stringtranslate.com

Adenilato quinasa

La adenilato quinasa ( EC 2.7.4.3) (también conocida como ADK o mioquinasa ) es una enzima fosfotransferasa que cataliza la interconversión de los diversos adenosín fosfatos (ATP, ADP y AMP). Al monitorear constantemente los niveles de nucleótidos de fosfato dentro de la célula, ADK desempeña un papel importante en la homeostasis de la energía celular .

Imagen PDB 3HPQ que muestra el esqueleto de la enzima ADK en dibujos animados y los residuos clave en forma de barras y etiquetados según su ubicación en E. coli , cristalizados con inhibidor de Ap5A.

Sustrato y productos

La reacción catalizada es:

ATP + AMP ⇔ 2 ADP

La constante de equilibrio varía según la condición, pero es cercana a 1. [1] Por lo tanto, ΔG o para esta reacción es cercana a cero. En el músculo de una variedad de especies de vertebrados e invertebrados, la concentración de ATP suele ser de 7 a 10 veces mayor que la de ADP y, por lo general, mayor de 100 veces mayor que la de AMP . [2] La tasa de fosforilación oxidativa está controlada por la disponibilidad de ADP. Así, la mitocondria intenta mantener altos los niveles de ATP debido a la acción combinada de la adenilato quinasa y los controles de la fosforilación oxidativa .

isoenzimas

Hasta la fecha se han identificado nueve isoformas de la proteína ADK humana . Si bien algunos de ellos están omnipresentes en todo el cuerpo, otros se localizan en tejidos específicos. Por ejemplo, ADK7 y ADK8 sólo se encuentran en el citosol de las células; y ADK7 se encuentra en el músculo esquelético, mientras que ADK8 no. [3] No sólo varían las ubicaciones de las diversas isoformas dentro de la célula, sino que la unión del sustrato a la enzima y la cinética de la transferencia de fosforilo también son diferentes. ADK1, la isoenzima ADK citosólica más abundante, tiene una Km aproximadamente mil veces mayor que la Km de ADK7 y 8, lo que indica una unión mucho más débil de ADK1 a AMP. [4] La localización subcelular de las enzimas ADK se realiza incluyendo una secuencia de dirección en la proteína. [3] Cada isoforma también tiene una preferencia diferente por los NTP. Algunos solo usarán ATP, mientras que otros aceptarán GTP, UTP y CTP como transportador de fosforilo.

Algunas de estas isoformas prefieren por completo otras NTP. Existe una GTP:AMP fosfotransferasa mitocondrial, también específica para la fosforilación de AMP, que sólo puede utilizar GTP o ITP como donante de fosforilo. [5] ADK también se ha identificado en diferentes especies bacterianas y en levaduras. [6] Se sabe que otras dos enzimas están relacionadas con la familia ADK, es decir, la uridina monofosfoquinasa de levadura y la quinasa UMP-CMP del moho limoso. Algunos residuos se conservan en estas isoformas, lo que indica cuán esenciales son para la catálisis. Una de las zonas más conservadas incluye un residuo Arg, cuya modificación inactiva la enzima, junto con un Asp que reside en la hendidura catalítica de la enzima y participa en un puente salino.

