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Canal de iones controlado por luz

Los canales iónicos activados por luz son una familia de canales iónicos regulados por radiación electromagnética . Otros mecanismos de activación para canales iónicos incluyen canales iónicos activados por voltaje , canales iónicos activados por ligando , canales iónicos mecanosensibles y canales iónicos activados por temperatura. La mayoría de los canales iónicos activados por luz se han sintetizado en el laboratorio para su estudio, aunque actualmente se conocen dos ejemplos naturales, la canalrodopsina y la canalrodopsina conductora de aniones . [1] [2] Las proteínas fotorreceptoras , que actúan de manera similar a los canales iónicos activados por la luz, generalmente se clasifican como receptores acoplados a proteína G.

Mecanismo

Los canales iónicos activados por luz funcionan de manera similar a otros canales iónicos activados por luz. Estas proteínas transmembrana forman poros a través de bicapas lipídicas para facilitar el paso de iones . Estos iones se mueven de un lado de la membrana a otro bajo la influencia de un gradiente electroquímico . Cuando se expone a un estímulo, se produce un cambio conformacional en la región transmembrana de la proteína para abrir o cerrar el canal iónico. En el caso específico de los canales iónicos activados por luz, las proteínas transmembrana suelen estar acopladas con una molécula más pequeña que actúa como fotointerruptor , mediante el cual los fotones se unen a la molécula interruptora, para luego alterar la conformación de las proteínas, de modo que el poro cambia de de un estado cerrado a un estado abierto, o viceversa, aumentando o disminuyendo así la conductancia iónica. La retina es un buen ejemplo de fotointerruptor molecular y se encuentra en las canalrodopsinas naturales. [3] [4]

Isoformas sintéticas

Una vez identificada y caracterizada la canalrosopsina, se modificó la selectividad iónica del canal para controlar el potencial de membrana mediante control optogenético . Las mutaciones dirigidas del canal cambiaron las cargas que recubren el poro, lo que dio como resultado un poro que excluyó los cationes en favor de los aniones . [5]

Otros tipos de canales iónicos activados, activados por ligando y activados por voltaje , se han sintetizado con un componente activado por luz en un intento de comprender mejor su naturaleza y propiedades. Mediante la adición de una sección con compuerta luminosa, se pueden estudiar en profundidad la cinética y los mecanismos de funcionamiento. Por ejemplo, la adición de un componente activado por luz permite la introducción de muchos ligandos muy similares en el sitio de unión de un canal iónico activado por ligando para ayudar en la determinación del mecanismo.

Dichos canales iónicos se han modificado uniendo un fotointerruptor para conferir fotosensibilidad al canal iónico. Esto se hace mediante la selección cuidadosa de una correa que puede alargarse o acortarse mediante fotoisomerización . Un lado de la atadura está unido a la proteína del canal iónico y el otro extremo de la atadura está unido a un grupo bloqueador, que tiene una alta afinidad de unión por una porción expuesta del poro. Cuando se alarga la correa, permite que la sección de bloqueo se una al poro y evite la corriente iónica. Cuando se acorta la atadura, se rompe esta obstrucción y se abre el poro. Los estudios cinéticos han demostrado que de esta manera se puede lograr un fino control temporal y espacial. [6] [7]

Fotoisomerización del azobenceno entre sus isómeros trans y cis.

El azobenceno es una opción común para la porción funcional de una atadura para canales iónicos activados por luz desarrollados sintéticamente debido a su cambio de longitud bien documentado como isómeros cis o trans , así como a la longitud de onda de excitación necesaria para inducir la fotoisomerización. El azobenceno se convierte en su isómero trans más largo a una longitud de onda de λ=500 nm y a su isómero cis en λ=380 nm. [6]

En 1980, el primer canal iónico adaptado para su estudio con un mecanismo activado por luz fue el receptor nicotínico de acetilcolina . [8] Este receptor era bien conocido en ese momento, por lo que se adaptaba perfectamente a la adaptación y permitió un estudio de la cinética como no se había permitido antes.

La expresión de canales iónicos activados por luz en un tipo de célula específico a través del control del promotor permite la regulación del potencial celular ya sea despolarizando la membrana a 0 mV para la canalrodopsina permeable a cationes o manteniendo el voltaje a –67 mV para la canalrodopsina conductora de aniones. . [9] La despolarización puede conducir una corriente en el rango de 5 fA por canal y ocurre en la escala de tiempo de los potenciales de acción y la exocitosis de neurotransmisores . [10] [4] Tienen una ventaja sobre otros tipos de regulación de canales iónicos porque proporcionan cambios de potencial de membrana reversibles y no invasivos con un fino control temporal y espacial otorgado por inducción a través de estímulos láser . [3] [6] Estimulan de manera confiable potenciales de acción únicos con despolarización rápida y se pueden utilizar in vivo porque no requieren iluminación de alta intensidad para mantener la función, a diferencia de otras técnicas como bombas de protones activadas por luz y sondas fotoactivables . [5] [10]

Ejemplos

Se producen ejemplos de canales iónicos activados por luz tanto en entornos naturales como sintéticos. Éstas incluyen:

