Las lipoxigenasas están relacionadas entre sí basándose en su estructura genética similar y actividad de dioxigenación. Sin embargo, una lipoxigenasa, ALOXE3, aunque tiene una estructura genética de lipoxigenasa, posee relativamente poca actividad de dioxigenación; más bien, su actividad principal parece ser la de una isomerasa que cataliza la conversión de ácidos grasos hidroperoxiinsaturados en sus derivados hidroxilo 1,5 - epóxido .
Las lipoxigenasas se encuentran en eucariotas (plantas, hongos, animales, protistas); Mientras que el tercer dominio de la vida terrestre, las arqueas , posee proteínas con una ligera (~20%) similitud en la secuencia de aminoácidos con las lipoxigenasas, estas proteínas carecen de residuos de unión a hierro y, por lo tanto, no se prevé que posean actividad lipoxigenasa. [2]
Bioquímica
Según análisis detallados de la 15-lipoxigenasa 1 y la 5-lipoxigenasa estabilizada, las estructuras de la lipoxigenasa constan de un dominio de barril beta N-terminal de 15 kilodaltons , un interdominio conector pequeño (p. ej., ~0,6 kilodaltons) (consulte Dominio de proteínas § Dominios y flexibilidad de proteínas ), y un dominio catalítico C-terminal relativamente grande que contiene el hierro no hemo crítico para la actividad catalítica de las enzimas. [3] La mayoría de las lipoxigenasas (excepción, ALOXE3) catalizan la reacción Ácido graso poliinsaturado + O 2 → hidroperóxido de ácido graso en cuatro pasos:
el paso limitante de la velocidad de la extracción de hidrógeno de un carbono de metileno bisalílico para formar un radical de ácido graso en ese carbono
reordenamiento del radical a otro centro de carbono
adición de oxígeno molecular (O 2 ) al centro del radical de carbono reordenado formando así un enlace de radical peroxi (—OO·) a ese carbono
reducción del radical peroxi a su anión correspondiente (—OO − )
El residuo (—OO − ) luego puede protonarse para formar un grupo hidroperóxido (—OOH) y metabolizarse aún más mediante la lipoxigenasa a, por ejemplo, leucotrienos , hepoxilinas y varios mediadores pro-resolución especializados , o reducirse mediante glutatión peroxidasas celulares ubicuas a un hidroxi. grupo que forma ácidos grasos poliinsaturados hidroxilados (-OH) como los ácidos hidroxieicosatetraenoicos y HODE (es decir, ácidos hidroxioctadecaenoicos). [3]
Las lipoxigenasas dependen de la disponibilidad de sus sustratos de ácidos grasos poliinsaturados que, particularmente en células de mamíferos, normalmente se mantienen en niveles extremadamente bajos. En general, varias fosfolipasa A2 y diacilglicerol lipasas se activan durante la estimulación celular, liberan estos ácidos grasos de sus sitios de almacenamiento y, por lo tanto, son reguladores clave en la formación de metabolitos dependientes de la lipoxigenasa. [3] Además, las células, cuando se activan de esta manera, pueden transferir sus ácidos grasos poliinsaturados liberados a células adyacentes o cercanas que luego los metabolizan a través de sus vías de lipoxigenasa en un proceso denominado metabolismo transcelular o biosíntesis transcelular. [6]
Función biológica y clasificación.
Estas enzimas son más comunes en plantas donde pueden estar involucradas en diversos aspectos de la fisiología vegetal, incluido el crecimiento y desarrollo, la resistencia a las plagas y la senescencia o respuestas a las heridas. [7] En los mamíferos, varias isoenzimas lipoxigenasas participan en el metabolismo de los eicosanoides (como las prostaglandinas , los leucotrienos y los eicosanoides no clásicos ). [8] Hay datos de secuencia disponibles para las siguientes lipoxigenasas:
Lipoxigenasas vegetales
Las plantas expresan una variedad de lipoxigenasas citosólicas ( EC 1.13.11.12; InterPro : IPR001246 ), así como lo que parece ser una isoenzima del cloroplasto. [9] La lipoxigenasa vegetal junto con las hidroperóxido liasas son responsables de muchas fragancias y otros compuestos de señalización. Un ejemplo es el cis-3-hexenal , el olor a hierba recién cortada .
