En agricultura y jardinería , trasplantar o replantar es la técnica de trasladar una planta de un lugar a otro. En la mayoría de los casos, esto se realiza iniciando una planta a partir de una semilla en condiciones óptimas, como en un invernadero o en un vivero protegido , y luego replantándola en otro lugar de cultivo, generalmente al aire libre. La máquina agrícola que hace esto se llama trasplantadora . Esto es común en la horticultura y el cultivo en camiones, donde plantar son sinónimos de trasplantar. En la horticultura de algunas plantas ornamentales , los trasplantes se utilizan con poca frecuencia y con cuidado porque conllevan un riesgo importante de matar la planta. [1]
El trasplante tiene una variedad de aplicaciones, que incluyen:
Diferentes especies y variedades reaccionan de manera diferente al trasplante; para algunos, no es recomendable. En todos los casos, la principal preocupación es evitar el shock del trasplante (el estrés o el daño recibido en el proceso). Las plantas cultivadas en condiciones protegidas suelen necesitar un período de aclimatación , conocido como endurecimiento (ver también resistencia a las heladas ). Además, se debe minimizar la alteración de las raíces . La etapa de crecimiento en la que se realiza el trasplante, las condiciones climáticas durante el trasplante y el tratamiento inmediatamente después del trasplante son otros factores importantes.
Los productores comerciales emplean lo que se llama producción de trasplantes en contenedores y no en contenedores. [2]
Los trasplantes en contenedores o en tapones permiten trasplantar plantas cultivadas por separado con las raíces y el suelo intactos. Por lo general, se cultiva en macetas de turba (una maceta hecha de turba comprimida ), bloques de tierra (bloques de tierra comprimidos), macetas de papel o contenedores de múltiples celdas, como paquetes de plástico (de cuatro a doce celdas) o bandejas de plugs más grandes hechas de plástico o espuma de poliestireno. [3]
Los trasplantes no en contenedores generalmente se cultivan en camas o bancos de tierra de invernadero, al aire libre en el suelo con cubiertas de hileras y semilleros, y en el suelo en campo abierto. [4] [2] Las plantas se arrancan con las raíces desnudas para trasplantarlas, que son menos costosas que los trasplantes en contenedores, pero con menores rendimientos debido a un restablecimiento más deficiente de las plantas. [4]
El material de siembra en contenedores se clasifica según el tipo y tamaño del contenedor utilizado. Se ha utilizado una gran variedad de contenedores, con diversos grados de éxito. Algunos contenedores están diseñados para ser plantados con el árbol, por ejemplo, la maceta de papel alquitranado, la salchicha de turba de Alberta, la bala cuadrada de Walters y los sistemas de macetas de papel, se llenan con medio de enraizamiento y se plantan con el árbol (Tinus y McDonald 1979). [5] También se plantan con el árbol otros contenedores que no están llenos de medio de enraizamiento, pero en los cuales el contenedor es un bloque moldeado de medio de cultivo, como con Polyloam, Tree Start y BR-8 Blocks.
Los diseños de contenedores para cultivar material de siembra han sido muchos y variados. El caldo de abeto blanco en contenedores es ahora la norma. La mayoría de los contenedores tienen forma de tubo; tanto el diámetro como el volumen afectan el crecimiento del abeto blanco (Hocking y Mitchell 1975, Carlson y Endean 1976). [6] [7] El abeto blanco cultivado en un contenedor que tenía una altura:diámetro de 1:1 produjo un peso seco significativamente mayor que aquellos en contenedores con configuraciones de altura:diámetro de 3:1 y 6:1. El peso seco total y la longitud de los brotes aumentaron al aumentar el volumen del contenedor.
Cuanto más grande es la bolsa, menos se despliegan por unidad de área. Sin embargo, la ventaja biológica del tamaño ha sido suficiente para influir en una tendencia pronunciada hacia contenedores más grandes en Columbia Británica (Coates et al. 1994). [8] El número de tapones de poliestireno PSB211 (2 cm de diámetro superior, 11 cm de largo) pedidos en Columbia Británica disminuyó de 14.246.000 en 1981 a cero en 1990, mientras que los pedidos de tapones de poliestireno PSB415 (4 cm de diámetro superior, 15 cm de largo) aumentaron. en el mismo período, de 257 000 a 41 008 000, aunque las existencias grandes son más caras de cultivar, distribuir y plantar que las pequeñas.
Otros contenedores no se plantan con el árbol, por ejemplo, los sistemas de contenedores Styroblock, Superblock, Copperblock y Miniblock, producen plántulas de Styroplug con raíces en un tapón cohesivo de sustrato de cultivo. Las cavidades del tapón varían en volumen según varias combinaciones de diámetro superior y profundidad, de 39 a 3260 ml, pero las más comúnmente utilizadas, al menos en Columbia Británica, están en el rango de 39 ml a 133 ml (Van Eerden y Gates 1990). [9] El tapón BC-CFS Styroblock, desarrollado en 1969/70, se ha convertido en el tipo de material dominante para el abeto de interior en la Columbia Británica (Van Eerden y Gates 1990, Coates et al. 1994). [9] [8] Los tamaños de los tapones se indican mediante una designación de 3 cifras, la primera cifra indica el diámetro superior y las otras 2 cifras la profundidad de la cavidad del tapón, ambas dimensiones aproximadas en centímetros. La demanda de tapones más grandes ha aumentado considerablemente (Cuadro 6.24; Coates et al. 1994). [8] El stock criado en algunos tamaños de enchufes puede variar según la clase de edad. En Columbia Británica, por ejemplo, los enchufes PSB 415 y PSB 313 se elevan como 1+0 o 2+0. Los enchufes PSB 615 rara vez se elevan más que como 2+0.
