stringtranslate.com

Fotosistema I

Reacciones de la fotosíntesis dependientes de la luz en la membrana del tilacoide
Ubicación de los genes psa en el genoma del cloroplasto de Arabidopsis thaliana . Los 21 genes codificadores de proteínas que participan en la fotosíntesis se muestran como cuadros verdes.

El fotosistema I ( PSI , u plastocianina-ferredoxina oxidorreductasa ) es uno de los dos fotosistemas en las reacciones fotosintéticas de luz de las algas , plantas y cianobacterias . El fotosistema  I [1] es un complejo proteico de membrana integral que utiliza energía de la luz para catalizar la transferencia de electrones a través de la membrana tilacoide desde la plastocianina a la ferredoxina . En última instancia, los electrones que son transferidos por el fotosistema I se utilizan para producir el transportador de hidrógeno de energía moderada NADPH . [2] La energía fotónica absorbida por el fotosistema I también produce una fuerza protón-motriz que se utiliza para generar ATP . El PSI está compuesto por más de 110 cofactores , significativamente más que el fotosistema II . [3]

Historia

Este fotosistema se conoce como PSI porque fue descubierto antes que el Fotosistema II, aunque experimentos posteriores demostraron que el Fotosistema II es en realidad la primera enzima de la cadena de transporte de electrones fotosintética. Algunos aspectos del PSI se descubrieron en la década de 1950, pero la importancia de estos descubrimientos aún no se reconoció en ese momento. [4] Louis Duysens propuso por primera vez los conceptos de Fotosistemas I y II en 1960 y, en el mismo año, una propuesta de Fay Bendall y Robert Hill reunió descubrimientos anteriores en una teoría coherente de reacciones fotosintéticas en serie. [4] La hipótesis de Hill y Bendall fue confirmada más tarde en experimentos realizados en 1961 por los grupos de Duysens y Witt. [4]

Componentes y acción

Dos subunidades principales de PSI, PsaA y PsaB, son proteínas estrechamente relacionadas involucradas en la unión de los cofactores vitales de transferencia de electrones P 700 , Acc, A 0 , A 1 y F x . PsaA y PsaB son proteínas integrales de membrana de 730 a 750 aminoácidos que contienen 11 segmentos transmembrana . Un grupo de hierro-azufre [4Fe-4S] llamado F x está coordinado por cuatro cisteínas ; dos cisteínas son proporcionadas cada una por PsaA y PsaB. Las dos cisteínas en cada una son proximales y se encuentran en un bucle entre el noveno y el décimo segmento transmembrana. Un motivo de cremallera de leucina parece estar presente [5] aguas abajo de las cisteínas y podría contribuir a la dimerización de PsaA/PsaB. Los aceptores terminales de electrones FA y FB , también grupos de hierro-azufre [4Fe-4S], se encuentran en una proteína de 9 kDa llamada PsaC que se une al núcleo PsaA/PsaB cerca de F X. [6] [7]

Fotón

La fotoexcitación de las moléculas de pigmento en el complejo de antena induce la transferencia de electrones y energía. [10]

Complejo de antenas

El complejo de antena está compuesto de moléculas de clorofila y carotenoides montadas sobre dos proteínas. [11] Estas moléculas de pigmento transmiten la energía de resonancia de los fotones cuando se fotoexcitan. Las moléculas de antena pueden absorber todas las longitudes de onda de luz dentro del espectro visible . [12] El número de estas moléculas de pigmento varía de un organismo a otro. Por ejemplo, la cianobacteria Synechococcus elongatus ( Thermosynechococcus elongatus ) tiene alrededor de 100 clorofilas y 20 carotenoides, mientras que los cloroplastos de espinaca tienen alrededor de 200 clorofilas y 50 carotenoides. [12] [3] Ubicadas dentro del complejo de antena de PSI hay moléculas de clorofila llamadas centros de reacción P700 . La energía que pasan las moléculas de antena se dirige al centro de reacción. Puede haber hasta 120 o tan solo 25 moléculas de clorofila por P700. [13]