Lipoxigenasas humanas
Con la excepción del gen que codifica 5-LOX ( ALOX5 ), que se encuentra en el cromosoma 10q11.2, los seis genes LOX humanos están ubicados en el cromosoma 17.p13 y codifican una proteína de cadena sencilla de 75 a 81 kilodaltons que consta de 662–711 aminoácidos. Los genes LOX de mamíferos contienen 14 ( ALOX5 , ALOX12 , ALOX15 , ALOX15B ) o 15 ( ALOX12B , ALOXE3 ) exones con límites exón/ intrón en posiciones altamente conservadas. [11] [12] Las 6 lipoxigenasas humanas junto con algunos de los principales productos que fabrican, así como algunas de sus asociaciones con enfermedades genéticas, son los siguientes: [11] [13] [14 ] [15] [16 ]
Araquidonato 15-lipoxigenasa-1 (ALOX15) ( EC 1.13.11.33; InterPro : IPR001885 ), también denominado 15-lipoxigenasa-1, 15-lipoxigenasa de tipo eritrocito (o 15-lipoxigenasa, de tipo eritrocito), 15-lipoxigenasa de tipo reticulocito (o 15-lipoxigenasa, tipo reticulocito), 15-LO-1 y 15-LOX-1. Metaboliza el ácido araquidónico principalmente a 1) ácido 15-hidroperoxieiocatetraenoico (15-HpETE), que luego se metaboliza a ácido 15-hidroxiicosatetraenoico (15-HETE), pero también a cantidades mucho más pequeñas de 2) ácido 12-hidroperoxieicosatetraenoico (12-HpETE), que Se metaboliza aún más en ácido 12-hidroxieicosatetraenoico y posiblemente en hepoxilinas . ALOX15 en realidad prefiere el ácido linoleico al ácido araquidónico, metabolizando el ácido linoleico a ácido 12-hidroperoxioctadecaenoico (13-HpODE), que luego se metaboliza a ácido 13-hidroxioctadecadienoico (13-HODE). ALOX15 puede metabolizar ácidos grasos poliinsaturados que están esterificados a fosfolípidos y/o colesterol , es decir, ésteres de colesterol , en lipoproteínas . Esta propiedad, junto con su doble especificidad en la metabolización del ácido araquidónico a 12-HpETE y 15-HpETE, son similares a las del Alox15 de ratón y ha llevado a que ambas enzimas se denominen 12/15-lipoxigenasas.
Araquidonato 15-lipoxigenasa tipo II ( ALOX15B ), también denominado 15-lipoxigenasa-2, 15-LOX-2 y 15-LOX-2. [17] Metaboliza el ácido araquidónico a 15-hidroperoxieicosatetraenoico (15-HpETE), que luego se metaboliza a ácido 15-hidroxiicosatetraenoico . ALOX15B tiene poca o ninguna capacidad para metabolizar el ácido araquidónico en ácido 12-hidroperoxocosatetraenoico (12-(HpETE) y solo una capacidad mínima para metabolizar el ácido linoleico en ácido 13-hidroperoxioctadecaenoico (13-HpODE).