Subfamilias

Mecanismo

La transferencia de fosforilo sólo se produce al cerrar la "tapa abierta". Esto provoca una exclusión de las moléculas de agua que acerca los sustratos entre sí, [7] reduciendo la barrera energética para el ataque nucleofílico del α-fosforilo del AMP sobre el grupo γ-fosforilo del ATP, lo que resulta en la formación de ADP por transferencia. del grupo γ-fosforilo a AMP. En la estructura cristalina de la enzima ADK de E. coli con el inhibidor Ap5A, el residuo Arg88 se une al Ap5A en el grupo α-fosfato. Se ha demostrado que la mutación R88G produce una pérdida del 99% de la actividad catalítica de esta enzima, lo que sugiere que este residuo está íntimamente involucrado en la transferencia de fosforilo. [8] Otro residuo altamente conservado es Arg119, que se encuentra en la región de unión a adenosina de la ADK y actúa intercalando la adenina en el sitio activo. Se ha sugerido que la promiscuidad de estas enzimas a la hora de aceptar otros NTP se debe a estas interacciones relativamente intrascendentes de la base en la bolsa de unión de ATP. [9] Una red de residuos conservados positivos (Lys13, Arg123, Arg156 y Arg167 en ADK de E. coli ) estabilizan la acumulación de carga negativa en el grupo fosforilo durante la transferencia. Dos residuos de aspartato distales se unen a la red de arginina, lo que hace que la enzima se pliegue y reduzca su flexibilidad. También se requiere un cofactor de magnesio , esencial para aumentar la electrofilia del fosfato en AMP, aunque este ion magnesio sólo se mantiene en la bolsa activa mediante interacciones electrostáticas y se disocia fácilmente. [9]

Estructura

Residuos de ADK E. coli implicados en la unión del sustrato.

La flexibilidad y la plasticidad permiten que las proteínas se unan a ligandos , formen oligómeros , se agreguen y realicen trabajo mecánico. [10] Los grandes cambios conformacionales en las proteínas juegan un papel importante en la señalización celular. La adenilato quinasa es una proteína transductora de señales; así, el equilibrio entre conformaciones regula la actividad proteica. ADK tiene un estado desplegado localmente que se despobla al vincularse. [11]

Describe el ciclo cinético genérico de la familia de enzimas ADK. El complejo ternario está etiquetado.

Un estudio de 2007 realizado por Whitford et al. muestra las conformaciones de ADK cuando se une con ATP o AMP. [10] El estudio muestra que hay tres conformaciones o estructuras relevantes de ADK: CORE, Open y Closed. En ADK, hay dos pequeños dominios llamados LID y NMP. [12] El ATP se une en el bolsillo formado por los dominios LID y CORE. AMP se une en el bolsillo formado por los dominios NMP y CORE. El estudio de Whitford también informó hallazgos que muestran que regiones localizadas de una proteína se despliegan durante las transiciones conformacionales. Este mecanismo reduce la tensión y mejora la eficiencia catalítica. El despliegue local es el resultado de energías de deformación competitivas en la proteína. [10]

Se ha demostrado que la estabilidad local (termodinámica) de los dominios de unión al sustrato ATP lid y AMP lid es significativamente menor en comparación con el dominio CORE en ADK E. coli . [13] Además, se ha demostrado que los dos subdominios ( tapa ATP y tapa AMP ) pueden plegarse y desplegarse de una "manera no cooperativa". [13] La unión de los sustratos provoca preferencia por conformaciones "cerradas" entre aquellas que son muestreadas por ADK. Se supone que estas conformaciones "cerradas" ayudan con la eliminación de agua del sitio activo para evitar el desperdicio de hidrólisis de ATP, además de ayudar a optimizar la alineación de los sustratos para la transferencia de fosforilo. [14] Además, se ha demostrado que la apoenzima seguirá muestreando las conformaciones "cerradas" de los dominios de la tapa de ATP y de la tapa de AMP en ausencia de sustratos. [7] Al comparar la velocidad de apertura de la enzima (que permite la liberación del producto) y la velocidad de cierre que acompaña a la unión del sustrato, se encontró que el cierre es el proceso más lento.

Función

Monitoreo metabólico

La capacidad de una célula para medir dinámicamente los niveles energéticos le proporciona un método para monitorear los procesos metabólicos. [15] Al monitorear y alterar continuamente los niveles de ATP y otros fosfatos de adenilo (niveles de ADP y AMP), la adenilato quinasa es un regulador importante del gasto de energía a nivel celular. [16] A medida que los niveles de energía cambian bajo diferentes tensiones metabólicas, la adenilato quinasa puede generar AMP; que a su vez actúa como molécula de señalización en otras cascadas de señalización. Este AMP generado puede, por ejemplo, estimular varios receptores dependientes de AMP, como los implicados en las vías glucolíticas, los canales K-ATP y la proteína quinasa activada por AMP 5' ( AMPK ). [15] Los factores comunes que influyen en los niveles de nucleótidos de adenina y, por lo tanto, en la actividad de ADK son el ejercicio, el estrés, los cambios en los niveles hormonales y la dieta. [15] Facilita la decodificación de información celular al catalizar el intercambio de nucleótidos en la "zona de detección" íntima de los sensores metabólicos. [15]

