stringtranslate.com

termómetro de ARN

El motivo de ARN del termómetro FourU , con la secuencia Shine-Dalgarno resaltada.

Un termómetro de ARN (o termosensor de ARN ) es una molécula de ARN no codificante sensible a la temperatura que regula la expresión genética . [1] Su característica única es que no necesita proteínas ni metabolitos para funcionar, sino que sólo reacciona a los cambios de temperatura. [2] Los termómetros de ARN a menudo regulan los genes necesarios durante una respuesta de choque térmico o de frío , pero se han implicado en otras funciones reguladoras, como la patogenicidad y la inanición . [1]

En general, los termómetros de ARN funcionan cambiando su estructura secundaria y terciaria [3] en respuesta a las fluctuaciones de temperatura. Esta transición estructural puede luego exponer u ocluir regiones importantes del ARN, como un sitio de unión a ribosomas , lo que luego afecta la tasa de traducción de un gen codificador de proteínas cercano .

Los termómetros de ARN, junto con los riboswitches , se utilizan como ejemplos en apoyo de la hipótesis del mundo del ARN . Esta teoría propone que el ARN fue alguna vez el único ácido nucleico presente en las células y fue reemplazado por el actual sistema ADN → ARN → proteína . [4]

Ejemplos de termómetros de ARN incluyen FourU , [5] el elemento regulador cis Hsp90 , [6] el elemento ROSE , [7] el termómetro Lig RNA , [8] y el termómetro Hsp17 . [9]

Descubrimiento

El primer elemento de ARN sensible a la temperatura se informó en 1989. [10] Antes de esta investigación, se descubrió que las mutaciones aguas arriba del sitio de inicio de la transcripción en un ARNm del fago cIII lambda (λ) afectaban el nivel de traducción de la proteína cIII. [11] Esta proteína participa en la selección de un ciclo de vida lítico o lisogénico en el fago λ, con altas concentraciones de cIII que promueven la lisogenia. [11] Un estudio más detallado de esta región de ARN aguas arriba identificó dos estructuras secundarias alternativas ; Un estudio experimental encontró que las estructuras eran intercambiables y dependían tanto de la concentración de iones de magnesio como de la temperatura. [10] [12] Ahora se cree que este termómetro de ARN fomenta la entrada a un ciclo lítico bajo estrés térmico para que el bacteriófago se replique rápidamente y escape de la célula huésped. [1]

El término "termómetro de ARN" no se acuñó hasta 1999, [13] cuando se aplicó al elemento de ARN rpoH identificado en Escherichia coli . [14] Más recientemente, se han empleado búsquedas bioinformáticas para descubrir varios candidatos novedosos a termómetros de ARN. [15] Sin embargo, las búsquedas tradicionales basadas en secuencias son ineficaces, ya que la estructura secundaria del elemento está mucho más conservada que la secuencia del ácido nucleico . [15]

Las reacciones biológicas y el organismo son sensibles a la temperatura para el funcionamiento celular. Los termómetros de ARN son una forma eficaz de responder a la temperatura porque permiten que las células monitoreen y detecten cambios para mantenerlas vivas y estables. Los mecanismos inducidos por ADN, ARN o proteínas evitan pequeños cambios porque al detectar cualquier cambio externo [16]

Las bacterias utilizan termómetros de ARN para entrar y sobrevivir en sus huéspedes montándose a ellos y provocando fluctuaciones en su temperatura. Las bacterias pueden responder rápidamente contra las condiciones de choque térmico y frío, ya que los termómetros de ARN controlan la expresión genética a un nivel traslacional. [dieciséis]