Araquidonato 12-lipoxigenasa, tipo 12R ( ALOX12B ), también denominado 12 R -lipoxigenasa, 12 R -LOX y 12 R -LO. [18] Metaboliza el ácido araquidónico a ácido 12 R -hidroxieicosatetraenoico, pero lo hace sólo con baja actividad catalítica; Se cree que su sustrato fisiológicamente más importante es una esfingosina que contiene un ácido graso omega-hidroxilo de cadena muy larga (16-34 carbonos) que está en enlace amida con el nitrógeno sn-2 de la esfingosina en su extremo carboxi y esterificado con ácido linoleico. en su extremo omega hidroxilo. En las células epidérmicas de la piel, ALOX12B metaboliza el linoleato de esta omega-hidroxiacil-esfingosina (EOS) esterificada a su análogo 9 R -hidroperoxi. Las mutaciones inactivadoras de ALOX12B están asociadas con la enfermedad de la piel humana, la eritrodermia ictiosiforme congénita autosómica recesiva (ARCI). [18] [19]
Lipoxigenasa de tipo epidermis ( ALOXE3 ), también denominada eLOX3 y lipoxigenasa de tipo epidermis. [20] A diferencia de otras lipoxigenasas, ALOXE3 exhibe sólo una actividad dioxigenasa latente. Más bien, su actividad principal es como una hidroperóxido isomerasa que metaboliza ciertos ácidos grasos hidroperoxi insaturados a sus correspondientes alcohol epoxi y derivados ceto epoxi y, por lo tanto, también se clasifica como una hepoxilina sintasa. Si bien puede metabolizar el ácido 12 S -hidroperoxieicosatetraenoico (12 S -HpETE) en los estereoisómeros R de las hepoxilinas A3 y B3, ALOXE3 favorece la metabolización de los ácidos grasos insaturados hidroperoxi R y convierte eficientemente el análogo 9 ( R ) -hidroperoxi de EOS elaborado por ALOX15B en sus análogos 9 R (10 R ), 13 R -trans-epoxi-11 E , 13 R y 9-ceto-10 E , 12 Z EOS. [19] Se cree que ALOXE3 actúa con ALOX12B en la epidermis de la piel para formar los dos últimos análogos de EOS; Las mutaciones de inactivación de ALOX3, similares a las mutaciones de inactivación en ALOX12B, están asociadas con la eritrodermia ictiosiforme congénita autosómica recesiva en humanos. [19] [20] Las mutaciones inactivadoras en ALOX3 también están asociadas con la enfermedad humana ictiosis laminar (consulte Ictiosis § Tipos - elemento 5 en la tabla).
Dos lipoxigenasas pueden actuar en serie para producir productos dihidroxi o trihidroxi que tienen actividades bastante diferentes a los productos de cualquiera de las lipoxienasas. Este metabolismo en serie puede ocurrir en diferentes tipos de células que expresan solo una de las dos lipoxigenasas en un proceso denominado metabolismo transcelular. Por ejemplo, ALOX5 y ALOX15 o, alternativamente, ALOX5 y ALOX12 pueden actuar en serie para metabolizar el ácido araquidónico en lipoxinas (ver Ácido 15-hidroxieicosatetraenoico §§ Metabolismo adicional y actividades de 15(S)-HpETE, 15(S)-HETE, 15(R)-HpETE, 15(R)-HETE y 15-oxo-ETE y lipoxina § Síntesis ) mientras que ALOX15 y posiblemente ALOX15B pueden actuar con ALOX5 para metabolizar el ácido eicosapentaenoico a resolvina D (ver Resolvina § Bioquímica y producción ).
Lipoxigenasas de ratón
El ratón es un modelo común para examinar la función de la lipoxigenasa. Sin embargo, existen algunas diferencias clave entre las lipoxigenasas entre ratones y hombres que dificultan la extrapolación de los estudios con ratones a los humanos. A diferencia de las 6 lipoxigenasas funcionales en humanos, los ratones tienen 7 lipoxigenasas funcionales y algunas de estas últimas tienen actividades metabólicas diferentes a las de sus ortólogos humanos . [11] [19] [21] En particular, el Alox15 de ratón, a diferencia del ALOX15 humano, metaboliza el ácido araquidónico principalmente a 12-HpETE y el Alox15b de ratón, a diferencia del ALOX15b humano, es principalmente una 8-lipoxigenasa, que metaboliza el ácido araquidiónico a 8- HpETE; No existe una lipoxigenasa formadora de 8-HpETE comparable en humanos. [22]
Alox5 parece tener una función similar al ALOX5 humano.
Alox12 se diferencia del ALOX12 humano, que metaboliza preferentemente el ácido araquidónico a 12-HpETE pero también a cantidades sustanciales de 15-HpETE, en que metaboliza el ácido araquidónico casi exclusivamente a 12-HpETE.
