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ARN polimerasa I

La ARN polimerasa 1 (también conocida como Pol I ) es, en eucariotas superiores , la polimerasa que sólo transcribe el ARN ribosómico (pero no el ARNr 5S , que es sintetizado por la ARN polimerasa III ), un tipo de ARN que representa más del 50% del ARN total sintetizado en una célula . [1]

Estructura y función

Pol I es una enzima de 590 kDa que consta de 14 subunidades proteicas ( polipéptidos ), y su estructura cristalina en la levadura Saccharomyces cerevisiae se resolvió con una resolución de 2,8 Å en 2013. [2] Doce de sus subunidades tienen contrapartes idénticas o relacionadas en la ARN polimerasa II (Pol II) y la ARN polimerasa III (Pol III). Las otras dos subunidades están relacionadas con los factores de iniciación de Pol II y tienen homólogos estructurales en Pol III.

La transcripción del ADN ribosómico se limita al nucléolo , donde están presentes alrededor de 400 copias del gen del ADNr de 42,9 kb, dispuestas como repeticiones en tándem en las regiones organizadoras del nucléolo . Cada copia contiene una secuencia de ~13,3 kb que codifica las moléculas de ARN 18S , 5.8S y 28S , entrelazadas con dos espaciadores transcritos internos , ITS1 e ITS2, y flanqueadas aguas arriba por un espaciador transcrito externo 5' y un espaciador transcrito externo 3' aguas abajo. [3] [4] Estos componentes se transcriben juntos para formar el pre-ARNr 45S . [5] Luego, el pre-ARNr 45S se escinde postranscripcionalmente mediante los snoRNA de caja C/D y caja H/ACA , [6] eliminando los dos espaciadores y dando como resultado los tres ARNr mediante una serie compleja de pasos. [7] El ARN ribosómico 5S es transcrito por la Pol III. Debido a la simplicidad de la transcripción de la Pol I, es la polimerasa de acción más rápida y contribuye hasta con el 60% de los niveles de transcripción celular en células de crecimiento exponencial.

En Saccharomyces cerevisiae , el ADNr 5S tiene la característica inusual de estar dentro de la repetición del ADNr. Está flanqueado por los espaciadores no transcritos NTS1 y NTS2, y se transcribe hacia atrás por la Pol III, por separado del resto del ADNr. [7]

Regulación de la transcripción del ARNr

La tasa de crecimiento celular depende directamente de la tasa de síntesis de proteínas, que a su vez está estrechamente vinculada a la síntesis de ribosomas y la transcripción del ARNr. Por lo tanto, las señales intracelulares deben coordinar la síntesis del ARNr con la de otros componentes de la traducción de proteínas. Se sabe que Myc se une al ADN ribosómico humano para estimular la transcripción del ARNr por la ARN polimerasa I. [8] Se han identificado dos mecanismos específicos que garantizan el control adecuado de la síntesis del ARNr y la transcripción mediada por Pol I.

Dada la gran cantidad de genes de ADNr (varios cientos) disponibles para la transcripción, el primer mecanismo implica ajustes en el número de genes que se transcriben en un momento específico. En las células de mamíferos, el número de genes de ADNr activos varía entre los tipos de células y el nivel de diferenciación . En general, a medida que una célula se vuelve más diferenciada, requiere menos crecimiento y, por lo tanto, tendrá una disminución en la síntesis de ARNr y una disminución en los genes de ADNr que se transcriben. Cuando se estimula la síntesis de ARNr, SL1 (factor de selectividad 1) se unirá a los promotores de los genes de ADNr que anteriormente estaban silenciados y reclutará un complejo de preiniciación al que se unirá Pol I y comenzará la transcripción del ARNr.

Los cambios en la transcripción del ARNr también pueden ocurrir a través de cambios en la tasa de transcripción. Si bien el mecanismo exacto a través del cual la Pol I aumenta su tasa de transcripción aún se desconoce, la evidencia ha demostrado que la síntesis de ARNr puede aumentar o disminuir sin cambios en la cantidad de ADNr transcrito activamente.

Ciclo de transcripción

En el proceso de transcripción (por cualquier polimerasa), hay tres etapas principales:

  1. Iniciación: la construcción del complejo de la ARN polimerasa en el promotor del gen con la ayuda de factores de transcripción.
  2. Elongación: la transcripción real de la mayoría del gen en una secuencia de ARN correspondiente.
  3. Terminación: el cese de la transcripción del ARN y el desmontaje del complejo ARN polimerasa.

