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Separarse

La separasa , también conocida como separina , es una cisteína proteasa responsable de desencadenar la anafase hidrolizando la cohesina , que es la proteína responsable de unir las cromátidas hermanas durante la etapa inicial de la anafase . [5] En humanos, la separina está codificada por el gen ESPL1 . [6]

Historia

En S. cerevisiae , la separasa está codificada por el gen esp1 . Esp1 fue descubierto por Kim Nasmyth y sus compañeros de trabajo en 1998. [7] [8] En 2021, científicos de la Universidad de Ginebra determinaron las estructuras de la separasa humana en complejo con securina o CDK1-ciclina B1-CKS1 utilizando crio-EM. [9]

Función

Complejo de cohesina de levadura
El complejo de cohesina de levadura consta de proteínas especializadas, incluida Scc1. [10]

La cohesión estable entre las cromátidas hermanas antes de la anafase y su separación oportuna durante la anafase son fundamentales para la división celular y la herencia cromosómica. En los vertebrados, la cohesión de las cromátidas hermanas se libera en dos pasos mediante distintos mecanismos. El primer paso implica la fosforilación de STAG1 o STAG2 en el complejo de cohesina. El segundo paso implica la escisión de la subunidad de cohesina SCC1 ( RAD21 ) por la separasa, lo que inicia la separación final de las cromátidas hermanas. [11]

En S. cerevisiae , Esp1 está codificado por ESP1 y está regulado por la securina Pds1. Las dos cromátidas hermanas están inicialmente unidas por el complejo de cohesina hasta el comienzo de la anafase, momento en el que el huso mitótico separa las dos cromátidas hermanas, dejando a cada una de las dos células hijas con un número equivalente de cromátidas hermanas. Las proteínas que unen las dos cromátidas hermanas, impidiendo cualquier separación prematura de las cromátidas hermanas, son parte de la familia de proteínas cohesinas . Una de estas proteínas cohesina cruciales para la cohesión de las cromátidas hermanas es Scc1. Esp1 es una proteína separasa que escinde la subunidad de cohesina Scc1 (RAD21), lo que permite que las cromátidas hermanas se separen al inicio de la anafase durante la mitosis . [8]

Regulación

Diagrama de red con bucles de retroalimentación para generar una activación de anafase similar a un interruptor. [12]

Cuando la célula no se está dividiendo, se evita que la separasa escinda la cohesina mediante su asociación con securina o mediante la fosforilación de un residuo de serina específico en la separasa por el complejo ciclina-CDK . La fosforilación de separasa conduce a una asociación estable con CDK1-ciclina B1. La unión de securina o CDK1-ciclina B es mutuamente excluyente. En ambos complejos, la separasa es inhibida por motivos de pseudosustrato que bloquean la unión del sustrato en el sitio catalítico y en los sitios de acoplamiento cercanos. Sin embargo, mientras que la securina contiene sus propios motivos de pseudosustrato para ocluir la unión del sustrato, el complejo CDK1-ciclina B inhibe la separasa al endurecer los motivos de pseudosustrato de los bucles flexibles de la propia separasa, lo que lleva a una autoinhibición de la actividad proteolítica de la separasa. [9] La regulación a través de estos distintos socios vinculantes proporciona dos capas de regulación negativa para evitar una escisión inapropiada de la cohesina. Tenga en cuenta que la separasa no puede funcionar sin formar inicialmente el complejo securina-separasa en la mayoría de los organismos. Esto se debe a que la securina ayuda a plegar adecuadamente la separasa en la conformación funcional. Sin embargo, la levadura no parece requerir securina para formar separasa funcional porque la anafase ocurre en la levadura incluso con una deleción de securina. [10]

En la señal de anafase, la securina se ubiquitina e hidroliza, liberando separasa para su desfosforilación mediante el complejo APC -Cdc20. Luego, la separasa activa puede escindir Scc1 para liberar las cromátidas hermanas.