Alox15 (también denominado 12-Lox de tipo leucocitario, 12-Lox-l y 12/15-Lox) difiere del ALOX15 humano, que en condiciones de ensayo estándar metaboliza el ácido araquidónico en productos de 15-HpETE y 12-HpETE en una proporción de 89 a En proporción 11, metaboliza el ácido araquidónico a 15-Hpete y 12-HpETE en una proporción de 1 a 6, es decir, su metabolito principal es el 12-HpETE. Además, el ALOX15 humano prefiere el ácido linoleico al ácido araquidónico como sustrato, metabolizándolo a 13-HpODE, mientras que Alox15 tiene poca o ninguna actividad sobre el ácido linoleico. Alox15 puede metabolizar ácidos grasos poliinsaturados que están esterificados en fosfolípidos y colesterol (es decir, ésteres de colesterol ). Esta propiedad, junto con su doble especificidad en la metabolización del ácido araquidónico a 12-HpETE y 15-HpETE, son similares a las del ALOX15 humano y ha llevado a que ambas enzimas se denominen 12/15-lipoxigenasas.
Alox15b (también denominado 8-lipoxigenasa, 8-lox y 15-lipoxigenasa tipo II), a diferencia de ALOX15B que metaboliza el ácido araquidónico principalmente a 15-HpETE y, en menor medida, ácido linoleico a 13-HpODE, metaboliza el ácido araquidónico principalmente a 8 S -HpETE y ácido linoleico a 9-HpODE. Alox15b es tan eficaz como ALOX5 para metabolizar 5-HpETE en leucotrienos.
Alox12e (12-Lox-e, 12-Lox de tipo epidérmico) es un ortólogo del gen ALOX12P humano que ha sufrido mutaciones dañinas y no se expresa. ALox12e prefiere los ésteres metílicos a los sustratos de ácidos grasos poliinsaturados no esterificados, metabolizando el éster de ácido linoleico a su contraparte 13-hidroperoxi y, en menor medida, el éster de ácido araquidónico a su contraparte 12-hidroperoxi.
Alox12b (e-LOX2, Lox-12 tipo epidermis) parece actuar de manera similar a ALOX12B para metabolizar la fracción de ácido linoleico de EOS a su contraparte 9 R -hidroperoxi y, por lo tanto, contribuir a la integridad de la piel y la impermeabilidad al agua; los ratones sin Alox12b desarrollan un defecto cutáneo grave similar a la eritrodermia ictiosiforme congénita. A diferencia del ALOX12B humano, que metaboliza el ácido araquidónico a 12 R -HETE a un ritmo bajo, Alox12b no metaboliza el ácido araquidónico como ácido libre, sino que metaboliza el éster metílico del ácido araquidónico a su contraparte 12 R -hidroperoxi.
Aloxe3 (Lox-3 tipo epidermis, eLox3) parece actuar de manera similar a ALOXe3 en la metabolización del derivado 9 R -hidroxilinoleato de EOS a sus derivados epoxi y ceto y estar involucrado en el mantenimiento de la integridad de la piel y la impermeabilidad al agua. La deleción de AloxE3 conduce a un defecto similar a la eritrodermia ictiosiforme congénita.
estructura 3D
Se conocen varias estructuras de lipoxigenasa que incluyen: lipoxigenasa de soja L1 y L3, 8-lipoxigenasa de coral, 5-lipoxigenasa humana, 15-lipoxigenasa de conejo y dominio catalítico de 12-lipoxigenasa de leucocitos porcinos. La proteína consta de un pequeño dominio PLAT N-terminal y un dominio catalítico C-terminal importante (consulte la base de datos de Pfam ), que contiene el sitio activo . Tanto en las enzimas de plantas como de mamíferos, el dominio N-terminal contiene un barril β antiparalelo de ocho cadenas, pero en las lipoxigenasas de soja este dominio es significativamente mayor que en la enzima de conejo. Las lipoxigenasas vegetales se pueden escindir enzimáticamente en dos fragmentos que permanecen estrechamente asociados mientras la enzima permanece activa; La separación de los dos dominios conduce a la pérdida de actividad catalítica. El dominio C-terminal (catalítico) consta de 18-22 hélices y una (en enzimas de conejo) o dos (en enzimas de soja) láminas β antiparalelas en el extremo opuesto del barril β N-terminal.