El primer termómetro de ARN descubierto en cloroplasto de Chlamydomonas reinhardtii , encontrado en la 5'-UTR del ARNm de psaA. Su función era diferente sobre todo porque se consideraba ausente, tiene una estructura secundaria tipo horquilla que protege la secuencia Shine-Dalgarno cuando la temperatura es baja, pero una vez que ocurre un cambio de temperatura, se funde y activa la producción de proteínas. [2] La investigación del termómetro de ARN de C. reinhardtii es la puerta de entrada a la observación del cloroplasto de los organismos fotosintéticos para la regulación genética y cómo puede usarse para la agricultura en algún momento en el futuro, ya que ayuda a las plantas a acostumbrarse a la temperatura externa. [2]

Distribución

La mayoría de los termómetros de ARN conocidos están ubicados en la región no traducida (UTR) 5′ del ARN mensajero que codifica proteínas de choque térmico , aunque se ha sugerido que este hecho puede deberse, en parte, al sesgo de muestreo y a las dificultades inherentes a la detección de secuencias de ARN cortas y no conservadas. en datos genómicos . [17] [18]

Aunque se encuentra predominantemente en procariotas , se ha encontrado un potencial termómetro de ARN en mamíferos, incluidos los humanos . [19] El termosensor candidato de choque térmico ARN-1 (HSR1) activa el factor de transcripción de choque térmico 1 (HSF1) e induce proteínas protectoras cuando la temperatura celular excede los 37 °C ( temperatura corporal ), evitando así que las células se sobrecalienten. [19]

El primer termómetro de ARN descubierto en cloroplasto de Chlamydomonas reinhardtii, se encuentra en la 5'-UTR del ARNm de psaA. Su función era diferente sobre todo porque se consideraba ausente, tiene una estructura secundaria tipo horquilla que protege la secuencia Shine-Dalgarno cuando la temperatura es baja, pero una vez que ocurre un cambio de temperatura, se funde y activa la producción de proteínas. [2] La investigación del termómetro de ARN de C. reinhardtii es la puerta de entrada a la observación del cloroplasto de los organismos fotosintéticos para la regulación genética y cómo puede usarse para la agricultura en algún momento en el futuro, ya que ayuda a las plantas a acostumbrarse a la temperatura externa. [2]

Los elementos ROSE son una clase de termómetro de ARN bacteriano que regula la activación de genes que tienen pequeñas proteínas de choque térmico. Se derrite a un nivel moderado paralelo al aumento de la temperatura que rodea su entorno. Una vez que se derrite por completo a una temperatura alta de ~42 °C, se procede a la liberación de Shine-Dalgarno y el codón de inicio AUG. Los termómetros de ARN también se pueden encontrar en algunos simbiontes o patógenos de plantas; los simbiontes y patógenos utilizan los termómetros de ARN para regular la expresión genética de la planta. [3] Una bacteria simbiótica bien estudiada es la familia Rhizobiaceae. En la mayoría de las especies de rizobios, los elementos ROSE (de acción cis) eran visibles controlando los genes del choque térmico. [3]

Estructura

Representación 3D de la estructura del termómetro ROSE RNA. [20]

Los termómetros de ARN son estructuralmente simples y pueden fabricarse a partir de secuencias cortas de ARN; el más pequeño tiene solo 44 nucleótidos y se encuentra en el ARNm de una proteína de choque térmico, hsp17, en la especie Synechocystis PCC 6803 . [9] Generalmente, estos elementos de ARN varían en longitud de 60 a 110 nucleótidos [21] y típicamente contienen una horquilla con una pequeña cantidad de pares de bases no coincidentes que reducen la estabilidad de la estructura, permitiendo así un despliegue más fácil en respuesta a un aumento de temperatura. . [17]

El análisis estructural detallado del termómetro de ARN ROSE reveló que las bases no coincidentes en realidad participan en un emparejamiento de bases no estándar que preserva la estructura helicoidal del ARN (ver figura). Los pares de bases inusuales constan de pares GG, UU y UC-U. Dado que estos pares de bases no canónicos son relativamente inestables, el aumento de temperatura provoca la fusión local de la estructura del ARN en esta región, exponiendo la secuencia de Shine-Dalgarno. [20]