Centro de reacción P700

El centro de reacción P700 está compuesto de clorofila a modificada que absorbe mejor la luz a una longitud de onda de 700  nm . [14] P700 recibe energía de las moléculas de antena y utiliza la energía de cada fotón para elevar un electrón a un nivel de energía más alto (P700*). Estos electrones se mueven en pares en un proceso de oxidación/reducción desde P700* a los aceptores de electrones, dejando atrás P700 + . El par de P700* - P700 + tiene un potencial eléctrico de aproximadamente −1,2 voltios . El centro de reacción está formado por dos moléculas de clorofila y, por lo tanto, se denomina dímero . [11] Se cree que el dímero está compuesto por una molécula de clorofila a y una molécula de clorofila a ′. Sin embargo, si P700 forma un complejo con otras moléculas de antena, ya no puede ser un dímero. [13]

Clorofila A modificada0y un1

Las dos moléculas de clorofila modificadas son aceptores tempranos de electrones en PSI. Están presentes una por cada lado PsaA/PsaB, formando dos ramas que los electrones pueden tomar para llegar a F x . A 0 acepta electrones de P700*, los pasa a A 1 del mismo lado, que luego pasa el electrón a la quinona del mismo lado. Diferentes especies parecen tener diferentes preferencias por cada rama A/B. [15]

Filoquinona

Una filoquinona , a veces llamada vitamina K 1 , [16] es el siguiente aceptor de electrones temprano en PSI. Oxida A 1 para recibir el electrón y a su vez es reoxidada por F x , desde donde el electrón pasa a F b y F a . [16] [17] La ​​reducción de F x parece ser el paso limitante de la velocidad. [15]

Complejo de hierro y azufre

En el complejo PSI se encuentran tres centros proteínicos de reacción hierro-azufre . Se denominan F x , F a y F b y actúan como relés electrónicos. [18] F a y F b están unidos a subunidades proteínicas del complejo PSI y F x está ligado al complejo PSI. [18] Varios experimentos han demostrado cierta disparidad entre las teorías de la orientación del cofactor hierro-azufre y el orden de operación. [18] En un modelo, F x pasa un electrón a F a , que lo pasa a F b para alcanzar la ferredoxina. [15]

Ferredoxina

La ferredoxina (Fd) es una proteína soluble que facilita la reducción del NADP+
a NADPH. [19] Fd se mueve para transportar un electrón ya sea a un tilacoide solitario o a una enzima que reduce NADP+
. [19] Las membranas tilacoides tienen un sitio de unión para cada función del Fd. [19] La función principal del Fd es transportar un electrón desde el complejo hierro-azufre a la enzima ferredoxina– NADP+
reductasa
. [19]

Ferredoxina–Programa Nacional de Desarrollo+reductasa (FNR)

Esta enzima transfiere el electrón de la ferredoxina reducida al NADP.+
para completar la reducción a NADPH. [20] El FNR también puede aceptar un electrón del NADPH uniéndose a él. [20]

Plastocianina

La plastocianina es un transportador de electrones que transfiere el electrón del citocromo b6f al cofactor P700 del PSI en su estado ionizado P700 + . [10] [21]

Dominio proteico Ycf4

El dominio proteico Ycf4 que se encuentra en la membrana tilacoide es vital para el fotosistema I. Esta proteína transmembrana tilacoide ayuda a ensamblar los componentes del fotosistema I. Sin ella, la fotosíntesis sería ineficiente. [22]

Evolución

Los datos moleculares muestran que el PSI probablemente evolucionó a partir de los fotosistemas de las bacterias verdes del azufre . Los fotosistemas de las bacterias verdes del azufre y los de las cianobacterias , las algas y las plantas superiores no son iguales, pero hay muchas funciones análogas y estructuras similares. Tres características principales son similares entre los diferentes fotosistemas. [23] Primero, el potencial redox es lo suficientemente negativo como para reducir la ferredoxina. [23] Luego, los centros de reacción aceptores de electrones incluyen proteínas de hierro-azufre. [23] Por último, los centros redox en complejos de ambos fotosistemas se construyen sobre un dímero de subunidad proteica. [ 23] El fotosistema de las bacterias verdes del azufre incluso contiene todos los mismos cofactores de la cadena de transporte de electrones en PSI. [23] El número y grado de similitudes entre los dos fotosistemas indica fuertemente que el PSI y el fotosistema análogo de las bacterias verdes del azufre evolucionaron a partir de un fotosistema ancestral común.

