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Genética de la coloración del agutí

Un pelo de gato que muestra bandas claras y oscuras causadas por la producción alterna de proteína de señalización agutí y α-MSH .

El gen agouti, la proteína de señalización de agouti (ASIP), es responsable de las variaciones de color en muchas especies. El agutí trabaja con la extensión para regular el color de la melanina que se produce en los pelos. La proteína agouti hace que se produzca feomelanina de color rojo a amarillo, mientras que la molécula competidora α-MSH señala la producción de eumelanina de color marrón a negro. En los ratones de tipo salvaje, los ciclos alternos de producción de agutí y α-MSH causan la coloración agutí . Cada pelo tiene bandas de color amarillo que crecieron durante la producción de agutí y negro que crecieron durante la producción de α-MSH. Los ratones de tipo salvaje también tienen vientres de color claro. Los pelos allí son de un color cremoso en toda su longitud porque la proteína agouti se produjo todo el tiempo que los pelos estaban creciendo. [1] [2]

En ratones y otras especies, las mutaciones de pérdida de función generalmente causan un color más oscuro, mientras que las mutaciones de ganancia de función causan un pelaje más amarillento. [3]

Ratones

Ambos ratones son agutíes amarillos viables ; sin embargo, el ratón de la derecha no lo expresa debido a la metilación epigenética.

En 1979 se conocían 17 alelos de agutí en ratones. [4]

Esta no es una lista completa de los alelos del agutí del ratón.

Es inusualmente probable que el alelo no agutí a revierta al alelo negro y fuego a t o al alelo agutí de vientre blanco A W . [5]

La producción de agutí está regulada por múltiples regiones promotoras diferentes, capaces de promover la transcripción solo en el área ventral (vientre), como se ve en los ratones agutí de vientre blanco y negro y fuego, o en todo el cuerpo pero solo durante una parte específica del ciclo de crecimiento del cabello, como se ve en los agutíes y los agutíes de vientre blanco. [6]

El amarillo letal y el amarillo viable causan obesidad , características de la diabetes tipo II y una mayor probabilidad de tumores. [2] En ratones normales, el agutí solo se expresa en la piel durante el crecimiento del cabello, pero estas mutaciones amarillas dominantes hacen que se exprese en otros tejidos, incluidos el hígado , los músculos y la grasa . [7] El locus caoba interactúa con el agutí y una mutación allí puede anular los efectos de pigmentación y peso corporal del amarillo letal. [8]

Los ratones agutí amarillos viables pueden heredar diferencias epigenéticas de su madre, lo que afecta el color amarillo o marrón que adquieren. [9]

El gen agouti del ratón se encuentra en el cromosoma 2. [2]

Perros

Un perro agutí, también llamado lobo sable

En los perros , el gen agutí está asociado con diversos colores y patrones de pelaje. [10]

Los alelos del locus A están relacionados con la producción de la proteína de señalización de agutí (ASIP) y determinan si un animal expresa una apariencia agutí y, al controlar la distribución del pigmento en los pelos individuales, qué tipo de agutí. Hay cuatro alelos conocidos que se encuentran en el locus A:

La mayoría de los textos sugieren que la jerarquía de dominancia para los alelos del locus A parece ser la siguiente: A y > a w > a t > a ; sin embargo, la investigación sugiere la existencia de relaciones de dominancia/recesividad por pares en diferentes familias y no la existencia de una única jerarquía en una familia. [16]

Un estudio de 2021 encontró causas genéticas distintas para el leonado y el sable, a los que se refiere como "amarillo dominante" y "amarillo sombreado". Ambos tienen un promotor del ciclo del pelo más activo que el agutí de tipo salvaje, pero el amarillo dominante también tiene un promotor ventral más activo. Se cree que el promotor del ciclo del pelo involucrado en estos colores surgió hace unos 2 millones de años en una especie extinta de cánido, que luego se hibridó con lobos. [17]

Gatos

El genotipo dominante, de tipo salvaje , A permite que los pelos tengan bandas negras y rojas (revelando el patrón atigrado subyacente), mientras que el alelo recesivo no agutí o "hipermelanístico", a , provoca la producción de pigmento negro durante todo el ciclo de crecimiento del pelo. [18] Por lo tanto, el genotipo no agutí (aa) enmascara u oculta el patrón atigrado, aunque a veces se puede ver una sugerencia del patrón subyacente (llamado "rayas fantasma"), especialmente en los gatitos. La coloración naranja ligada al sexo es epistática sobre el agutí y evita la producción de pigmento negro.