Algunos termómetros de ARN son significativamente más complejos que una sola horquilla, como en el caso de una región encontrada en el ARNm de CspA que se cree que contiene un pseudonudo , así como múltiples horquillas. [22] [23]

Los termómetros de ARN sintético se han diseñado con una estructura sencilla de horquilla única. [24] Sin embargo, la estructura secundaria de estos termómetros de ARN cortos puede ser sensible a la mutación, ya que un solo cambio de base puede inactivar la horquilla in vivo . [25]

Mecanismo

Una horquilla estable ( izquierda ) se desenrolla a mayor temperatura ( derecha ). La secuencia resaltada de Shine-Dalgarno queda expuesta, lo que permite la unión de la subunidad ribosómica 30S . [1]

Los termómetros de ARN se encuentran en la UTR 5′ del ARN mensajero, aguas arriba de un gen codificador de proteínas. [1] Aquí pueden ocluir el sitio de unión al ribosoma (RBS) y evitar la traducción del ARNm en proteína. [17] A medida que aumenta la temperatura, la estructura en horquilla puede "derretirse" y exponer la secuencia RBS o Shine-Dalgarno para permitir la unión de la pequeña subunidad ribosómica ( 30S ), que luego ensambla otra maquinaria de traducción. [1] El codón de inicio , que normalmente se encuentra 8 nucleótidos aguas abajo de la secuencia de Shine-Dalgarno, [17] señala el comienzo de un gen codificador de proteínas que luego el ribosoma traduce a un producto peptídico . Además de este mecanismo de acción cis , se ha encontrado un único ejemplo de termómetro de ARN de acción trans en el ARNm de RpoS , donde se cree que está involucrado en la respuesta al hambre. [1]

Un ejemplo específico de motivo de termómetro de ARN es el termómetro FourU que se encuentra en Salmonella enterica . [5] Cuando se expone a temperaturas superiores a 45 °C, el bucle de tallo que se empareja con bases opuestas a la secuencia de Shine-Dalgarno se desempareja y permite que el ARNm entre en el ribosoma para que se produzca la traducción. [25] También se ha demostrado que la concentración de iones Mg 2+ afecta la estabilidad de FourU. [26] El termómetro de ARN mejor estudiado se encuentra en el gen rpoH de Escherichia coli . [27] Este termosensor regula positivamente las proteínas de choque térmico bajo altas temperaturas a través de σ 32 , un factor sigma de choque térmico especializado . [13]

Aunque normalmente se asocian con la expresión de proteínas inducida por el calor, los termómetros de ARN también pueden regular las proteínas de choque por frío. [22] Por ejemplo, la expresión de dos proteínas de 7 kDa está regulada por un termómetro de ARN en la bacteria termófila Thermus thermophilus [28] y se ha identificado un mecanismo similar en Enterobacteriales . [23]

Los patógenos pueden utilizar termómetros de ARN sensibles a temperaturas de 37 °C para activar genes específicos de infecciones. [17] Por ejemplo, la regulación positiva de prfA , que codifica un regulador transcripcional clave de genes de virulencia en Listeria monocytogenes , se demostró fusionando el ADN 5' de prfA con el gen de la proteína verde fluorescente ; Luego se transcribió la fusión del gen a partir del promotor T7 en E. coli y se observó fluorescencia a 37 °C pero no a 30 °C. [29]

Implicaciones para la hipótesis del mundo del ARN

La hipótesis del mundo del ARN afirma que el ARN fue alguna vez portador de información hereditaria y enzimáticamente activo , con diferentes secuencias que actuaban como biocatalizadores, reguladores y sensores. [30] La hipótesis propone entonces que la vida moderna basada en el ADN, el ARN y las proteínas evolucionó y la selección reemplazó la mayoría de las funciones del ARN con otras biomoléculas . [4]