Véase también

Referencias

  1. ^ Golbeck JH (1987). "Estructura, función y organización del complejo del centro de reacción del fotosistema I". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Reseñas sobre bioenergética . 895 (3): 167–204. doi :10.1016/s0304-4173(87)80002-2. PMID  3333014.
  2. ^ Yamori W, Shikanai T (abril de 2016). "Funciones fisiológicas del transporte cíclico de electrones alrededor del fotosistema I para mantener la fotosíntesis y el crecimiento de las plantas". Revisión anual de biología vegetal . 67 : 81–106. doi : 10.1146/annurev-arplant-043015-112002 . PMID  26927905.
  3. ^ ab Nelson N, Yocum CF (2006). "Estructura y función de los fotosistemas I y II". Revista anual de biología vegetal . 57 : 521–65. doi :10.1146/annurev.arplant.57.032905.105350. PMID  16669773.
  4. ^ abc Fromme P, Mathis P (2004). "Descifrando el centro de reacción del fotosistema I: una historia, o la suma de muchos esfuerzos". Photosynthesis Research . 80 (1–3): 109–24. Bibcode :2004PhoRe..80..109F. doi :10.1023/B:PRES.0000030657.88242.e1. PMID  16328814. S2CID  13832448.
  5. ^ Webber AN, Malkin R (mayo de 1990). "Las proteínas del centro de reacción del fotosistema I contienen motivos de cremallera de leucina. Un papel propuesto en la formación de dímeros". FEBS Letters . 264 (1): 1–4. Bibcode :1990FEBSL.264....1W. doi :10.1016/0014-5793(90)80749-9. PMID  2186925. S2CID  42294700.
  6. ^ Jagannathan B, Golbeck JH (abril de 2009). "Rompiendo la simetría biológica en proteínas de membrana: la orientación asimétrica de PsaC en el núcleo del fotosistema I pseudo-C2 simétrico". Ciencias de la vida celular y molecular . 66 (7): 1257–70. doi :10.1007/s00018-009-8673-x. PMC 11131447 . PMID  19132290. S2CID  32418758. 
  7. ^ Jagannathan B, Golbeck JH (junio de 2009). "Comprensión de la interfaz de unión entre PsaC y el heterodímero PsaA/PsaB en el fotosistema I". Bioquímica . 48 (23): 5405–16. doi :10.1021/bi900243f. PMID  19432395.
  8. ^ Saenger W, Jordan P, Krauss N (abril de 2002). "El ensamblaje de subunidades proteicas y cofactores en el fotosistema I". Current Opinion in Structural Biology . 12 (2): 244–54. doi :10.1016/S0959-440X(02)00317-2. PMID  11959504.
  9. ^ Plöchinger, Magdalena; Torabi, Salar; Rantala, Marjaana; Tikkanen, Mikko; Suorsa, Marjaana; Jensen, Poul-Erik; Aro, Eva Mari; Meurer, Jörg (septiembre de 2016). "La proteína de bajo peso molecular PsaI estabiliza el sitio de acoplamiento del complejo II de captación de luz del fotosistema I". Fisiología vegetal . 172 (1): 450–463. doi :10.1104/pp.16.00647. PMC 5074619 . PMID  27406169. 
  10. ^ ab Raven PH, Evert RF, Eichhorn SE (2005). "Fotosíntesis, luz y vida". Biología de las plantas (7.ª ed.). Nueva York: WH Freeman. págs. 121–127. ISBN 978-0-7167-1007-3.
  11. ^ ab Zeiger E, Taiz L (2006). "Cap. 7: Tema 7.8: Fotosistema I". Fisiología vegetal (4.ª ed.). Sunderland, MA: Sinauer Associates. ISBN 0-87893-856-7.[ enlace muerto permanente ]
