uso de algunos aerosoles nasales. Debido a su capacidad regenerativa, el daño al epitelio olfatorio puede ser temporal pero, en casos extremos, la lesión puede ser permanente y provocar anosmia .

Imágenes Adicionales

Ver también

Referencias

  1. ^ Gizurarson, S. (2012). Factores anatómicos e histológicos que afectan la administración intranasal de fármacos y vacunas. Entrega actual de medicamentos, 9(6), 566–582. doi:10.2174/156720112803529828 10.2174/156720112803529828
  2. ^ Morán, David T.; Rowley Jc, 3º; Jafek, BW; Lovell, MA (1982), "La fina estructura de la mucosa olfativa en el hombre", Journal of Neurocytology , 11 (5): 721–746, doi :10.1007/BF01153516, PMID  7143026, S2CID  25263022{{citation}}: Mantenimiento CS1: nombres numéricos: lista de autores ( enlace )
  3. ^ Ross, MH, Histología: texto y atlas , quinta edición. Filadelfia: Lippincott, Williams y Wilkins, 2006. páginas 615-616.
  4. ^ "Perilla dendrítica". genoma de levadura.org . Consultado el 28 de julio de 2019 .
  5. ^ ab Ross, MH, Histología: texto y atlas , quinta edición. Filadelfia: Lippincott, Williams y Wilkins, 2006. página 616.
  6. ^ Goss, Garrett M.; Chaudhari, Nirupa; Hare, Josué M.; Nwojo, Rafael; Seidler, Bárbara; Saur, Dieter; Goldstein, Bradley J. (1 de marzo de 2016). "Potencial de diferenciación de progenitores olfativos individuales de c-Kit + determinado mediante rastreo de linaje multicolor". Neurobiología del desarrollo . 76 (3): 241–251. doi :10.1002/dneu.22310. ISSN  1932-846X. PMC 4662645 . PMID  26016700. 
  7. ^ Purves, Dale; Agustín, George J.; Fitzpatrick, David; Katz, Lorenzo C.; LaMantia, Anthony-Samuel; McNamara, James O.; Williams, S. Mark (1 de enero de 2001). "El epitelio olfativo y las neuronas receptoras olfativas". {{cite journal}}: Citar diario requiere |journal=( ayuda )
  8. ^ Schwob, James E.; Jang, Woochan; Holbrook, Eric H.; Lin, Brian; Herrick, Daniel B.; Peterson, Jesse N.; Hewitt Coleman, Julie (1 de marzo de 2017). "Células madre y progenitoras del epitelio olfatorio de mamíferos: tomando licencia poiética". Revista de Neurología Comparada . 525 (4): 1034-1054. doi :10.1002/cne.24105. ISSN  1096-9861. PMC 5805156 . PMID  27560601. 
  9. ^ abcdef Suzuki, junio; Osumi, Noriko (1 de enero de 2015). Contribuciones de la cresta neural y la placoda al desarrollo olfativo . vol. 111, págs. 351–374. doi :10.1016/bs.ctdb.2014.11.010. ISBN 9780124077591. ISSN  1557-8933. PMID  25662265. {{cite book}}: |journal=ignorado ( ayuda )
  10. ^ abc Treloar, Helen B.; Miller, Alexandra M.; Ray, Arundhati; Greer, Charles A. (1 de enero de 2010). Menini, Anna (ed.). La neurobiología del olfato. Fronteras en neurociencia. Boca Ratón (FL): CRC Press/Taylor & Francis. ISBN 9781420071979. PMID  21882426.
  11. ^ Whitlock, Kathleen E. (1 de enero de 2004). "Un nuevo modelo para el desarrollo de placodas olfativas". Cerebro, comportamiento y evolución . 64 (3): 126-140. doi :10.1159/000079742. ISSN  0006-8977. PMID  15353905. S2CID  46531167.
  12. ^ abcd Moody, Sally A.; LaMantia, Anthony-Samuel (1 de enero de 2015). "Regulación transcripcional del desarrollo de la placoda sensorial craneal" . vol. 111, págs. 301–350. doi :10.1016/bs.ctdb.2014.11.009. ISBN 9780124077591. ISSN  1557-8933. PMC  4425424 . PMID  25662264. {{cite book}}: |journal=ignorado ( ayuda )
  13. ^ ab Forni, Paolo E.; Wray, Susan (1 de octubre de 2012). "Cresta neural y sistema olfativo: nueva perspectiva". Neurobiología Molecular . 46 (2): 349–360. doi :10.1007/s12035-012-8286-5. ISSN  1559-1182. PMC 3586243 . PMID  22773137. 
  14. ^ Maier, Esther C.; Whitfield, Tanya T. (1 de diciembre de 2014). "La señalización de RA y FGF es necesaria en la vesícula ótica del pez cebra para modelar y mantener las identidades óticas ventrales". PLOS Genética . 10 (12): e1004858. doi : 10.1371/journal.pgen.1004858 . ISSN  1553-7404. PMC 4256275 . PMID  25473832. 
  15. ^ Bhattacharyya, Sujata; Bronner-Fraser, Marianne (1 de diciembre de 2008). "Competencia, especificación y compromiso con un destino de placa olfativa". Desarrollo . 135 (24): 4165–4177. doi : 10.1242/dev.026633 . ISSN  0950-1991. PMID  19029046.
  16. ^ ab Maier, Esther C.; Saxena, Ankur; Alsina, Berta; Bronner, Marianne E.; Whitfield, Tanya T. (1 de mayo de 2014). "Placodas sensacionales: neurogénesis en los sistemas ótico y olfativo". Biología del desarrollo . 389 (1): 50–67. doi :10.1016/j.ydbio.2014.01.023. ISSN  1095-564X. PMC 3988839 . PMID  24508480. 
  17. ^ Farbman, AI (1 de febrero de 1994). "Biología del desarrollo de las neuronas sensoriales olfativas". Seminarios de Biología Celular . 5 (1): 3–10. doi :10.1006/scel.1994.1002. ISSN  1043-4682. PMID  8186394.
  18. ^ Ravi, Namasivayam; Sánchez-Guardado, Luis; Luisa, Carlos; Kelsch, Wolfgang (1 de marzo de 2017). "Determinación de la conectividad de neuronas recién nacidas en circuitos olfativos de mamíferos". Ciencias de la vida celulares y moleculares . 74 (5): 849–867. doi :10.1007/s00018-016-2367-y. ISSN  1420-9071. PMID  27695873. S2CID  36297243.
  19. ^ Purves, Dale; Agustín, George J.; Fitzpatrick, David; Katz, Lorenzo C.; LaMantia, Anthony-Samuel; McNamara, James O.; Williams, S. Mark (1 de enero de 2001). "La transducción de señales olfativas". {{cite journal}}: Citar diario requiere |journal=( ayuda )
  20. ^ Valle-Leija, Pablo (1 de enero de 2015). "La señalización de los receptores odorantes instruye el desarrollo y la plasticidad del mapa glomerular". Plasticidad neuronal . 2015 : 975367. doi : 10.1155/2015/975367 . ISSN  1687-5443. PMC 4320882 . PMID  25688305. 
  21. ^ Nishizumi, Hirofumi; Sakano, Hitoshi (1 de junio de 2015). "Regulación del desarrollo de la formación de mapas neuronales en el sistema olfativo del ratón". Neurobiología del desarrollo . 75 (6): 594–607. doi :10.1002/dneu.22268. ISSN  1932-846X. PMID  25649346. S2CID  24497222.

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