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Proteína transmembrana

Representación esquemática de proteínas transmembrana: 1) una proteína de membrana de paso único ( hélice α ) 2) una proteína de membrana de paso múltiple (hélice α) 3) una hoja β de proteína de membrana de paso único . La membrana está representada en amarillo claro.

Una proteína transmembrana es un tipo de proteína de membrana integral que abarca la totalidad de la membrana celular . Muchas proteínas transmembrana funcionan como puertas de entrada para permitir el transporte de sustancias específicas a través de la membrana. Con frecuencia sufren cambios conformacionales importantes para mover una sustancia a través de la membrana. Suelen ser muy hidrófobos y se agregan y precipitan en agua. Requieren de detergentes o disolventes apolares para su extracción, aunque algunos de ellos ( beta-barriles ) también pueden extraerse mediante agentes desnaturalizantes .

La secuencia peptídica que atraviesa la membrana, o el segmento transmembrana , es en gran medida hidrófoba y se puede visualizar mediante el gráfico de hidropatía . [1] Dependiendo del número de segmentos transmembrana, las proteínas transmembrana se pueden clasificar como proteínas de membrana de paso único o proteínas de membrana de paso múltiple. [2] Algunas otras proteínas integrales de membrana se denominan monotópicas , lo que significa que también están unidas permanentemente a la membrana, pero no la atraviesan. [3]

Tipos

Clasificación por estructura

Hay dos tipos básicos de proteínas transmembrana: [4] barriles alfa-helicoidales y beta . Las proteínas alfa-helicoidales están presentes en las membranas internas de las células bacterianas o en la membrana plasmática de las células eucariotas y, a veces, en la membrana externa bacteriana . [5] Esta es la categoría principal de proteínas transmembrana. En los seres humanos, se estima que el 27% de todas las proteínas son proteínas de membrana de hélice alfa. [6] Las proteínas beta-barril se encuentran hasta ahora sólo en las membranas externas de las bacterias gramnegativas , las paredes celulares de las bacterias grampositivas , las membranas externas de las mitocondrias y los cloroplastos , o pueden secretarse como toxinas formadoras de poros . Todas las proteínas transmembrana del barril beta tienen una topología ascendente y descendente más simple, que puede reflejar su origen evolutivo común y su mecanismo de plegado similar. [ cita necesaria ]

Además de los dominios proteicos, existen elementos transmembrana inusuales formados por péptidos. Un ejemplo típico es la gramicidina A , un péptido que forma una hélice β transmembrana dimérica. [7] Este péptido es secretado por bacterias grampositivas como antibiótico . No se ha informado de una hélice transmembrana de poliprolina-II en proteínas naturales. No obstante, esta estructura se observó experimentalmente en péptidos artificiales diseñados específicamente. [8]

Clasificación por topología

Esta clasificación se refiere a la posición de los extremos N y C de las proteínas en los diferentes lados de la bicapa lipídica . Los tipos I, II, III y IV son moléculas de paso único . Las proteínas transmembrana de tipo I están ancladas a la membrana lipídica con una secuencia de anclaje de parada de transferencia y tienen sus dominios N-terminales dirigidos a la luz del retículo endoplásmico (RE) durante la síntesis (y al espacio extracelular, si las formas maduras se encuentran en las membranas celulares ). . Los tipos II y III están anclados con una secuencia de anclaje de señal, con el tipo II dirigido a la luz del RE con su dominio C-terminal, mientras que el tipo III tiene sus dominios N-terminales dirigidos a la luz del RE. El tipo IV se subdivide en IV-A, con sus dominios N-terminales dirigidos al citosol y IV-B, con un dominio N-terminal dirigido a la luz. [9] Las implicaciones para la división en los cuatro tipos son especialmente manifiestas en el momento de la translocación y la traducción unida al RE, cuando la proteína debe pasar a través de la membrana del RE en una dirección que depende del tipo. [ cita necesaria ]

