Boletellus ananas , comúnmente conocido como el boleto de piña , es un hongo de la familia Boletaceae , y la especie tipo del género Boletellus . Se distribuye en el sureste de América del Norte, noreste de América del Sur, Asia y Nueva Zelanda, donde crece disperso o en grupos en el suelo, a menudo en la base de robles y pinos . El cuerpo fructífero se caracteriza por las escamas de color rosa rojizo (o de color tostado rosado a amarillento si se trata de un espécimen más viejo) en el sombrero que a menudo se encuentran colgando del borde. La superficie de los poros en la parte inferior del sombrero está formada por poros irregulares o angulares de hasta 2 mm de ancho que adquieren un color azul. Es amarillo cuando es joven, pero envejece hasta alcanzar un color marrón oliva intenso. Microscópicamente, B. ananas se distingue por grandes esporas con estrías cruzadas en las crestas e hifas incrustadas en espiral en los apéndices marginales y la pulpa del tallo. Anteriormente conocida como Boletus ananas y Boletus coccinea (entre otros sinónimos ), la especie recibió su nombre actual de manos de William Alphonso Murrill en 1909. Se han descritodos variedades de Boletellus ananas . Como muchos otros boletes, esta especie se considera comestible , pero no se recomienda su consumo.
La especie fue nombrada por primera vez por Moses Ashley Curtis como Boletus ananas en 1848, basándose en especímenes que encontró cerca del río Santee , en Carolina del Sur . [2] En 1909, William Murrill describió el nuevo género Boletellus e hizo de Boletellus ananas la especie tipo . Según Murrill, el taxón Boletus isabellinus , descrito por Charles Horton Peck en 1897 a partir de especímenes recolectados en Ocean Springs, Mississippi , [3] es un sinónimo de B. ananas ; Peck describió esta especie a partir de especímenes no desarrollados. [4] Wally Snell más tarde dudó de la conclusión de Murrill en una publicación de 1933; consideró que las diferencias en la estructura de las esporas eran demasiado grandes para considerar a la especie conespecífica con B. ananas , aunque admitió que era imposible llegar a conclusiones definitivas hasta que los cuerpos fructíferos maduros y las impresiones de esporas estuvieran disponibles para su estudio. [5] Rolf Singer y colegas (1992) sugirieron el nombre Boletellus coccineus para Boletellus ananas . [6] Sin embargo, Singer creó este nombre en la creencia errónea de que el primer nombre disponible para el taxón era Boletus coccineus , propuesto por Elias Magnus Fries en 1838. [7] Sin embargo, el nombre de Fries es un homónimo posterior ilegítimo (compárese con Boletus coccineus , nombrado por Bulliard en 1791 [8] ), y la combinación de Singer en realidad se basa en Strobilomyces coccineus , nombrado por Pier Andrea Saccardo en 1888. [9] Por lo tanto, el primer nombre disponible para la especie es Boletus ananas MA Curtis 1848, el basiónimo de Boletellus ananas .
Boletellus ananas , como especie tipo del género Boletellus , se encuentra en la sección Boletellus que Singer basó en el sombrero escamoso y seco con tonos rojo-rosados, un velo marginal que abraza el tallo cuando está inmaduro y esporas con crestas longitudinales que tienen más de 16 μm de largo. [10] El nombre del género Boletellus significa "boletus pequeño", [11] mientras que el epíteto específico ananas alude al nombre de la piña, refiriéndose al patrón de escamas similar a la piña en la superficie del sombrero. [12] El hongo se conoce comúnmente como "bolete piña". [13]