Se cree que los termómetros de ARN y los riboswitches son evolutivamente antiguos debido a su distribución a gran escala en organismos emparentados lejanamente. [31] Se ha propuesto que, en el mundo del ARN, los termosensores de ARN habrían sido responsables de la regulación dependiente de la temperatura de otras moléculas de ARN. [4] [32] Los termómetros de ARN en organismos modernos pueden ser fósiles moleculares que podrían indicar una importancia anteriormente más extendida en un mundo de ARN. [4]

Otros ejemplos

Referencias

  1. ^ abcdefg Narberhaus F, Waldminghaus T, Chowdhury S (enero de 2006). "Termómetros de ARN". Reseñas de microbiología FEMS . 30 (1): 3–16. doi :10.1111/j.1574-6976.2005.004.x. PMID  16438677.
  2. ^ abcde Raza A, Siddique KH, Hu Z (febrero de 2024). "Control de genes de cloroplastos: desbloquear mecanismos de termómetro de ARN en sistemas fotosintéticos". Tendencias en ciencia vegetal . doi :10.1016/j.tplants.2024.01.005. PMID  38311501.
  3. ^ abc Thomas SE, Balcerowicz M, Chung BY (17 de agosto de 2022). "Termorregulación mediada por la estructura del ARN: ¿Qué podemos aprender de las plantas?". Fronteras en la ciencia vegetal . 13 : 938570. doi : 10.3389/fpls.2022.938570 . PMC 9450479 . PMID  36092413. 
  4. ^ abcd Atkins JF, Gesteland RF, Cech T (2006). El mundo del ARN: la naturaleza del ARN moderno sugiere un mundo de ARN prebiótico . Plainview, Nueva York: Prensa del laboratorio Cold Spring Harbor. ISBN 978-0-87969-739-6.
  5. ^ ab Waldminghaus T, Heidrich N, Brantl S, Narberhaus F (julio de 2007). "FourU: un nuevo tipo de termómetro de ARN en Salmonella". Microbiología Molecular . 65 (2): 413–424. doi : 10.1111/j.1365-2958.2007.05794.x . PMID  17630972.
  6. ^ ab Ahmed R, Duncan RF (noviembre de 2004). "Regulación traslacional del ARNm de Hsp90. Elementos de la región no traducida 5' proximal de AUG esenciales para la traducción preferencial por choque térmico". La Revista de Química Biológica . 279 (48): 49919–49930. doi : 10.1074/jbc.M404681200 . PMID  15347681.
  7. ^ ab Nocker A, Hausherr T, Balsiger S, Krstulovic NP, Hennecke H, Narberhaus F (diciembre de 2001). "Un termosensor basado en ARNm controla la expresión de genes de choque térmico de rizobios". Investigación de ácidos nucleicos . 29 (23): 4800–4807. doi :10.1093/nar/29.23.4800. PMC 96696 . PMID  11726689. 
  8. ^ Matsunaga J, Schlax PJ, Haake DA (noviembre de 2013). "Papel de las secuencias de ARN que actúan en cis en la expresión dependiente de la temperatura de las proteínas lig multiadhesivas en Leptospira interrogans". Revista de Bacteriología . 195 (22): 5092–5101. doi :10.1128/jb.00663-13. PMC 3811586 . PMID  24013626. 
  9. ^ ab Kortmann J, Sczodrok S, Rinnenthal J, Schwalbe H, Narberhaus F (abril de 2011). "Traducción bajo demanda mediante un sencillo termosensor basado en ARN". Investigación de ácidos nucleicos . 39 (7): 2855–2868. doi : 10.1093/nar/gkq1252. PMC 3074152 . PMID  21131278. 
  10. ^ ab Altuvia S, Kornitzer D, Teff D, Oppenheim AB (noviembre de 1989). "Las estructuras alternativas de ARNm del gen cIII del bacteriófago lambda determinan la velocidad de inicio de su traducción". Revista de biología molecular . 210 (2): 265–280. doi :10.1016/0022-2836(89)90329-X. PMID  2532257.