Iniciación

La Pol I no requiere una caja TATA en el promotor, sino que depende de un elemento de control ascendente (UCE) ubicado entre −200 y −107, y un elemento central ubicado entre −45 y +20. [9] [10]

  1. El factor de unión ascendente eucariota dimérico ( UBF ) une el UCE y el elemento central.
  2. UBF recluta y se une a un complejo proteico llamado SL1 en humanos (o TIF-IB en ratones), compuesto por la proteína de unión a TATA (TBP) y tres factores asociados a TBP (TAF). [11] [12]
  3. El dímero UBF contiene varias cajas de grupo de alta movilidad ( cajas HMG ) que introducen bucles en la región ascendente, lo que permite que el UCE y los elementos centrales entren en contacto.
  4. RRN3 /TIF-IA está fosforilado y se une a Pol I.
  5. La Pol I se une al complejo UBF/SL1 a través de RRN3/TIF-IA y comienza la transcripción.

Téngase en cuenta que este proceso es variable en diferentes organismos. [10]

Alargamiento

A medida que la Pol I escapa y deja atrás al promotor, UBF y SL1 permanecen unidos al promotor, listos para reclutar otra Pol I. De hecho, cada gen de ADNr activo puede transcribirse varias veces simultáneamente, a diferencia de los genes transcritos por Pol II, que se asocian solo con un complejo a la vez. Si bien la elongación se produce sin impedimentos in vitro, no está claro en este momento si este proceso ocurre en una célula, dada la presencia de nucleosomas . La Pol I parece transcribirse a través de nucleosomas, ya sea evitándolos o interrumpiéndolos, tal vez asistida por actividades de remodelación de la cromatina. Además, UBF también podría actuar como retroalimentación positiva, mejorando la elongación de la Pol I a través de una función antirrepresora. Un factor adicional, TIF-IC, también puede estimular la tasa general de transcripción y suprimir la pausa de la Pol I. A medida que la Pol I avanza a lo largo del ADNr, se forman superenrollamientos tanto por delante como por detrás del complejo. Estos son desenrollados por la topoisomerasa I o II a intervalos regulares, de manera similar a lo que se observa en la transcripción mediada por Pol II. [ cita requerida ]

Es probable que la elongación se interrumpa en los sitios donde el ADN está dañado. La reparación acoplada a la transcripción ocurre de manera similar a los genes transcritos por Pol II y requiere la presencia de varias proteínas de reparación del ADN, como TFIIH, CSB y XPG.

Terminación

En eucariotas superiores, TTF-I se une y dobla el sitio de terminación en el extremo 3' de la región transcrita. Esto obligará a la Pol I a detenerse. TTF-I, con la ayuda del factor de liberación de transcripción PTRF y una región rica en T, inducirá a la Pol I a terminar la transcripción y a disociarse del ADN y de la nueva transcripción. La evidencia sugiere que la terminación podría ser limitante de la velocidad en casos de alta producción de ARNr. TTF-I y PTRF estimularán entonces indirectamente la reiniciación de la transcripción por la Pol I en el mismo gen de ADNr. En organismos como la levadura en ciernes, el proceso parece ser mucho más complicado y aún no está completamente dilucidado. [ cita requerida ]

Punto caliente de recombinación

Los puntos calientes de recombinación son secuencias de ADN que aumentan la recombinación local. La secuencia HOT1 en levadura es uno de los puntos calientes de recombinación mitótica mejor estudiados . La secuencia HOT1 incluye un promotor de transcripción de la ARN polimerasa I. En una cepa mutante de levadura defectuosa en la ARN polimerasa I, la actividad de HOT1 en la promoción de la recombinación se elimina. El nivel de actividad de transcripción de la ARN polimerasa I que depende del promotor en la secuencia HOT1 parece determinar el nivel de recombinación mitótica cercana. [13]