Las proteínas transmembrana de los grupos I y II tienen topologías finales opuestas. Las proteínas del grupo I tienen el extremo N en el lado opuesto y el extremo C en el lado citosólico. Las proteínas del grupo II tienen el extremo C en el lado opuesto y el extremo N en el citosol. Sin embargo, la topología final no es el único criterio para definir los grupos de proteínas transmembrana, sino que en la clasificación se considera la ubicación de los determinantes topógenos y el mecanismo de ensamblaje [10].

estructura 3D

Aumento del número de estructuras 3D de proteínas de membrana conocidas

Las estructuras de las proteínas de membrana se pueden determinar mediante cristalografía de rayos X , microscopía electrónica o espectroscopia de RMN . [11] Las estructuras terciarias más comunes de estas proteínas son el haz de hélice transmembrana y el barril beta . La porción de las proteínas de membrana que están unidas a la bicapa lipídica (ver capa lipídica anular ) consiste principalmente en aminoácidos hidrofóbicos. [12]

Proteínas de membrana que tienen superficies hidrofóbicas, son relativamente flexibles y se expresan en niveles relativamente bajos. Esto crea dificultades para obtener suficiente proteína y luego hacer crecer cristales. Por lo tanto, a pesar de la importante importancia funcional de las proteínas de membrana, determinar las estructuras de resolución atómica para estas proteínas es más difícil que las proteínas globulares. [13] En enero de 2013, menos del 0,1% de las estructuras proteicas determinadas eran proteínas de membrana a pesar de representar entre el 20 y el 30% del proteoma total. [14] Debido a esta dificultad y a la importancia de esta clase de proteínas, se han desarrollado métodos de predicción de la estructura de las proteínas basados ​​en gráficos de hidropatía, la regla interna positiva y otros métodos. [15] [16] [17]

Estabilidad termodinámica y plegado.

Estabilidad de las proteínas transmembrana alfa-helicoidales.

Las proteínas transmembrana de hélice alfa (helicoidal α) son inusualmente estables a juzgar por los estudios de desnaturalización térmica , porque no se despliegan completamente dentro de las membranas (el despliegue completo requeriría romper demasiados enlaces H de hélice α en los medios no polares). Por otro lado, estas proteínas se pliegan mal fácilmente , debido a la agregación no nativa en las membranas, la transición a estados de glóbulos fundidos , la formación de enlaces disulfuro no nativos o el despliegue de regiones periféricas y bucles no regulares que son localmente menos estables. [ cita necesaria ]

También es importante definir adecuadamente el estado desplegado . El estado desplegado de las proteínas de membrana en las micelas de detergente es diferente al de los experimentos de desnaturalización térmica . [ cita necesaria ] Este estado representa una combinación de hélices α hidrofóbicas plegadas y segmentos parcialmente desplegados cubiertos por el detergente . Por ejemplo, la bacteriorrodopsina "desplegada" en las micelas de SDS tiene cuatro hélices α transmembrana plegadas, mientras que el resto de la proteína está situada en la interfaz micela-agua y puede adoptar diferentes tipos de estructuras anfifílicas no nativas . Las diferencias de energía libre entre los estados nativo y desnaturalizado con detergente son similares a las estabilidades de las proteínas solubles en agua (< 10 kcal/mol). [ cita necesaria ]

Plegamiento de proteínas transmembrana α-helicoidales.

El replegamiento de proteínas transmembrana de hélice α in vitro es técnicamente difícil. Hay relativamente pocos ejemplos de experimentos de replegamiento exitosos, como ocurre con la bacteriorrodopsina . In vivo , todas estas proteínas normalmente se pliegan de forma cotraduccional dentro del gran translocón transmembrana . El canal translocón proporciona un entorno muy heterogéneo para las hélices α transmembrana nacientes. Una hélice α anfifílica relativamente polar puede adoptar una orientación transmembrana en el translocón (aunque estaría en la superficie de la membrana o desplegada in vitro ), porque sus residuos polares pueden mirar hacia el canal central lleno de agua del translocón. Este mecanismo es necesario para la incorporación de hélices α polares en estructuras de proteínas transmembrana. Las hélices anfifílicas permanecen unidas al translocón hasta que la proteína se sintetiza y se pliega por completo. Si la proteína permanece desplegada y unida al translocón durante demasiado tiempo, es degradada por sistemas celulares específicos de "control de calidad". [ cita necesaria ]

Estabilidad y plegamiento de proteínas transmembrana de barril beta.

