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Fotosistema I

Reacciones de fotosíntesis dependientes de la luz en la membrana tilacoide.
Localización de los genes psa en el genoma del cloroplasto de Arabidopsis thaliana . Los 21 genes codificadores de proteínas implicados en la fotosíntesis se muestran como cuadros verdes.

El fotosistema I ( PSI , o plastocianina-ferredoxina oxidorreductasa ) es uno de los dos fotosistemas en las reacciones fotosintéticas de luz de algas , plantas y cianobacterias . El fotosistema  I [1] es un complejo proteico integral de membrana que utiliza energía luminosa para catalizar la transferencia de electrones a través de la membrana tilacoide desde la plastocianina a la ferredoxina . En última instancia, los electrones transferidos por el Fotosistema I se utilizan para producir el portador de hidrógeno de energía moderada NADPH . [2] La energía fotónica absorbida por el fotosistema I también produce una fuerza motriz de protones que se utiliza para generar ATP . PSI se compone de más de 110 cofactores , significativamente más que el Fotosistema II . [3]

Historia

Este fotosistema se conoce como PSI porque fue descubierto antes del Fotosistema II, aunque experimentos futuros demostraron que el Fotosistema II es en realidad la primera enzima de la cadena de transporte de electrones fotosintética. Algunos aspectos de la PSI se descubrieron en la década de 1950, pero en ese momento aún no se reconocía la importancia de estos descubrimientos. [4] Louis Duysens propuso por primera vez los conceptos de Fotosistemas I y II en 1960 y, ese mismo año, una propuesta de Fay Bendall y Robert Hill reunió descubrimientos anteriores en una teoría coherente de reacciones fotosintéticas en serie. [4] La hipótesis de Hill y Bendall fue confirmada posteriormente en experimentos realizados en 1961 por los grupos Duysens y Witt. [4]

Componentes y acción

Dos subunidades principales de PSI, PsaA y PsaB, son proteínas estrechamente relacionadas implicadas en la unión de los cofactores vitales de transferencia de electrones P 700 , Acc, A 0 , A 1 y F x . PsaA y PsaB son proteínas de membrana integrales de 730 a 750 aminoácidos que contienen 11 segmentos transmembrana . Un grupo de hierro-azufre [4Fe-4S] llamado F x está coordinado por cuatro cisteínas ; PsaA y PsaB proporcionan dos cisteínas cada una. Las dos cisteínas de cada uno son proximales y están ubicadas en un bucle entre el noveno y décimo segmento transmembrana. Parece estar presente un motivo de cremallera de leucina [5] aguas abajo de las cisteínas y podría contribuir a la dimerización de PsaA/PsaB. Los aceptores terminales de electrones FA y F B , también grupos de hierro-azufre [4Fe-4S], están ubicados en una proteína de 9 kDa llamada PsaC que se une al núcleo PsaA/PsaB cerca de F X. [6] [7]

Fotón

La fotoexcitación de las moléculas de pigmento en el complejo de antena induce la transferencia de electrones y energía. [10]

Complejo de antenas

El complejo antena está compuesto por moléculas de clorofila y carotenoides montadas sobre dos proteínas. [11] Estas moléculas de pigmento transmiten la energía de resonancia de los fotones cuando se fotoexcitan. Las moléculas de antena pueden absorber todas las longitudes de onda de luz dentro del espectro visible . [12] El número de estas moléculas de pigmento varía de un organismo a otro. Por ejemplo, la cianobacteria Synechococcus elongatus ( Termosynechococcus elongatus ) tiene alrededor de 100 clorofilas y 20 carotenoides, mientras que los cloroplastos de espinaca tienen alrededor de 200 clorofilas y 50 carotenoides. [12] [3] Ubicadas dentro del complejo de antena de PSI hay moléculas de clorofila llamadas centros de reacción P700 . La energía transmitida por las moléculas antena se dirige al centro de reacción. Puede haber hasta 120 o tan solo 25 moléculas de clorofila por P700. [13]

Centro de reacción P700

El centro de reacción P700 está compuesto de clorofila a modificada que absorbe mejor la luz a una longitud de onda de 700  nm . [14] P700 recibe energía de las moléculas de la antena y utiliza la energía de cada fotón para elevar un electrón a un nivel de energía más alto (P700*). Estos electrones se mueven en pares en un proceso de oxidación/reducción desde P700* a aceptores de electrones, dejando atrás P700 + . El par P700* - P700 + tiene un potencial eléctrico de aproximadamente −1,2 voltios . El centro de reacción está formado por dos moléculas de clorofila y, por tanto, se denomina dímero . [11] Se cree que el dímero está compuesto por una molécula de clorofila a y una molécula de clorofila a ′. Sin embargo, si P700 forma un complejo con otras moléculas antena, ya no puede ser un dímero. [13]