De forma natural

Adaptado sintéticamente

Referencias

  1. ^ "Ingeniería de canales iónicos activados por luz" - Bioquímica , 45 (51), 15129-15141, 2006
  2. ^ Govorunova, Elena G.; Sineshchekov, Oleg A.; Janz, Roger; Liu, Xiaoqin; Spudich, John L. (7 de agosto de 2015). "Canales aniónicos activados por luz natural: una familia de rodopsinas microbianas para optogenética avanzada". Ciencia . 349 (6248): 647–650. doi : 10.1126/ciencia.aaa7484. ISSN  0036-8075. PMC  4764398 . PMID  26113638.
  3. ^ abNagel , Georg; Brauner, Martín; Liewald, Jana F.; Adeishvili, Nona; Bamberg, Ernst; Gottschalk, Alejandro (2005). "La activación ligera de la canalrodopsina-2 en células excitables de Caenorhabditis elegans desencadena respuestas conductuales rápidas". Biología actual . 15 (24): 2279–2284. doi : 10.1016/j.cub.2005.11.032 . PMID  16360690.
  4. ^ abNagel , Georg; Szellas, Tanjef; Huhn, Wolfram; Kateriya, Suneel; Adeishvili, Nona; Bertoldo, Pedro; Ollig, Doris; Hegemann, Peter; Bamberg, Ernst (25 de noviembre de 2003). "Canal rodopsina-2, un canal de membrana selectivo para cationes activado directamente por la luz". Procedimientos de la Academia Nacional de Ciencias . 100 (24): 13940–13945. doi : 10.1073/pnas.1936192100 . ISSN  0027-8424. PMC 283525 . PMID  14615590. 
  5. ^ ab Wietek, Jonas; Wiegert, J. Simón; Adeishvili, Nona; Schneider, Franziska; Watanabe, Hiroshi; Tsunoda, Satoshi P.; Vogt, Arend; Elstner, Marco; Oertner, Thomas G. (25 de abril de 2014). "Conversión de canalrodopsina en un canal de cloruro activado por luz". Ciencia . 344 (6182): 409–412. doi : 10.1126/ciencia.1249375 . ISSN  0036-8075. PMID  24674867. S2CID  206554245.
  6. ^ a b C Banghart, Mateo; Borges, Catalina; Isacoff, Aod; Trauner, Dirk; Kramer, Richard H (diciembre de 2004). "Canales iónicos activados por luz para el control remoto de la activación neuronal". Neurociencia de la Naturaleza . 7 (12): 1381-1386. doi :10.1038/nn1356. ISSN  1546-1726. PMC 1447674 . PMID  15558062. 
  7. ^ Jog, Parag V.; Ginebra, Mary S. (1 de septiembre de 2008). "Un canal de iones sintéticos activado por luz". Cartas Orgánicas . 10 (17): 3693–3696. doi :10.1021/ol8013045. ISSN  1523-7060. PMID  18656946.
  8. ^ "Un agonista fotoisomerizable unido covalentemente. Comparación con agonistas unidos reversiblemente en electroplacas electróforas" - The Journal of General Physiology, Vol 75, 207-232
  9. ^ Berndt, André; Lee, Soo Yeun; Ramakrishnan, Charu; Deisseroth, Karl (25 de abril de 2014). "Transformación guiada por la estructura de canalrodopsina en un canal de cloruro activado por luz". Ciencia . 344 (6182): 420–424. doi : 10.1126/ciencia.1252367. ISSN  0036-8075. PMC 4096039 . PMID  24763591. 
  10. ^ ab Ishizuka, Toru; Kakuda, Masaaki; Araki, Rikita; Yawo, Hiromu (2006). "Evaluación cinética de la fotosensibilidad en neuronas genéticamente modificadas que expresan canales activados por luz de algas verdes". Investigación en neurociencia . 54 (2): 85–94. doi :10.1016/j.neures.2005.10.009. PMID  16298005. S2CID  17576414.
  11. ^ Cosentino, C.; Alberio, L.; Gazzarrini, S.; Áquila, M.; Romano, E.; Cermenati, S.; Zuccolini, P.; Petersen, J.; Beltramé, M.; Etten, JL Van; Christie, JM; Thiel, G.; Moroni, A. (2015). "Ingeniería de un canal de potasio regulado por luz". Ciencia . 348 (6235): 707–710. doi : 10.1126/ciencia.aaa2787. PMID  25954011. S2CID  27853990.
  12. ^ Beck, Sebastián; Yu-Strzelczyk, Jing; Pauls, Dennis; Constantin, Oana M.; Vaya, Christine E.; Ehmann, Nadine; Kittel, Robert J.; Nagel, Georg; Gao, Shiqiang (2018). "Canales iónicos sintéticos activados por luz para activación e inhibición optogenética". Fronteras en Neurociencia . 12 : 643. doi : 10.3389/fnins.2018.00643 . ISSN  1662-453X. PMC 6176052 . PMID  30333716. 
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  14. ^ Anzai, Jun-Ichi; Osa, Tetsuo (1994). "Membranas artificiales fotosensibles a base de derivados de azobenceno y espirobenzopirano". Tetraedro . 50 (14): 4039–4070. doi :10.1016/S0040-4020(01)86704-1.
  15. ^ Folgering, Joost HA; Kuiper, Johanna M.; de Vries, Alex H.; Engberts, enero BFN; Hombre de piscina, Bert (2004). "Activación lumínica mediada por lípidos de un canal mecanosensible de gran conductancia" (PDF) . Langmuir . 20 (17): 6985–6987. doi :10.1021/la048942v. PMID  15301476.