Lanzadera ADK

La adenilato quinasa está presente en los compartimentos mitocondrial y miofibrilar de la célula y produce dos fosforilos de alta energía (β y γ) de ATP disponibles para ser transferidos entre moléculas de nucleótidos de adenina. [15] [16] En esencia, la adenilato quinasa transporta ATP a sitios de alto consumo de energía y elimina el AMP generado en el transcurso de esas reacciones. Estos retransmisiones secuenciales de fosfotransferencia en última instancia dan como resultado la propagación de los grupos fosforilo a lo largo de conjuntos de moléculas de ADK. [15] Este proceso puede considerarse como una brigada de moléculas ADK que produce cambios en el flujo metabólico intracelular local sin cambios globales aparentes en las concentraciones de metabolitos. [15] Este proceso es extremadamente importante para la homeostasis general de la célula. [15]

Relevancia de la enfermedad

Deficiencia de nucleósido difosfato quinasa

La nucleósido difosfato (NDP) quinasa cataliza la síntesis in vivo dependiente de ATP de ribo y desoxirribonucleósido trifosfato. En Escherichia coli mutada que tenía una nucleósido difosfato quinasa alterada , la adenilato quinasa realizaba funciones enzimáticas duales. ADK complementa la deficiencia de nucleósido difosfato quinasa. [17]

AK1 y reflujo coronario post-isquémico

La eliminación de AK1 altera la sincronía entre el fosfato inorgánico y el recambio en los sitios consumidores de ATP y los sitios de síntesis de ATP. Esto reduce la comunicación de señales energéticas en el corazón post-isquémico y precipita un reflujo coronario inadecuado después de la isquemia-reperfusión. [18]

Deficiencia de ADK2

La deficiencia de adenilato quinasa 2 ( AK2 ) en humanos causa defectos hematopoyéticos asociados con sordera neurosensorial . [19] La disgenesia reticular es una forma autosómica recesiva de inmunodeficiencia combinada humana . También se caracteriza por una maduración linfoide alterada y una detención temprana de la diferenciación en el linaje mieloide. La deficiencia de AK2 da como resultado una ausencia o una gran disminución en la expresión de proteínas. AK2 se expresa específicamente en la estría vascular del oído interno , lo que indica por qué las personas con una deficiencia de AK2 tendrán sordera neurosensorial. [19]

Adaptaciones estructurales

La ablación genética de AK1 disminuye la tolerancia al estrés metabólico. La deficiencia de AK1 induce una variación específica del tipo de fibra en grupos de transcripciones en la glucólisis y el metabolismo mitocondrial. [20] Esto apoya el metabolismo energético muscular.

Deficiencia de ADK plastidial en Arabidopsis thaliana

"El crecimiento mejorado y el aminoácido fotosintético elevado se asocian con la deficiencia de adenilato quinasa plastidial en Arabidopsis thaliana ". [21]