Clorofila modificada A 0 y A 1

Las dos moléculas de clorofila modificadas son los primeros aceptores de electrones en PSI. Están presentes uno por lado PsaA/PsaB, formando dos ramas que los electrones pueden tardar en alcanzar F x . A 0 acepta electrones de P700*, los pasa a A 1 del mismo lado, quien luego pasa el electrón a la quinona del mismo lado. Diferentes especies parecen tener diferentes preferencias por cualquiera de las ramas A/B. [15]

filoquinona

Una filoquinona , a veces llamada vitamina K 1 , [16] es el siguiente aceptor temprano de electrones en PSI. Oxida A 1 para recibir el electrón y a su vez es reoxidado por F x , desde donde el electrón pasa a F b y Fa . [16] [17] La ​​reducción de F x parece ser el paso limitante de la tasa. [15]

Complejo hierro-azufre

En PSI se encuentran tres centros proteicos de reacción hierro-azufre . Etiquetados como F x , Fa y F b , sirven como relés de electrones. [18] Fa y F b están unidos a subunidades proteicas del complejo PSI y F x está unido al complejo PSI. [18] Varios experimentos han demostrado cierta disparidad entre las teorías de la orientación del cofactor hierro-azufre y el orden de operación. [18] En un modelo, F x pasa un electrón a Fa , quien lo pasa a F b para alcanzar la ferredoxina. [15]

Ferredoxina

Ferredoxina (Fd) es una proteína soluble que facilita la reducción de NADP+
a NADPH. [19] Fd se mueve para transportar un electrón a un tilacoide solitario o a una enzima que reduce el NADP.+
. [19] Las membranas tilacoides tienen un sitio de unión para cada función de Fd. [19] La función principal de Fd es transportar un electrón desde el complejo hierro-azufre a la enzima ferredoxina- NADP.+
reductasa
. [19]

Ferredoxina – NADP+reductasa (FNR)

Esta enzima transfiere el electrón de la ferredoxina reducida al NADP.+
para completar la reducción a NADPH. [20] FNR también puede aceptar un electrón de NADPH uniéndose a él. [20]

Plastocianina

La plastocianina es un transportador de electrones que transfiere el electrón del citocromo b6f al cofactor P700 del PSI en su estado ionizado P700 + . [10] [21]

Dominio de la proteína Ycf4

El dominio de la proteína Ycf4 que se encuentra en la membrana tilacoide es vital para el fotosistema I. Esta proteína transmembrana tilacoide ayuda a ensamblar los componentes del fotosistema I. Sin ella, la fotosíntesis sería ineficiente. [22]

Evolución

Los datos moleculares muestran que la PSI probablemente evolucionó a partir de los fotosistemas de las bacterias verdes del azufre . Los fotosistemas de las bacterias verdes del azufre y los de las cianobacterias , algas y plantas superiores no son los mismos, pero existen muchas funciones análogas y estructuras similares. Tres características principales son similares entre los diferentes fotosistemas. [23] Primero, el potencial redox es lo suficientemente negativo como para reducir la ferredoxina. [23] A continuación, los centros de reacción aceptores de electrones incluyen proteínas hierro-azufre. [23] Por último, los centros redox en complejos de ambos fotosistemas se construyen sobre un dímero de subunidad proteica. [23] El fotosistema de las bacterias verdes del azufre incluso contiene los mismos cofactores de la cadena de transporte de electrones en PSI. [23] El número y grado de similitudes entre los dos fotosistemas indica fuertemente que PSI y el fotosistema análogo de las bacterias verdes de azufre evolucionaron a partir de un fotosistema ancestral común.

Ver también

Referencias

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  2. ^ Yamori W, Shikanai T (abril de 2016). "Funciones fisiológicas del transporte cíclico de electrones alrededor del fotosistema I para mantener la fotosíntesis y el crecimiento de las plantas". Revisión anual de biología vegetal . 67 : 81-106. doi : 10.1146/annurev-arplant-043015-112002 . PMID  26927905.
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