La estabilidad de las proteínas transmembrana de barril beta (barril β) es similar a la estabilidad de las proteínas solubles en agua, según estudios de desnaturalización química. Algunos de ellos son muy estables incluso en agentes caotrópicos y altas temperaturas. Su plegamiento in vivo se ve facilitado por chaperonas solubles en agua , como la proteína Skp. Se cree que las proteínas de la membrana del barril β provienen de un ancestro incluso con un número diferente de láminas que podrían agregarse o duplicarse durante la evolución. Algunos estudios muestran una enorme conservación de secuencias entre diferentes organismos y también aminoácidos conservados que mantienen la estructura y ayudan con el plegamiento. [18]

estructuras 3D

Transportadores impulsados ​​por absorción de luz.

Transportadores impulsados ​​por oxidorreducción

Transportadores electroquímicos impulsados ​​por potencial.

Transportadores impulsados ​​por hidrólisis de enlaces de PP

Porteadores (uniporteros, simportadores, antiportadores)

Canales alfa-helicoidales, incluidos canales iónicos.

enzimas

Proteínas con anclajes transmembrana de hélice alfa.

Barriles beta compuestos por una única cadena polipeptídica.

Nota: n y S son, respectivamente, el número de cadenas beta y el "número de corte" [20] del barril beta.

Barriles beta compuestos por varias cadenas polipeptídicas.