Referencias

  1. ^ La base de datos de termodinámica de reacciones catalizadas por enzimas del NIST, http://xpdb.nist.gov/enzyme_thermodynamics/enzyme1.pl Archivado el 9 de noviembre de 2016 en Wayback Machine , Goldberg RN, Tewari YB, Bhat TN (noviembre de 2004). "Termodinámica de reacciones catalizadas por enzimas: una base de datos para bioquímica cuantitativa". Bioinformática . 20 (16): 2874–7. doi : 10.1093/bioinformática/bth314 . PMID  15145806., da constantes de equilibrio, busca adenilato quinasa bajo enzimas
  2. ^ Beis I, Newsholme EA (octubre de 1975). "El contenido de nucleótidos de adenina, fosfágenos y algunos intermediarios glucolíticos en músculos en reposo de vertebrados e invertebrados". La revista bioquímica . 152 (1): 23–32. doi :10.1042/bj1520023. PMC 1172435 . PMID  1212224. 
  3. ^ ab Panayiotou C, Solaroli N, Karlsson A (abril de 2014). "Las numerosas isoformas de las adenilato quinasas humanas". La Revista Internacional de Bioquímica y Biología Celular . 49 : 75–83. doi :10.1016/j.biocel.2014.01.014. PMID  24495878.
  4. ^ Panayiotou C, Solaroli N, Xu Y, Johansson M, Karlsson A (febrero de 2011). "La caracterización de las adenilato quinasas 7 y 8 humanas demuestra diferencias en los parámetros cinéticos y la organización estructural entre la familia de isoenzimas adenilato quinasas" (PDF) . La revista bioquímica . 433 (3): 527–34. doi :10.1042/BJ20101443. PMID  21080915. S2CID  33249169.
  5. ^ Tomasselli AG, Noda LH (enero de 1979). "GTP-AMP fosfotransferasa mitocondrial. 2. Estudios de diálisis cinética y de equilibrio". Revista europea de bioquímica . 93 (2): 263–7. doi : 10.1111/j.1432-1033.1979.tb12819.x . PMID  218813.
  6. ^ Cooper AJ, Friedberg EC (mayo de 1992). "Un supuesto segundo gen codificante de adenilato quinasa de la levadura Saccharomyces cerevisiae". Gen.114 (1): 145–8. doi :10.1016/0378-1119(92)90721-Z. PMID  1587477.
  7. ^ ab Henzler-Wildman KA, Thai V, Lei M, Ott M, Wolf-Watz M, Fenn T, Pozharski E, Wilson MA, Petsko GA, Karplus M, Hübner CG, Kern D (diciembre de 2007). "Movimientos intrínsecos a lo largo de una trayectoria de reacción enzimática". Naturaleza . 450 (7171): 838–44. Código Bib :2007Natur.450..838H. doi : 10.1038/naturaleza06410. PMID  18026086. S2CID  4406037.
  8. ^ Reinstein J, Gilles AM, Rose T, Wittinghofer A, Saint Girons I, Bârzu O, Surewicz WK, Mantsch HH (mayo de 1989). "Papel estructural y catalítico de la arginina 88 en la adenilato quinasa de Escherichia coli como lo demuestra la modificación química y la mutagénesis dirigida al sitio". La Revista de Química Biológica . 264 (14): 8107–12. doi : 10.1016/S0021-9258(18)83156-8 . PMID  2542263.
  9. ^ ab Müller CW, Schulz GE (marzo de 1992). "Estructura del complejo entre la adenilato quinasa de Escherichia coli y el inhibidor Ap5A refinado a una resolución de 1,9 A. Un modelo para un estado de transición catalítico". Revista de biología molecular . 224 (1): 159–77. doi :10.2210/pdb1ake/pdb. PMID  1548697.
  10. ^ abc Whitford PC, Miyashita O, Levy Y, Onuchic JN (marzo de 2007). "Transiciones conformacionales de la adenilato quinasa: conmutación por craqueo". Revista de biología molecular . 366 (5): 1661–71. doi :10.1016/j.jmb.2006.11.085. PMC 2561047 . PMID  17217965. 
  11. ^ Schrank TP, Bolen DW, Hilser VJ (octubre de 2009). "La modulación racional de las fluctuaciones conformacionales en la adenilato quinasa revela un mecanismo de despliegue local para la alosteria y la adaptación funcional en las proteínas". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 106 (40): 16984–9. Código bibliográfico : 2009PNAS..10616984S. doi : 10.1073/pnas.0906510106 . PMC 2761315 . PMID  19805185. 