  11. ^ ab Altuvia S, Oppenheim AB (julio de 1986). "Señales reguladoras de traducción dentro de la región codificante del gen del bacteriófago lambda cIII". Revista de Bacteriología . 167 (1): 415–419. doi :10.1128/jb.167.1.415-419.1986. PMC 212897 . PMID  2941413. 
  12. ^ Altuvia S, Kornitzer D, Kobi S, Oppenheim AB (abril de 1991). "Elementos funcionales y estructurales del ARNm del gen cIII del bacteriófago lambda". Revista de biología molecular . 218 (4): 723–733. doi :10.1016/0022-2836(91)90261-4. PMID  1827163.
  13. ^ ab Storz G (marzo de 1999). "Un termómetro de ARN". Genes y desarrollo . 13 (6): 633–636. doi : 10.1101/gad.13.6.633 . PMID  10090718.
  14. ^ Morita MT, Tanaka Y, Kodama TS, Kyogoku Y, Yanagi H, Yura T (marzo de 1999). "Inducción traslacional del factor de transcripción de choque térmico sigma32: evidencia de un termosensor de ARN incorporado". Genes y desarrollo . 13 (6): 655–665. doi :10.1101/gad.13.6.655. PMC 316556 . PMID  10090722. 
  15. ^ ab Waldminghaus T, Gaubig LC, Narberhaus F (noviembre de 2007). "Predicción bioinformática de todo el genoma y evaluación experimental de posibles termómetros de ARN". Genética y Genómica Molecular . 278 (5): 555–564. doi :10.1007/s00438-007-0272-7. PMID  17647020. S2CID  24747327.
  16. ^ ab Sharma P, Mondal K, Kumar S, Tamang S, Najar IN, Das S, et al. (octubre de 2022). "Termómetros de ARN en bacterias: papel en la termorregulación". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Mecanismos reguladores de genes . 1865 (7): 194871. doi :10.1016/j.bbagrm.2022.194871. PMID  36041664.
  17. ^ abcde Narberhaus F (2010). "Control traslacional de genes de virulencia y choque térmico bacteriano mediante ARNm sensores de temperatura". Biología del ARN . 7 (1): 84–89. doi : 10.4161/rna.7.1.10501 . PMID  20009504.
  18. ^ Johansson J (2009). "Termosensores de ARN en patógenos bacterianos". Detección y señalización bacteriana . Contribuciones a la Microbiología. vol. 16. Basilea: S. Karger AG. págs. 150-160. doi :10.1159/000219378. ISBN 978-3-8055-9132-4. PMID  19494584.
  19. ^ ab Shamovsky I, Ivannikov M, Kandel ES, Gershon D, Nudler E (marzo de 2006). "Respuesta mediada por ARN al choque térmico en células de mamíferos". Naturaleza . 440 (7083): 556–560. Código Bib :2006Natur.440..556S. doi : 10.1038/naturaleza04518. PMID  16554823. S2CID  4311262.
  20. ^ ab Chowdhury S, Maris C, Allain FH, Narberhaus F (junio de 2006). "Base molecular para la detección de temperatura mediante un termómetro de ARN". La Revista EMBO . 25 (11): 2487–2497. doi :10.1038/sj.emboj.7601128. PMC 1478195 . PMID  16710302. 
  21. ^ Waldminghaus T, Fippinger A, Alfsmann J, Narberhaus F (diciembre de 2005). "Los termómetros de ARN son comunes en proteobacterias alfa y gamma". Química Biológica . 386 (12): 1279-1286. doi :10.1515/BC.2005.145. PMID  16336122. S2CID  84557068.
  22. ^ ab Breaker RR (enero de 2010). "El ARN se apaga con el frío". Célula molecular . 37 (1): 1–2. doi :10.1016/j.molcel.2009.12.032. PMC 5315359 . PMID  20129048. 