El sombrero de B. ananas mide 33–74 mm (1.3–2.9 in) de ancho y es plano-convexo (plano en un lado y redondeado en el otro). Está cubierto de escamas (pequeñas escamas) que pueden estar presionadas contra el sombrero o curvadas hacia atrás sobre sí mismas. Las escamas varían en color desde marrón rojizo a rojo tostado, a rosa a gris rosado, y están más concentradas y más escamosas en el centro del sombrero, extendiéndose desde crema a naranja-rosa claro a rosa-rojo claro. El margen abraza el tallo cuando es joven; en la madurez se separa en restos de velo triangular (apéndices) que miden 6–12 por 3–10 mm. El color de estos apéndices varía desde beige -blanco a rosa pálido. La pulpa tiene 2–3 mm de espesor en el borde del sombrero, 7–10 mm sobre los tubos y 11–18 mm en el centro. Es de color blanco ante a amarillo claro, y rápidamente se vuelve azulado al exponerse al aire. Los tubos miden 1–5 mm de largo en el margen, 10–20 mm en el centro y 4–6 mm en el tallo. Son anchos y profundamente deprimidos alrededor del tallo, de longitudes irregulares, de color amarillo brillante a amarillo oliva a amarillo mostaza, y también se vuelven azules rápidamente al exponerlos. Los poros son del mismo color que los tubos, y rápidamente se vuelven azul verdosos con la presión; son angulares, y hay alrededor de 0,5–1,5 poros por mm. El tallo mide 53–115 cm (20,9–45,3 pulgadas) por 6–14 mm (0,2–0,6 pulgadas) de ancho, y gradualmente se hace más grande hacia la base a 10–19 mm. La parte superior del tallo es de color crema a rosa, el medio finamente estriado longitudinalmente, con las estrías oscureciéndose con la manipulación, de color rojo lavanda a marrón rojizo, más claro con la edad. Inmediatamente por encima del tomento basal, la superficie del tallo es de color crema con pocas estrías. El tomento basal está formado por pelos blancos, rígidos y gruesos en los 6–50 mm inferiores. La pulpa del tallo es sólida (es decir, no hueca), de color blanco a marrón amarillento o amarillo claro, y se vuelve ligeramente azul con la exposición. El olor no es característico (aunque se ha descrito como "mohoso") [14] y el sabor es suave. [1]
Las esporas son de color marrón oliváceo en depósitos medios a pesados . Son inamiloides , almendradas, contienen una o más gotitas de aceite y miden 17,5–22,2 por 6,4–8 μm . La pared de la espora tiene un espesor de 0,5–1 μm, con 12–14 crestas longitudinales. Estas crestas tienen menos de 1 μm de alto, ocasionalmente se bifurcan, convergen en los polos, con diminutas estrías cruzadas. [1] Aunque estas estrías cruzadas son visibles cuando se observan con microscopía óptica , no son evidentes cuando se ven con microscopía electrónica de barrido . [15] El apéndice hiliar (la región de una espora que se adhiere al basidio a través del esterigma ) tiene una longitud de 0,3–1 μm. Los basidios tienen cuatro esporas, forma de maza y tienen numerosos glóbulos refractarios ; miden 39–57 por 11–15 μm. Los pleurocistidios ( cistidios en la cara de una branquia) miden 42–47 por 8-12 μm, hinchados y picudos, ligeramente capitados. Son abundantes, surgen del subhimenio, proyectando 19,3–29,6 μm por encima de la empalizada himenial, de paredes delgadas, hialinos y desprovistos de contenido refractivo. Los queilocistidios (cistidios en el borde de una branquia) miden 19–42 por 5–11 μm, hinchados, cilíndricos a estrechamente en forma de cubo, de paredes delgadas y poco frecuentes. La carne del himenio es boletoide y fuertemente divergente (compuesta de diferentes capas de tejido). El medioestrato (capa de tejido media) tiene 24,7–45,7 μm de ancho y está formado por muchas hifas paralelas ligeramente entrelazadas . Las hifas del estrato lateral tienen 4,4–8,4 μm de ancho, son hialinas, gelatinizadas en una solución diluida de hidróxido de potasio (KOH) y regularmente septadas . La cutícula del sombrero es una empalizada tricodérmica densamente entrelazada (una cadena erecta, aproximadamente paralela de células muy juntas) de elementos cilíndricos con células terminales infladas. Las células terminales tienen 23,5–51,9 por 9,4–16,8 μm, inamiloide, cilíndricas a en forma de maza, entrelazadas y concentradas en las escamosas. Los apéndices marginales están compuestos por tramas de hifas infladas entrelazadas, algunas con pigmentos incrustantes dorados tenues dispuestos en espiral que son evidentes cuando se montan en agua, KOH y reactivo de Melzer . La pulpa del sombrero está compuesta por hifas muy entrelazadas que miden entre 7,4 y 11,1 μm de ancho y que son hialinas en agua, gelatinizadas e hialinas en KOH y regularmente septadas .La cutícula del tallo es una empalizada tricodérmica de elementos cilíndricos con células terminales infladas. Las células terminales sobresalen 30,4–63 μm y tienen forma de cilíndricas a mazas, ocasionalmente con una punta afilada abrupta. La pulpa del tallo está formada por hifas densamente entrelazadas de 4,9–7,2 μm de ancho, con pigmentos incrustantes dorados tenues dispuestos en espiral que se pueden ver en KOH, reactivo de Melzer y agua. Las conexiones de abrazadera están ausentes en esta especie. [1]