Sitio activo
El átomo de hierro en las lipoxigenasas está unido por cuatro ligandos, tres de los cuales son residuos de histidina. [23] Se conservan seis histidinas en todas las secuencias de lipoxigenasa, cinco de ellas se encuentran agrupadas en un tramo de 40 aminoácidos. Esta región contiene dos de los tres ligandos de zinc; Se ha demostrado que las otras histidinas [24] son importantes para la actividad de las lipoxigenasas.
Las dos largas hélices centrales se cruzan en el sitio activo; Ambas hélices incluyen tramos internos de hélice π que proporcionan tres ligandos de histidina (His) al hierro del sitio activo. Dos cavidades en el dominio principal de la lipoxigenasa-1 de soja (cavidades I y II) se extienden desde la superficie hasta el sitio activo. La cavidad I en forma de embudo puede funcionar como un canal de dioxígeno; la cavidad II, larga y estrecha, es presumiblemente una bolsa de sustrato. La enzima de mamíferos más compacta contiene sólo una cavidad en forma de bota (cavidad II). En la lipoxigenasa-3 de soja hay una tercera cavidad que va desde el sitio del hierro hasta la interfaz del barril β y los dominios catalíticos. La cavidad III, el sitio del hierro y la cavidad II forman un pasaje continuo a través de la molécula de proteína.
El hierro del sitio activo está coordinado por N ε de tres residuos de His conservados y un oxígeno del grupo carboxilo C-terminal. Además, en las enzimas de la soja, el oxígeno de la cadena lateral de la asparagina está débilmente asociado con el hierro. En la lipoxigenasa de conejo, este residuo de Asn se reemplaza con His, que coordina el hierro a través del átomo N δ . Por tanto, el número de coordinación del hierro es cinco o seis, con un ligando hidroxilo o agua para un hierro hexacoordinado.
Los detalles sobre la característica del sitio activo de la lipoxigenasa se revelaron en la estructura del complejo del dominio catalítico de 12-lipoxigenasa de leucocitos porcinos [23] [25] . En la estructura 3D, el inhibidor del análogo del sustrato ocupaba un canal en forma de U abierto adyacente al sitio de hierro. Este canal podría acomodar ácido araquidónico sin muchos cálculos, definiendo los detalles de unión del sustrato para la reacción de la lipoxigenasa. Además, para la ruta del oxígeno se podría considerar un posible canal de acceso que intercepte el canal de unión al sustrato y se extienda hasta la superficie de la proteína.
Clasificación bioquímica
La lipooxigenasa 1 de soja exhibe el mayor efecto isotópico cinético H/D (KIE) sobre kcat (kH/kD) (81 cerca de la temperatura ambiente) reportado hasta ahora para un sistema biológico. Recientemente, se encontró un KIE extremadamente elevado de 540 a 730 en una lipoxigenasa de soja 1 doble mutante. [26] Debido a la gran magnitud del KIE, la lipoxigenasa de soja 1 ha servido como prototipo para reacciones de túnel de hidrógeno catalizadas por enzimas.
Las proteínas humanas expresadas a partir de la familia de las lipoxigenasas incluyen ALOX12 , ALOX12B , ALOX15 , ALOX15B , ALOX5 y ALOXE3 . Si bien los humanos también poseen el gen ALOX12P2 , que es un ortólogo del gen Alox12P bien expresado en ratones, el gen humano es un pseudogén ; en consecuencia, la proteína ALOX12P2 no se detecta en humanos. [27]
Referencias
^ Choi J, Chon JK, Kim S, Shin W (febrero de 2008). "Flexibilidad conformacional en 15S-lipoxigenasa de mamíferos: reinterpretación de los datos cristalográficos". Proteínas . 70 (3): 1023–32. doi :10.1002/prot.21590. PMID 17847087. S2CID 40013415.
^ Powell WS, Rokach J (2015). "Biosíntesis, efectos biológicos y receptores de ácidos hidroxieicosatetraenoicos (HETE) y ácidos oxoeicosatetraenoicos (oxo-ETE) derivados del ácido araquidónico". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biología molecular y celular de lípidos . 1851 (4): 340–55. doi :10.1016/j.bbalip.2014.10.008. PMC 5710736 . PMID 25449650.
