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Ficobilisoma

Los ficobilisomas son antenas que recogen luz y transmiten la energía de los fotones recogidos al fotosistema II y al fotosistema I en las cianobacterias y en los cloroplastos de las algas rojas y las glaucófitas . [1] [2] [3] Se perdieron durante la evolución de los cloroplastos de las algas verdes y las plantas . [3]

Estructura general

Los ficobilisomas son complejos proteicos (hasta 600 polipéptidos ) anclados a las membranas tilacoides . Están formados por pilas de proteínas cromoforiladas , las ficobiliproteínas , y sus polipéptidos enlazadores asociados. Cada ficobilisoma consta de un núcleo hecho de aloficocianina , del que se desprenden varias varillas orientadas hacia el exterior hechas de discos apilados de ficocianina y (si está presente) ficoeritrina (s) o ficoeritrocianina . Las propiedades espectrales de las ficobiliproteínas están dictadas principalmente por sus grupos prostéticos , que son tetrapirroles lineales conocidos como ficobilinas, incluyendo ficocianobilina , ficoeritrobilina , ficourobilina y ficobiliviolin. Las propiedades espectrales de una ficobilina dada están influenciadas por su entorno proteico. [4]

Función

Cada ficobiliproteína tiene un máximo específico de absorción y emisión de fluorescencia en el rango visible de la luz. Por lo tanto, su presencia y la disposición particular dentro de los ficobilisomas permiten la absorción y transferencia unidireccional de energía luminosa a la clorofila a del fotosistema II. De esta manera, las células aprovechan las longitudes de onda de luz disponibles (en el rango de 500-650 nm), que son inaccesibles para la clorofila, y utilizan su energía para la fotosíntesis. Esto es particularmente ventajoso en las capas más profundas de la columna de agua , donde la luz con longitudes de onda más largas se transmite menos y, por lo tanto, está menos disponible directamente para la clorofila.

La disposición geométrica de un ficobilisoma es muy elegante, como si fuera una antena, y da como resultado una eficiencia de transferencia de energía del 95 % . [5]

Evolución y diversidad

Existen muchas variaciones en la estructura general de los ficobilisomas. Su forma puede ser hemidiscoidal (en las cianobacterias) o hemielipsoide (en las algas rojas). Las especies que carecen de ficoeritrina tienen al menos dos discos de ficocianina por bastón, lo que es suficiente para una fotosíntesis máxima. [6]

Las ficobiliproteínas muestran poca evolución de secuencia debido a su función altamente restringida (absorción y transferencia de longitudes de onda específicas). [ cita requerida ] En algunas especies de cianobacterias, cuando están presentes tanto la ficocianina como la ficoeritrina, el ficobilisoma puede sufrir una reestructuración significativa como respuesta al color de la luz. Con luz verde, las porciones distales de los bastones están hechas de ficoeritrina de color rojo, que absorbe mejor la luz verde. Con luz roja, esta es reemplazada por ficocianina de color azul, que absorbe mejor la luz roja. Este proceso reversible se conoce como adaptación cromática complementaria. Es el componente del sistema fotosintético de las cianobacterias, como una partícula con la que se unen varias estructuras (es decir, membrana tilacoide, etc.). [ cita requerida ]

Aplicaciones

Los ficobilisomas se pueden utilizar en fluorescencia rápida Archivado 2018-03-18 en Wayback Machine , [7] [8] citometría de flujo , [9] Western blotting y microarrays de proteínas . Algunos ficobilisomas tienen un perfil de absorción y emisión similar a Cy5 , lo que permite que se utilicen en muchas de las mismas aplicaciones. También pueden ser hasta 200 veces más brillantes y con un desplazamiento de Stokes mayor , lo que proporciona una señal más grande por evento de unión. Esta propiedad permite la detección de moléculas objetivo de bajo nivel [9] o eventos raros.

Referencias

  1. ^ Kawakami K, Hamaguchi T, Hirose Y, Kosumi D, Miyata M, Kamiya N, Yonekura K (2022). "Estructuras de núcleo y varilla de un ficobilisoma cianobacteriano termófilo que capta luz". Nature Communications . 13 . doi : 10.1038/s41467-022-30962-9 . PMC  9205905 . N.º de art. 3389.
  2. ^ Chang L, Liu X, Li Y, Liu CC, Yang F, Zhao J, Sui SF (2015). "Organización estructural de un ficobilisoma intacto y su asociación con el fotosistema II". Cell Research . 25 (6): 726–737. doi :10.1038/cr.2015.59. PMC 4456626 . PMID  25998682. 
  3. ^ ab Stadnichuk IN, Kusnetsov VV (2021). "Origen endosimbiótico de los cloroplastos en la evolución de las células vegetales". Revista rusa de fisiología vegetal . 68 (1): 1–16. doi :10.1134/S1021443721010179. S2CID  255012748.
  4. ^ Singh NK, Sonani RR, Rastogi RP, Madamwar D (2015). "Los ficobilisomas: un requisito temprano para la fotosíntesis eficiente en cianobacterias". Revista EXCLI . 14 : 268–89. doi :10.17179/excli2014-723. PMC 4553884 . PMID  26417362. 
  5. ^ Glazer AN (junio de 1985). "Recolección de luz por ficobilisomas". Revisión anual de biofísica y química biofísica . 14 : 47–77. doi :10.1146/annurev.bb.14.060185.000403. PMID  3924069.
  6. ^ Lea-Smith DJ, Bombelli P, Dennis JS, Scott SA, Smith AG , Howe CJ (junio de 2014). "Las cepas deficientes en ficobilisomas de Synechocystis sp. PCC 6803 tienen un tamaño reducido y requieren condiciones limitantes de carbono para exhibir una mayor productividad". Fisiología vegetal . 165 (2): 705–714. doi :10.1104/pp.114.237206. PMC 4044857 . PMID  24760817. 
  7. ^ Zoha SJ, Ramnarain S, Morseman JP, Moss MW, Allnutt FT, Rogers YH, Harvey B (1999). "Colorantes fluorescentes PBXL para detección directa ultrasensible". Revista de fluorescencia . 9 (3): 197–208. doi :10.1023/A:1022503600141. S2CID  12373519.
  8. ^ "Comparación de detección de microplacas entre SureLight®P-3L, otros fluoróforos y detección enzimática" (PDF) . Boletín técnico 3 . Columbia Biosciences. 2010. Archivado desde el original (PDF) el 18 de marzo de 2018.
  9. ^ ab Telford WG, Moss MW, Morseman JP, Allnutt FC (agosto de 2001). "Ficobilisomas estabilizados por cianobacterias como fluorocromos para la detección de antígenos extracelulares mediante citometría de flujo" (PDF) . Journal of Immunological Methods . 254 (1–2): 13–30. doi :10.1016/s0022-1759(01)00367-2. PMID  11406150. Archivado desde el original (PDF) el 2018-03-18 . Consultado el 2014-06-07 .

Lectura adicional

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