La variedad típica de Boletellus ananas tiene cuerpos fructíferos consistentemente más grandes que B. ananas var. minor Singer de Brasil y Nicaragua, y carece de los queilocistidios de paredes gruesas de B. ananas var. crassotunicatus Singer de Nicaragua y Panamá. [6] [16] [17]
Aunque el hongo se utiliza como alimento en México, [18] las guías de campo lo catalogan como “no comestible” [13] o “no recomendado”. [12]
Strobilomyces strobilaceus es más o menos similar en apariencia debido a su sombrero áspero y escamoso y margen lacerado, pero se puede distinguir de B. ananas por un tallo liso sin anillo, esporas diferentes y una pulpa menos dura. La especie australiana Boletellus ananiceps tiene esporas con costillas longitudinales estrechas que no tienen estrías cruzadas. B. dissiliens tiene colores que no son rojos como en B. ananas y poros que pueden volverse rojizos en la madurez. Además, la pulpa del sombrero de B. dissiliens se vuelve azul al exponerse al aire. [19]
Los cuerpos fructíferos de B. ananas crecen típicamente dispersos o en grupos debajo de robles y pinos, a menudo en sus bases. [11] En Guyana , el hongo generalmente fructifica solo o en pares a 1-2 m (3,3-6,6 pies) sobre el nivel del suelo en los troncos del árbol tropical Dicymbe corymbosa (subfamilia Caesalpinioideae ), asociado con ectomicorrizas dentro de acumulaciones húmicas. Rara vez se lo encuentra fructificando en el suelo sobre madera muy descompuesta y penetrada por las raíces. Rolf Singer sugirió que el hongo no era micorrízico , señalando que además de aparecer debajo o sobre las bases de pinos y robles , se encontraba en humus escaso y escombros acumulados en paredes de roca. Singer concluyó que la especie prefiere crecer en superficies duras. [20] Harry D. Thiers , en su estudio de la flora de boletus de Texas , escribió que B. ananas era una especie rara que a menudo fructificaba abundantemente después de un período prolongado de lluvia y alta humedad. [21]
Se ha observado que algunas variedades de B. ananas del sudeste de América del Norte, Costa Rica, Brasil, Panamá, Nicaragua y Guyana fructifican en troncos de árboles, [1] [4] [16] aunque se ha informado de fructificación terrestre en Malasia [22] y América Central. [1] Debido al hábito de fructificación típicamente elevado y la aparición en madera muerta, se ha debatido el estado ectomicorrízico de B. ananas ; en el protólogo Murrill señaló que "siempre se presenta como un parásito de heridas en troncos de pino o alrededor de la base de pinos vivos". [4] Todas las recolecciones se han realizado en asociación con árboles hospedantes ectotróficos, incluidas especies de Pinus y Quercus en el sudeste de América del Norte [4] y América Central, [16] [17] [23] Quercus humboldtii en Colombia, [24] varias especies de Fagaceae y Dipterocarpaceae en Malasia, [22] y especies de Leptospermum y Pinus en Nueva Zelanda. [25] En Guyana, los depósitos húmicos en los troncos de Dicymbe que contienen B. ananas están constantemente permeados con abundantes ectomicorrizas. [26] Se informó que el hongo forma asociaciones micorrízicas con eucaliptos en Australia, basándose en la asociación del cuerpo fructífero con los árboles. [27]
Su distribución en América del Norte abarca un rango que se extiende al norte desde Carolina del Norte hasta Florida , al oeste hasta Texas y al sur hasta México y América Central. [11] [28] En 2008, se informó por primera vez en las cuencas de los ríos Alto Potaro y Alto Ireng en Guyana . [1] También se ha recolectado en Nueva Zelanda, [25] Asia (incluyendo China, [29] Corea, [30] Malasia y Taiwán [31] ), y posiblemente Australia. [1] [16] [22]