Véase también

Referencias

  1. ^ Russell, Jackie; Zomerdijk, Joost CBM (2006). "La maquinaria de transcripción de la ARN polimerasa I". Simposio de la Sociedad Bioquímica . 73 (73): 203–16. doi :10.1042/bss0730203. PMC  3858827. PMID  16626300 .
  2. ^ Engel, Christoph; Sainsbury, Sarah; Cheung, Alan C.; Kostrewa, Dirk; Cramer, Patrick (23 de octubre de 2013). "Estructura de la ARN polimerasa I y regulación de la transcripción". Nature . 502 (7473): 650–655. Bibcode :2013Natur.502..650E. doi :10.1038/nature12712. hdl : 11858/00-001M-0000-0015-3B48-5 . PMID  24153182. S2CID  205236187.
  3. ^ Zentner, Gabriel E; Saiakhova, Alina; Manaenkov, Pavel; Adams, Mark D; Scacheri, Peter C (25 de febrero de 2011). "Análisis genómico integrativo del ADN ribosómico humano". Investigación de ácidos nucleicos . 39 (12): 4949–4960. doi : 10.1093/nar/gkq1326. PMC 3130253 . PMID  21355038. 
  4. ^ Edger, Patrick P; Tang, Michelle; Bird, Kevin A; Mayfield, Dustin R; Conant, Gavin; Mummenhoff, Klaus; Koch, Marcus A; Pires, J Chris (1 de julio de 2014). "Análisis de la estructura secundaria de los espaciadores transcritos internos del ARNr nuclear y evaluación de su utilidad filogenética en las Brassicaceae (mostazas)". PLOS ONE . ​​9 (7): e101341. Bibcode :2014PLoSO...9j1341E. doi : 10.1371/journal.pone.0101341 . PMC 4077792 . PMID  24984034. 
  5. ^ Appling, Dean; Anthony-Cahill, Spencer; Mathews, Christopher (2016). Bioquímica: conceptos y conexiones . Hoboken, Nueva Jersey: Pearson. pág. 742. ISBN 978-0-321-83992-3.
  6. ^ Watkins, Nicholas J.; Bohnsack, Markus T. (mayo de 2012). "Los snoRNP de caja C/D y H/ACA: actores clave en la modificación, procesamiento y plegamiento dinámico del ARN ribosómico". Wiley Interdisciplinary Reviews: ARN . 3 (3): 397–414. doi :10.1002/wrna.117. PMID  22065625. S2CID  25766812.
  7. ^ ab Venema, Jaap; Tollervey, David (diciembre de 1999). "Síntesis de ribosomas en Saccharomyces cerevisiae". Revisión anual de genética . 33 (1): 261–311. doi :10.1146/annurev.genet.33.1.261. PMID  10690410.
  8. ^ Grandori, Carla; Gomez-Roman, Natividad; Felton-Edkins, Zoe A.; Ngouenet, Celine; Galloway, Denise A.; Eisenman, Robert N.; White, Robert J. (20 de febrero de 2005). "c-Myc se une al ADN ribosomal humano y estimula la transcripción de genes de ARNr por la ARN polimerasa I". Nature Cell Biology . 7 (3): 311–318. doi :10.1038/ncb1224. PMID  15723054. S2CID  8913931.
  9. ^ Jantzen, Hans-Michael; Admon, Arie; Bell, Stephen P.; Tjian, Robert (26 de abril de 1990). "El factor de transcripción nucleolar hUBF contiene un motivo de unión al ADN con homología con las proteínas HMG". Nature . 344 (6269): 830–836. Bibcode :1990Natur.344..830J. doi : 10.1038/344830a0 . PMID  2330041. S2CID  4280039.
  10. ^ ab Grummt, Ingrid (15 de julio de 2003). "La vida en un planeta propio: regulación de la transcripción de la ARN polimerasa I en el nucléolo". Genes & Development . 17 (14): 1691–1702. doi : 10.1101/gad.1098503R . PMID  12865296 . Consultado el 16 de diciembre de 2014 .
  11. ^ Learned, R Marc; Cordes, Sabine; Tjian, Robert (junio de 1985). "Purificación y caracterización de un factor de transcripción que confiere especificidad promotora a la ARN polimerasa I humana". Biología molecular y celular . 5 (6): 1358–69. doi :10.1128/MCB.5.6.1358. PMC 366865 . PMID  3929071. 
  12. ^ Clos, Joachim; Buttgereit, Detlev; Grummt, Ingrid (febrero de 1986). "Un factor de transcripción purificado (TIF-IB) se une a secuencias esenciales del promotor del ADNr de ratón". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 83 (3): 604–8. Bibcode :1986PNAS...83..604C. doi : 10.1073/pnas.83.3.604 . PMC 322912 . PMID  3456157. 
  13. ^ Serizawa N, Horiuchi T, Kobayashi T (2004). "Hiperrecombinación mediada por transcripción en HOT1". Genes Cells . 9 (4): 305–15. doi :10.1111/j.1356-9597.2004.00729.x. PMID  15066122.