^ abcde Kuhn H, Banthiya S, van Leyen K (2015). "Lipoxigenasas de mamíferos y su relevancia biológica". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biología molecular y celular de lípidos . 1851 (4): 308–30. doi :10.1016/j.bbalip.2014.10.002. PMC 4370320 . PMID 25316652.
^ ab Gabbs M, Leng S, Devassy JG, Monirujjaman M, Aukema HM (2015). "Avances en nuestra comprensión de las oxilipinas derivadas de los AGPI dietéticos". Avances en Nutrición . 6 (5): 513–40. doi :10.3945/an.114.007732. PMC 4561827 . PMID 26374175.
^ Mashima R, Okuyama T (2015). "El papel de las lipoxigenasas en fisiopatología; nuevos conocimientos y perspectivas de futuro". Biología Redox . 6 : 297–310. doi :10.1016/j.redox.2015.08.006. PMC 4556770 . PMID 26298204.
^ Capra V, Rovati GE, Mangano P, Buccellati C, Murphy RC, Sala A (2015). "Biosíntesis transcelular de mediadores lipídicos eicosanoides". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biología molecular y celular de lípidos . 1851 (4): 377–82. doi :10.1016/j.bbalip.2014.09.002. PMID 25218301.
^ Vick BA, Zimmerman DC (1987). "Sistemas oxidativos para la modificación de ácidos grasos: la vía de la lipooxigenasa". Sistemas oxidativos para la modificación de ácidos grasos: la vía de la lipoxigenasa . vol. 9. págs. 53–90. doi :10.1016/b978-0-12-675409-4.50009-5. ISBN9780126754094.
^ Needleman P, Turk J, Jakschik BA, Morrison AR, Lefkowith JB (1986). "Metabolismo del ácido araquidónico". Año. Rev. Bioquímica . 55 : 69-102. doi : 10.1146/annurev.bi.55.070186.000441. PMID 3017195.
^ Tanaka K, Ohta H, Peng YL, Shirano Y, Hibino T, Shibata D (1994). "Una nueva lipoxigenasa del arroz. Estructura primaria y expresión específica tras una infección incompatible con el hongo del añublo del arroz". J. Biol. química . 269 (5): 3755–3761. doi : 10.1016/S0021-9258(17)41924-7 . PMID 7508918.
^ Kenji Matsui (2006). "Volátiles de hojas verdes: vía de hidroperóxido liasa del metabolismo de la oxilipina". Opinión actual en biología vegetal . 9 (3): 274–280. doi :10.1016/j.pbi.2006.03.002. PMID 16595187.
^ abc Krieg, P; Fürstenberger, G (2014). "El papel de las lipoxigenasas en la epidermis". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biología molecular y celular de lípidos . 1841 (3): 390–400. doi :10.1016/j.bbalip.2013.08.005. PMID 23954555.
^ Haeggström, JZ; Canguelo, CD (2011). "Vías de la lipoxigenasa y los leucotrienos: bioquímica, biología y funciones en la enfermedad". Reseñas químicas . 111 (10): 5866–98. doi :10.1021/cr200246d. PMID 21936577.
^ Barden AE, Mas E, Mori TA (2016). "Suplementación de ácidos grasos n-3 y mediadores prorresolutivos de la inflamación". Opinión Actual en Lipidología . 27 (1): 26–32. doi :10.1097/MOL.0000000000000262. PMID 26655290. S2CID 45820130.
^ Qu Q, Xuan W, Fan GH (2015). "Funciones de las resolvinas en la resolución de la inflamación aguda". Biología Celular Internacional . 39 (1): 3–22. doi :10.1002/cbin.10345. PMID 25052386. S2CID 10160642.
^ Romano M, Cianci E, Simiele F, Recchiuti A (2015). "Lipoxinas y lipoxinas activadas por aspirina en la resolución de la inflamación". Revista europea de farmacología . 760 : 49–63. doi :10.1016/j.ejphar.2015.03.083. PMID 25895638.