La separasa inicia la activación de Cdc14 en la anafase temprana [13] y se ha descubierto que Cdc14 desfosforila la securina, aumentando así su eficiencia como sustrato para la degradación. La presencia de este circuito de retroalimentación positiva ofrece un mecanismo potencial para darle a la anafase un comportamiento más parecido a un interruptor. [12]

diagrama de Red
Figura 4: Diagrama de red potencial que involucra securina y separasa para generar una activación de anafase similar a un interruptor

Referencias

  1. ^ abc GRCh38: Ensembl lanzamiento 89: ENSG00000135476 - Ensembl , mayo de 2017
  2. ^ abc GRCm38: Ensembl lanzamiento 89: ENSMUSG00000058290 - Ensembl , mayo de 2017
  3. ^ "Referencia humana de PubMed:". Centro Nacional de Información Biotecnológica, Biblioteca Nacional de Medicina de EE. UU .
  4. ^ "Referencia de PubMed del ratón:". Centro Nacional de Información Biotecnológica, Biblioteca Nacional de Medicina de EE. UU .
  5. ^ "ESPL1 - Separina - Homo sapiens (humano) - Gen y proteína ESPL1". Uniprot.org . 05/10/2010 . Consultado el 14 de mayo de 2016 .
  6. ^ Nagase T, Seki N, Ishikawa K, Tanaka A, Nomura N (febrero de 1996). "Predicción de las secuencias codificantes de genes humanos no identificados. V. Las secuencias codificantes de 40 nuevos genes (KIAA0161-KIAA0200) deducidas mediante análisis de clones de ADNc de la línea celular humana KG-1". Investigación del ADN . 3 (1): 17–24. doi : 10.1093/dnares/3.1.17 . PMID  8724849.
  7. ^ Ciosk R, Zachariae W, Michaelis C, Shevchenko A, Mann M, Nasmyth K (junio de 1998). "Un complejo ESP1 / PDS1 regula la pérdida de cohesión de las cromátidas hermanas en la transición de metafase a anafase en la levadura". Celúla . 93 (6): 1067-1076. doi : 10.1016/S0092-8674(00)81211-8 . PMID  9635435. S2CID  9951929.
  8. ^ ab Uhlmann F , Lottspeich F, Nasmyth K (julio de 1999). "La separación de cromátidas hermanas al inicio de la anafase se promueve mediante la escisión de la subunidad de cohesina Scc1". Naturaleza . 400 (6739): 37–42. Código Bib :1999Natur.400...37U. doi :10.1038/21831. PMID  10403247. S2CID  4354549.
  9. ^ ab Yu J, Raia P, Gante CM, Raisch T, Sadian Y, Cavadini S, et al. (agosto de 2021). "Base estructural de la regulación de la separasa humana por securina y CDK1-ciclina B1". Naturaleza . 596 (7870): 138-142. Código Bib :2021Natur.596..138Y. doi :10.1038/s41586-021-03764-0. PMC 8482764 . PMID  34290405. S2CID  236174130. 
  10. ^ ab Morgan DO (2007). El ciclo celular: principios de control . Londres: Publicado por New Science Press en asociación con Oxford University Press. ISBN 978-0-87893-508-6.
  11. ^ Sun Y, Kucej M, Fan HY, Yu H, Sun QY, Zou H (abril de 2009). "La separasa se recluta en los cromosomas mitóticos para disolver la cohesión de las cromátidas hermanas de una manera dependiente del ADN". Celúla . 137 (1): 123-132. doi :10.1016/j.cell.2009.01.040. PMC 2673135 . PMID  19345191. 
  12. ^ ab Holt LJ, Krutchinsky AN, Morgan DO (julio de 2008). "La retroalimentación positiva agudiza el cambio de anafase". Naturaleza . 454 (7202): 353–357. Código Bib :2008Natur.454..353H. doi : 10.1038/naturaleza07050. PMC 2636747 . PMID  18552837. 
  13. ^ Stegmeier F, Visintin R, Amon A (enero de 2002). "Separasa, polo quinasa, la proteína cinetocoro Slk19 y Spo12 funcionan en una red que controla la localización de Cdc14 durante la anafase temprana". Celúla . 108 (2): 207–220. doi : 10.1016/S0092-8674(02)00618-9 . PMID  11832211. S2CID  2408261.

Otras lecturas

enlaces externos

Este artículo incorpora texto de la Biblioteca Nacional de Medicina de Estados Unidos , que se encuentra en el dominio público .