  12. ^ Daily MD, Phillips GN, Cui Q (julio de 2010). "Muchos movimientos locales cooperan para producir la transición conformacional de la adenilato quinasa". Revista de biología molecular . 400 (3): 618–31. doi :10.1016/j.jmb.2010.05.015. PMC 2902635 . PMID  20471396. 
  13. ^ ab Rundqvist L, Adén J, Sparrman T, Wallgren M, Olsson U, Wolf-Watz M (marzo de 2009). "Plegamiento no cooperativo de subdominios en adenilato quinasa". Bioquímica . 48 (9): 1911–27. doi :10.1021/bi8018042. PMID  19219996.
  14. ^ Olsson U, Wolf-Watz M (noviembre de 2010). "Superposición entre paisajes energéticos funcionales y plegables para el cambio conformacional de la adenilato quinasa". Comunicaciones de la naturaleza . 1 (8): 111. Código bibliográfico : 2010NatCo...1..111O. doi : 10.1038/ncomms1106 . PMID  21081909.
  15. ^ abcdefgh Dzeja P, Terzic A (abril de 2009). "Redes de señalización de adenilato quinasa y AMP: monitorización metabólica, comunicación de señales y detección de energía corporal". Revista Internacional de Ciencias Moleculares . 10 (4): 1729–72. doi : 10.3390/ijms10041729 . PMC 2680645 . PMID  19468337. 
  16. ^ ab Dzeja PP, Chung S, Faustino RS, Behfar A, Terzic A (abril de 2011). "La mejora del desarrollo del eje de señalización metabólica adenilato quinasa-AMPK apoya la diferenciación cardíaca de las células madre". MÁS UNO . 6 (4): e19300. Código Bib : 2011PLoSO...619300D. doi : 10.1371/journal.pone.0019300 . PMC 3083437 . PMID  21556322. 
  17. ^ Lu Q, Inouye M (junio de 1996). "La adenilato quinasa complementa la deficiencia de nucleósido difosfato quinasa en el metabolismo de los nucleótidos". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 93 (12): 5720–5. Código bibliográfico : 1996PNAS...93.5720L. doi : 10.1073/pnas.93.12.5720 . PMC 39127 . PMID  8650159. 
  18. ^ Dzeja PP, Bast P, Pucar D, Wieringa B, Terzic A (octubre de 2007). "La señalización metabólica defectuosa en los corazones desactivados del gen adenilato quinasa AK1 compromete el reflujo coronario postisquémico". La Revista de Química Biológica . 282 (43): 31366–72. doi : 10.1074/jbc.M705268200 . PMC 3232003 . PMID  17704060. 
  19. ^ ab Lagresle-Peyrou C, Six EM, Picard C, Rieux-Laucat F, Michel V, Ditadi A, Demerens-de Chappedelaine C, Morillon E, Valensi F, Simon-Stoos KL, Mullikin JC, Noroski LM, Besse C, Wulffraat NM, Ferster A, Abecasis MM, Calvo F, Petit C, Candotti F, Abel L, Fischer A, Cavazzana-Calvo M (enero de 2009). "La deficiencia de adenilato quinasa 2 humana causa un defecto hematopoyético profundo asociado con sordera neurosensorial". Genética de la Naturaleza . 41 (1): 106–11. doi :10.1038/ng.278. PMC 2612090 . PMID  19043416. 
  20. ^ Janssen E, de Groof A, Wijers M, Fransen J, Dzeja PP, Terzic A, Wieringa B (abril de 2003). "La deficiencia de adenilato quinasa 1 induce adaptaciones moleculares y estructurales para apoyar el metabolismo energético muscular". La Revista de Química Biológica . 278 (15): 12937–45. doi : 10.1074/jbc.M211465200 . hdl : 2066/186091 . PMID  12562761.
  21. ^ Carrari F, Coll-García D, Schauer N, Lytovchenko A, Palacios-Rojas N, Balbo I, Rosso M, Fernie AR (enero de 2005). "La deficiencia de una adenilato quinasa plastidial en Arabidopsis da como resultado una biosíntesis elevada de aminoácidos fotosintéticos y un mayor crecimiento". Fisiología de las plantas . 137 (1): 70–82. doi : 10.1104/pp.104.056143. PMC 548839 . PMID  15618410. 

enlaces externos

Este artículo incorpora texto del dominio público Pfam e InterPro : IPR000850