Caballos

En caballos normales, la ASIP restringe la producción de eumelanina a los "puntos": las patas, la crin, la cola, los bordes de las orejas, etc. [21] En 2001, los investigadores descubrieron una mutación recesiva en la ASIP que, cuando era homocigótica, dejaba al caballo sin ninguna ASIP funcional. Como resultado, los caballos capaces de producir pigmento negro verdadero tenían pelajes uniformemente negros. [22] El alelo dominante de tipo salvaje que produce el color castaño se simboliza como A , mientras que el alelo recesivo que produce el color negro se simboliza como a . La extensión es epistática sobre el agutí y causará coloración castaña independientemente de qué alelos agutí estén presentes.

Historia

La causa de los distintos tonos del castaño, en particular los factores genéticos responsables del castaño salvaje y del marrón foca , han sido objeto de debate durante más de 50 años. En 1951, el zoólogo Miguel Odriozola publicó "A los colores del caballo", en el que sugería cuatro posibles alelos para el gen "A", A+ , A , A t y a , en orden de más dominante a menos dominante. [23]

Las zonas pálidas de este caballo castaño se deben al rasgo pangaré.

Esto se aceptó hasta la década de 1990, cuando se popularizó una hipótesis diferente. [24] Proponía que los tonos castaños eran causados ​​por muchos genes diferentes, algunos que aclaraban el pelaje, otros que lo oscurecían. Esta teoría también sugería que los caballos de color marrón foca eran caballos negros con un rasgo llamado pangare . [25] Pangaré es un rasgo ancestral también llamado "harinoso", que delinea las partes suaves o comunicativas del caballo en un tono tostado.

La combinación de negro y pangaré fue descartada como la causa del color marrón foca en 2001, cuando un equipo de investigación francés publicó Mutaciones en los loci agouti (ASIP), de extensión (MC1R) y marrón (TYRP1) y su asociación con los fenotipos del color del pelaje en caballos (Equus caballus) . Este estudio utilizó una prueba de ADN para identificar el alelo recesivo a en el locus agutí y descubrió que ninguno de los caballos que encajaban en el fenotipo del color marrón foca eran homocigotos para el alelo a . [22] [26]

En 2007, un laboratorio de genética comenzó a ofrecer una prueba para lo que creían que era un marcador del color marrón foca, y más tarde para un alelo agutí que creían que causaba el color marrón. [27] [28] Sin embargo, la investigación subyacente nunca se publicó y la prueba se suspendió en 2015 debido a resultados poco confiables. [29] [30]

Los alelos genéticos que crean el color marrón foca y el castaño salvaje siguen siendo desconocidos. Todavía se plantea la hipótesis de que, hasta cierto punto, el oscurecimiento del color del pelaje en algunos castaños puede estar regulado por genes no relacionados con rasgos como el " hollín ". [31]

Burros

La mayoría de los burros tienen áreas de color crema a blanco grisáceo en el vientre y alrededor del hocico y los ojos, llamadas puntos claros o pangare . Sin embargo, una variante recesiva del agutí hace que esas áreas sean del mismo color que el cuerpo en un patrón llamado sin puntos claros o NLP, que es similar al negro recesivo en otros mamíferos. Este alelo se puede encontrar en los burros normandos y los burros miniatura americanos . [32]

Conejos

En los conejos, el tipo salvaje es agutí con vientre claro, y un alelo recesivo no agutí causa un pelaje negro. Se cree que un tercer alelo, posiblemente una mutación en una región reguladora o promotora, causa el color negro y tostado. Se estima que el alelo no agutí apareció por primera vez antes de 1700. [3]

El agutí está vinculado al gen de banda ancha , con una tasa de cruce de alrededor del 30%. [33]

Al igual que los ratones agutí de vientre blanco, los conejos con agutí de tipo salvaje producen transcripciones con diferentes extremos 5' no traducidos que tienen diferente expresión dorsal y ventral. El exón 1A solo se expresa en la región del vientre y puede ser responsable del color más claro en esa zona. [3]

Referencias

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