^ "WikiGenes - Publicación colaborativa". WikiGenes: publicación colaborativa . Consultado el 17 de abril de 2018 .
^ ab "WikiGenes - Publicación colaborativa". WikiGenes: publicación colaborativa . Consultado el 17 de abril de 2018 .
^ abcd Muñoz-García, A; Tomás, CP; Keeney, DS; Zheng, Y; Brash, AR (2014). "La importancia de la vía lipoxigenasa-hepoxilina en la barrera epidérmica de los mamíferos". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biología molecular y celular de lípidos . 1841 (3): 401–8. doi :10.1016/j.bbalip.2013.08.020. PMC 4116325 . PMID 24021977.
^ ab "WikiGenes - Publicación colaborativa". WikiGenes: publicación colaborativa . Consultado el 17 de abril de 2018 .
^ Taylor, relaciones públicas; Heydeck, D; Jones, GW; Krönke, G; Canguelo, CD; Knapper, S; Adams, D; Kuhn, H; O'Donnell, VB (2012). "Desarrollo de enfermedad mieloproliferativa en deficiencia de 12/15-lipoxigenasa". Sangre . 119 (25): 6173–4, respuesta del autor 6174–5. doi : 10.1182/sangre-2012-02-410928. PMC 3392071 . PMID 22730527.
^ Cole, BK; Lieb, DC; Dobrian, AD; Nadler, JL (2013). "12 y 15 lipoxigenasas en la inflamación del tejido adiposo". Prostaglandinas y otros mediadores lipídicos . 104–105: 84–92. doi :10.1016/j.prostaglandins.2012.07.004. PMC 3526691 . PMID 22951339.
^ ab Boyington JC, Gaffney BJ, Amzel LM (1993). "La estructura tridimensional de una 15-lipoxigenasa del ácido araquidónico". Ciencia . 260 (5113): 1482-1486. Código bibliográfico : 1993 Ciencia... 260.1482B. doi : 10.1126/ciencia.8502991. PMID 8502991.
^ Steczko J, Donoho GP, Clemens JC, Dixon JE, Axelrod B (1992). "Residuos de histidina conservados en la lipoxigenasa de soja: consecuencias funcionales de su sustitución". Bioquímica . 31 (16): 4053–4057. doi :10.1021/bi00131a022. PMID 1567851.
^ Xu, S.; Mueser TC; Marnett LJ; Funk MO (2012). "La estructura cristalina del complejo inhibidor del dominio catalítico de 12-lipoxigenasa identifica un canal de unión al sustrato para la catálisis". Estructura . 20 (9): 1490–7. doi :10.1016/j.str.2012.06.003. PMC 5226221 . PMID 22795085.
^ Hu, S; Sharma, Carolina del Sur; Scouras, AD; Soudackov, AV; Carr, California; Hammes-Schiffer, S; Alberto, T; Klinman, JP (2014). "Los efectos de los isótopos cinéticos a temperatura ambiente extremadamente elevados cuantifican el papel crítico del ancho de la barrera en la activación enzimática de CH". Revista de la Sociedad Química Estadounidense . 136 (23): 8157–60. doi :10.1021/ja502726s. PMC 4188422 . PMID 24884374.
^ "WikiGenes - Publicación colaborativa". WikiGenes: publicación colaborativa . Consultado el 17 de abril de 2018 .
enlaces externos
LOX-DB – Base de datos de LipOXigenasas
Región de unión al hierro de las lipoxigenasas en PROSITE
PDB : 1YGE – estructura de la lipoxigenasa-1 de la soja ( Glycine max )
PDB : 1IK3 – estructura de la lipoxigenasa-3 de soja en complejo con ácido (9 Z , 11 E , 13 S ) -13-hidroperoxioctadeca-9,11-dienoico
PDB : 1LOX – estructura de la 15-lipoxigenasa de conejo en complejo con inhibidor
PDB : 3RDE – estructura del dominio catalítico de la 12-lipoxigenasa de leucocitos porcinos con inhibidor
Tiempo de escaldado y efectos del cultivar sobre la calidad del maíz y brócoli congelados y almacenados: inactivación de la enzima lipoxigenasa, peroxidasa y cistina liasa en el escaldado