  12. ^ ab "El proceso fotosintético". Archivado desde el original el 19 de febrero de 2009.
  13. ^ ab Shubin VV, Karapetyan NV, Krasnovsky AA (enero de 1986). "Disposición molecular del complejo pigmento-proteína del fotosistema 1". Photosynthesis Research . 9 (1–2): 3–12. Bibcode :1986PhoRe...9....3S. doi :10.1007/BF00029726. PMID  24442279. S2CID  26158482.
  14. ^ Rutherford AW, Heathcote P (diciembre de 1985). "Fotoquímica primaria en el fotosistema I". Photosynthesis Research . 6 (4): 295–316. Bibcode :1985PhoRe...6..295R. doi :10.1007/BF00054105. PMID  24442951. S2CID  21845584.
  15. ^ abc Grotjohann, I; Fromme, P (2013). "Fotosistema I". Enciclopedia de química biológica (segunda edición). Londres. págs. 503–507. doi :10.1016/B978-0-12-378630-2.00287-5. ISBN 978-0-12-378630-2.{{cite book}}: Mantenimiento de CS1: falta la ubicación del editor ( enlace )
  16. ^ ab Itoh S, Iwaki M (1989). "La vitamina K1 (filoquinona) restaura la renovación de los centros FeS de las partículas PSI de espinaca extraídas con éter". FEBS Letters . 243 (1): 47–52. doi : 10.1016/0014-5793(89)81215-3 . S2CID  84602152.
  17. ^ Palace GP, Franke JE, Warden JT (mayo de 1987). "¿Es la filoquinona un transportador obligado de electrones en el fotosistema I?". FEBS Letters . 215 (1): 58–62. Bibcode :1987FEBSL.215...58P. doi : 10.1016/0014-5793(87)80113-8 . PMID  3552735. S2CID  42983611.
  18. ^ abc Vassiliev IR, Antonkine ML, Golbeck JH (octubre de 2001). "Cúmulos de hierro y azufre en centros de reacción de tipo I". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics . 1507 (1–3): 139–60. doi :10.1016/S0005-2728(01)00197-9. PMID  11687212.
  19. ^ abcd Forti G, Maria P, Grubas G (1985). "Dos sitios de interacción de la ferredoxina con tilacoides". FEBS Letters . 186 (2): 149–152. Código Bibliográfico :1985FEBSL.186..149F. doi : 10.1016/0014-5793(85)80698-0 . S2CID  83495051.
  20. ^ ab Madoz J, Fernández Recio J, Gómez Moreno C, Fernández VM (noviembre de 1998). "Investigación de la reacción de diaforasa de la ferredoxina–NADP+ reductasa mediante métodos electroquímicos" (PDF) . Bioelectroquímica y bioenergética . 47 (1): 179–183. doi :10.1016/S0302-4598(98)00175-5.
  21. ^ Hope AB (enero de 2000). "Transferencias de electrones entre el citocromo f, la plastocianina y el fotosistema I: cinética y mecanismos". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics . 1456 (1): 5–26. doi :10.1016/S0005-2728(99)00101-2. PMID  10611452.
  22. ^ Boudreau E, Takahashi Y, Lemieux C, Turmel M, Rochaix JD (octubre de 1997). "Los marcos de lectura abiertos ycf3 y ycf4 del cloroplasto de Chlamydomonas reinhardtii son necesarios para la acumulación del complejo del fotosistema I". The EMBO Journal . 16 (20): 6095–104. doi :10.1093/emboj/16.20.6095. PMC 1326293 . PMID  9321389. 
  23. ^ abcde Lockau W, Nitschke W (1993). "Fotosistema I y sus contrapartes bacterianas". Physiologia Plantarum . 88 (2): 372–381. doi :10.1111/j.1399-3054.1993.tb05512.x.

Enlaces externos