  23. ^ ab Giuliodori AM, Di Pietro F, Marzi S, Masquida B, Wagner R, Romby P, et al. (Enero de 2010). "El ARNm de cspA es un termosensor que modula la traducción de la proteína de choque por frío CspA". Célula molecular . 37 (1): 21–33. doi : 10.1016/j.molcel.2009.11.033 . PMID  20129052.
  24. ^ Neupert J, Karcher D, Bock R (noviembre de 2008). "Diseño de termómetros de ARN sintéticos simples para la expresión génica a temperatura controlada en Escherichia coli". Investigación de ácidos nucleicos . 36 (19): e124. doi : 10.1093/nar/gkn545. PMC 2577334 . PMID  18753148. 
  25. ^ ab Nikolova EN, Al-Hashimi HM (septiembre de 2010). "Termodinámica de la fusión del ARN, un par de bases a la vez". ARN . 16 (9): 1687–1691. doi :10.1261/rna.2235010. PMC 2924531 . PMID  20660079. 
  26. ^ Rinnenthal J, Klinkert B, Narberhaus F, Schwalbe H (octubre de 2011). "Modulación de la estabilidad del termómetro de ARN tipo FourU de Salmonella". Investigación de ácidos nucleicos . 39 (18): 8258–8270. doi : 10.1093/nar/gkr314. PMC 3185406 . PMID  21727085. 
  27. ^ Shah P, Gilchrist MA (julio de 2010). Espirina AS (ed.). "¿Es única la propiedad de termodetección de los termómetros de ARN?". MÁS UNO . 5 (7): e11308. Código Bib : 2010PLoSO...511308S. doi : 10.1371/journal.pone.0011308 . PMC 2896394 . PMID  20625392. 
  28. ^ Mega R, Manzoku M, Shinkai A, Nakagawa N, Kuramitsu S, Masui R (agosto de 2010). "Inducción muy rápida de una proteína de choque por frío mediante reducción de temperatura en Thermus thermophilus". Comunicaciones de investigación bioquímica y biofísica . 399 (3): 336–340. doi :10.1016/j.bbrc.2010.07.065. PMID  20655297.
  29. ^ Johansson J, Mandin P, Renzoni A, Chiaruttini C, Springer M, Cossart P (septiembre de 2002). "Un termosensor de ARN controla la expresión de genes de virulencia en Listeria monocytogenes". Celúla . 110 (5): 551–561. doi : 10.1016/S0092-8674(02)00905-4 . PMID  12230973.
  30. ^ Gilbert W (febrero de 1986). "El mundo del ARN". Naturaleza . 319 (6055): 618. Código bibliográfico : 1986Natur.319..618G. doi : 10.1038/319618a0 .
  31. ^ Serganov A, Patel DJ (octubre de 2007). "Ribozimas, riboswitches y más: regulación de la expresión genética sin proteínas". Reseñas de la naturaleza. Genética . 8 (10): 776–790. doi :10.1038/nrg2172. PMC 4689321 . PMID  17846637. 
  32. ^ Bocobza SE, Aharoni A (octubre de 2008). "Encender la luz en los riboswitches de la planta". Tendencias en ciencia vegetal . 13 (10): 526–533. doi :10.1016/j.tplants.2008.07.004. PMID  18778966.
  33. ^ Gaubig LC, Waldminghaus T, Narberhaus F (enero de 2011). "Múltiples capas de control gobiernan la expresión del operón de choque térmico ibpAB de Escherichia coli". Microbiología . 157 (Parte 1): 66–76. doi : 10.1099/mic.0.043802-0 . PMID  20864473.
  34. ^ Balsiger S, Ragaz C, Baron C, Narberhaus F (octubre de 2004). "Regulación específica de replicón de pequeños genes de choque térmico en Agrobacterium tumefaciens". Revista de Bacteriología . 186 (20): 6824–6829. doi :10.1128/JB.186.20.6824-6829.2004. PMC 522190 . PMID  15466035.