Ver también

Referencias

  1. ^ Mansión, Josué; Feldblum, Esther S.; Arkin, Isaías T. (2012). "Polaridad ambiental en proteínas mapeadas de forma no invasiva mediante espectroscopia FTIR". La Revista de Letras de Química Física . 3 (7): 939–944. doi :10.1021/jz300150v. PMC  3341589 . PMID  22563521.
  2. ^ Alberts, Bruce; Johnson, Alejandro; Lewis, Julián; Raff, Martín; Roberts, Keith; Walter, Pedro (2002). "Proteínas de membrana". Biología molecular de la célula. 4ta edición . Ciencia de la guirnalda . Consultado el 31 de octubre de 2023 .
  3. ^ Steven R. Goodman (2008). Biología celular médica. Prensa académica. págs.37–. ISBN 978-0-12-370458-0. Consultado el 24 de noviembre de 2010 .
  4. ^ Jin Xiong (2006). Bioinformática esencial. Prensa de la Universidad de Cambridge. págs. 208–. ISBN 978-0-521-84098-9. Consultado el 13 de noviembre de 2010 .
  5. ^ Las proteínas alfa-helicoidales en las membranas externas incluyen Stannin y ciertas lipoproteínas , entre otras.
  6. ^ Almén MS, Nordström KJ, Fredriksson R, Schiöth HB (2009). "Mapeo del proteoma de la membrana humana: la mayoría de las proteínas de la membrana humana se pueden clasificar según su función y origen evolutivo". BMC Biol . 7 : 50. doi : 10.1186/1741-7007-7-50 . PMC 2739160 . PMID  19678920. 
  7. ^ Nicholson, LK; Cruz, TA (1989). "Canal catiónico de gramicidina: una determinación experimental del sentido de la hélice derecha y verificación del enlace de hidrógeno de tipo β". Bioquímica . 28 (24): 9379–9385. doi :10.1021/bi00450a019. PMID  2482072.
  8. ^ Kubyshkin, Vladimir; Grage, Stephan L.; Ulrich, Anne S.; Budisa, Nediljko (2019). "El espesor de la bicapa determina la alineación de las hélices de poliprolina modelo en las membranas lipídicas". Química Física Física Química . 21 (40): 22396–22408. Código Bib : 2019PCCP...2122396K. doi : 10.1039/c9cp02996f . PMID  31577299.
  9. ^ Harvey Lodish, etc.; Biología celular molecular , sexta edición, p.546
  10. ^ Goder, Veit; Spiess, Martin (31 de agosto de 2001). "Topogénesis de proteínas de membrana: determinantes y dinámica". Cartas FEBS . 504 (3): 87–93. doi :10.1016/S0014-5793(01)02712-0. PMID  11532438.
  11. ^ Cruz, Timoteo A.; Sharma, Mukesh; Yi, Myunggi; Zhou, Huan-Xiang (2011). "Influencia de los entornos solubilizantes en las estructuras de proteínas de membrana". Tendencias en Ciencias Bioquímicas . 36 (2): 117-125. doi :10.1016/j.tibs.2010.07.005. PMC 3161620 . PMID  20724162. 
  12. ^ Blanco, Esteban. "Principio general de estabilidad y plegamiento de proteínas de membrana". Página de inicio del laboratorio Stephen White. 10 de noviembre de 2009. web. [ se necesita verificación ]
  13. ^ Carpintero, Elisabeth P; Beis, Konstantinos; Cameron, Alejandro D; Iwata, entonces (octubre de 2008). "Superar los desafíos de la cristalografía de proteínas de membrana". Opinión actual en biología estructural . 18 (5): 581–586. doi :10.1016/j.sbi.2008.07.001. PMC 2580798 . PMID  18674618. 
  14. ^ "Proteínas de membrana de estructura 3D conocida". Archivado desde el original el 25 de diciembre de 2013 . Consultado el 1 de mayo de 2016 .
  15. ^ Elofsson, Arne; Heijne, Gunnar von (7 de junio de 2007). "Estructura de la proteína de membrana: predicción versus realidad". Revista Anual de Bioquímica . 76 (1): 125-140. CiteSeerX 10.1.1.332.4023 . doi : 10.1146/annurev.biochem.76.052705.163539. PMID  17579561. 
  16. ^ Chen, perro Peter; Rost, Burkhard (2002). "Estado del arte en predicción de proteínas de membrana". Bioinformática Aplicada . 1 (1): 21–35. CiteSeerX 10.1.1.134.7424 . PMID  15130854. 
  17. ^ Hopf, Thomas A.; Colwell, Lucy J.; Sheridan, Robert; Rost, Burkhard; Lijadora, Chris; Marks, Debora S. (junio de 2012). "Estructuras tridimensionales de proteínas de membrana a partir de secuenciación genómica". Celúla . 149 (7): 1607-1621. doi : 10.1016/j.cell.2012.04.012 . PMC 3641781 . PMID  22579045. 
  18. ^ Michalik, Marcin; Orwick-Rydmark, Marcella; Habeck, Michael; Alva, Vikram; Arnoldo, Thomas; Linke, Dirk; Permyakov, Eugene A. (3 de agosto de 2017). "Un motivo de glicina-tirosina conservado evolutivamente forma un núcleo plegable en las proteínas de la membrana externa". MÁS UNO . 12 (8): e0182016. Código Bib : 2017PLoSO..1282016M. doi : 10.1371/journal.pone.0182016 . PMC 5542473 . PMID  28771529. 
  19. ^ Bracey MH, Hanson MA, Masuda KR, Stevens RC, Cravatt BF (noviembre de 2002). "Adaptaciones estructurales en una enzima de membrana que finaliza la señalización endocannabinoide". Ciencia . 298 (5599): 1793–6. Código bibliográfico : 2002 Ciencia... 298.1793B. doi : 10.1126/ciencia.1076535. PMID  12459591. S2CID  22656813.
  20. ^ Murzin AG, Lesk AM, Chothia C (marzo de 1994). "Principios que determinan la estructura de los barriles de láminas beta en proteínas. I. Un análisis teórico". J. Mol. Biol . 236 (5): 1369–81. doi :10.1016/0022-2836(94)90064-7. PMID  8126726.