Inicialmente, la intención era dejar los tapones in situ en los Styroblocks hasta inmediatamente antes de la siembra. Pero esto generó problemas logísticos y redujo la eficiencia de las operaciones de plantación. Parece que no se han realizado estudios para comparar el rendimiento del material extraído y envasado con el in situ , pero el material envasado ha tenido un buen rendimiento y no ha dado indicios de deterioro.
Como lo defienden Coates et al. (1994), [8] el material de plantación descongelado y llevado al campo debería mantenerse óptimamente fresco entre 1 °C y 2 °C con humedades relativas superiores al 90% (Ronco 1972a). [10] Durante unos días, se pueden tolerar temperaturas de almacenamiento de alrededor de 4,5 °C y humedades de alrededor del 50%. Binder y Fielder (1988) [11] recomendaron que las plántulas en cajas recuperadas del almacenamiento en frío no deberían exponerse a temperaturas superiores a 10 °C. Los camiones frigoríficos comúnmente utilizados para el transporte y el almacenamiento in situ normalmente mantienen las plántulas entre 2 °C y 4 °C (Mitchell et al. 1980). [12] Ronco (1972a, b) [10] [13] advirtió contra el uso de hielo seco (dióxido de carbono sólido) para enfriar las plántulas; Afirmó que la respiración y el transporte de agua en las plántulas se ven alterados por altas concentraciones de dióxido de carbono gaseoso.
El material de plantación de coníferas a menudo se almacena congelado, principalmente a -2 °C, durante períodos prolongados y luego se almacena en un lugar fresco (+2 °C) para descongelar el tapón de raíz antes de trasplantarlo. La descongelación es necesaria si las plántulas congeladas no se pueden separar unas de otras y algunos lo han recomendado para evitar una posible pérdida de contacto entre el tapón y el suelo con la contracción del tapón al derretirse el hielo en el tapón. La actividad fisiológica también es mayor en almacenamiento fresco que congelado, pero las plántulas de abeto de interior y abeto de Engelmann que se plantaron mientras aún estaban congeladas tuvieron sólo efectos fisiológicos breves y transitorios, incluido el potencial hídrico del xilema (Camm et al. 1995, Silem y Guy 1998). ). [14] [15] Después de 1 temporada de crecimiento, los parámetros de crecimiento no difirieron entre las plántulas plantadas congeladas y las plantadas descongeladas.
Los estudios sobre prácticas de almacenamiento y plantación generalmente se han centrado en los efectos de la duración del almacenamiento congelado y los efectos del posterior almacenamiento en frío (p. ej., Ritchie et al. 1985, Chomba et al. 1993, Harper y Camm 1993). [16] [17] [18] Las revisiones de las técnicas de almacenamiento en frío han prestado poca atención al proceso de descongelación (Camm et al. 1994), [19] o simplemente han observado que es poco probable que la velocidad de descongelación cause daños ( McKay 1997 ). [20]
Kooistra y Bakker (2002) [21] observaron varias líneas de evidencia que sugieren que el almacenamiento en frío puede tener efectos negativos sobre la salud de las plántulas. La tasa de respiración es más rápida durante el almacenamiento en frío que en el almacenamiento en congelación, por lo que las reservas de carbohidratos se agotan más rápidamente. Ciertamente, en ausencia de luz durante el almacenamiento en frío, y en un grado indeterminado si las plántulas se exponen a la luz (inusual), las reservas de carbohidratos se agotan (Wang y Zwiacek 1999). [22] Además, Silem y Guy (1998), [15] por ejemplo, encontraron que las plántulas de abeto en interiores tenían reservas totales de carbohidratos significativamente menores si se almacenaban durante 2 semanas a 2 °C que si se descongelaban rápidamente durante 24 horas a 15 °C. . Las plántulas pueden perder rápidamente su resistencia al frío en el almacenamiento en frío debido a una mayor respiración y consumo de azúcares intracelulares que funcionan como crioprotectores (Ogren 1997). [23] Además, el agotamiento de las reservas de carbohidratos perjudica la capacidad de las plántulas para generar crecimiento de raíces. Finalmente, los mohos durante el almacenamiento son mucho más problemáticos durante el almacenamiento en frío que en el congelado.
Por lo tanto , Kooistra y Bakker (2002) [21] probaron la hipótesis de que dicha descongelación es innecesaria. Se plantaron plántulas de 3 especies, incluido el abeto interior, con tapones de raíces congelados (plántulas congeladas) y con tapones de raíces descongelados (plántulas descongeladas). Los tapones de raíces descongelados se calentaron a la temperatura del suelo en aproximadamente 20 minutos; Los tapones de raíces congelados tardaron aproximadamente 2 horas, y el hielo del tapón tuvo que derretirse antes de que la temperatura pudiera subir por encima de cero. El tamaño del tapón de raíz influyó en el tiempo de descongelación. Estas plantaciones se realizaron en suelos cálidos según los estándares boreales , y las plántulas con tapones congelados podrían obtener resultados diferentes si se trasplantan en suelos a temperaturas más típicas de los sitios de plantación en primavera y en elevaciones elevadas. La fluorescencia variable no difirió entre las plántulas descongeladas y congeladas. La brotación no fue más rápida entre las plántulas de abeto interior descongeladas que entre las congeladas. El rendimiento en campo no difirió entre las plántulas descongeladas y congeladas.
