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Ergocriptina

La ergocriptina es una ergopeptina y uno de los alcaloides de la ergolina . Se aísla del cornezuelo o del caldo de fermentación y sirve como material de partida para la producción de bromocriptina . [1] Existen dos isómeros de la ergocriptina, la α-ergocriptina y la β-ergocriptina . [2] La forma beta difiere de la forma alfa solo en la posición de un único grupo metilo , que es una consecuencia de la biosíntesis en la que el aminoácido proteinogénico leucina es reemplazado por isoleucina . La β-ergocriptina fue identificada por primera vez en 1967 por Albert Hofmann . [3] El cornezuelo de diferentes fuentes tiene diferentes proporciones de los dos isómeros. [4]

Biosíntesis

Las vías biosintéticas de la ergocriptina comienzan con la prenilación del L-triptófano de forma SN1 con pirofosfato de dimetilalilo (DMAPP). El DMAPP se deriva del ácido mevalónico . Esta reacción es catalizada por una enzima preniltransferasa (preniltransferasa 4-dimetilaliltriptófano sintasa) denominada FgaPT2 en Aspergillus fumigatus . [5] [6] Se ha informado de una estructura de rayos X de la preniltransferasa FgaPT2 y el triptófano, y se ha utilizado para proponer un mecanismo de tres pasos: (1) formación del carbocatión alílico ; (2) ataque nucleófilo del triptófano al carbocatión; (3) desprotonación para restaurar la aromaticidad y generar el producto, 4-dimetilaliltriptófano (DMAT). [6] Luego, el DMAT se N-metila en el amino de la cadena principal del triptófano con la enzima EasF, llamada FgaMT en A. fumigatus. La S-adenosilmetionina (SAM) es la fuente de metilo. [7]

El siguiente paso en la biosíntesis de la ergocriptina es la transformación de la 4-dimetilalil abrina en chanoclavina-I. Se ha demostrado que las enzimas EasE y EasC (FgaOx1 y FgaCat en A. fumigatus, respectivamente) son necesarias para generar chanoclavina-I a partir de la 4-DMA abrina. [8] Los experimentos de mutación que alteraban estas enzimas detuvieron de forma independiente la vía en la abrina. Esto indica que es necesaria la cooperación entre EasE y EasC.

La chanocalvina-I se oxida luego a aldehído de chanoclavina-I con la enzima dependiente de NAD+ EasD (FgaDH en A. fumigatus). El aldehído de chanoclavina-I es un punto de ramificación, que conduce a diferentes alcaloides del cornezuelo, según el hongo específico. En C. purpurea, el aldehído de chanoclavina-I se convierte en argoclavina con EasA, conocida como la enzima amarilla vieja o FgaOx3. Este proceso ocurre a través de la tautomerización de ceto-enol para facilitar la rotación sobre un enlace carbono-carbono, seguida de la tautomerización de regreso al aldehído y la condensación con la amina secundaria proximal. [6] [9] La especie de iminio creada por ciclización luego se reduce a la amina terciaria, produciendo agroclavina.

Una enzima monooxigenasa del citocromo P-450 cataliza una oxidación de dos electrones de la agroclavina al alcohol primario correspondiente, la elimoclavina. [10] Luego, la elimoclavina es oxidada por cuatro electrones por una monooxigenasa P450 para dar ácido paspálico. Luego, el ácido paspálico sufre la isomerización del doble enlace carbono-carbono que está en conjugación con el ácido, para dar ácido D-lisérgico.

El ácido lisérgico es un punto de ramificación en la biosíntesis de ergoamidas y ergopeptinas. En el camino hacia la ergocriptina, una ergopeptina, el tripéptido es instalado por una sintetasa de péptidos no ribosomales (NRPS). Se ha demostrado que hay dos enzimas, las sintetasas de péptidos D-lisergílicos (LPS) 1 y 2, que son responsables de la conexión del tripéptido con el ácido lisérgico. [11] No se conoce con exactitud el momento de la oxidación de la valina a un alcohol. Sin embargo, se especula que la oxidación ocurre mientras está unida a la LPS2 de la NRPS. [12] La ergocriptina se encuentra en dos formas, que difieren en el aminoácido utilizado por la NRPS. La forma alfa contiene el aminoácido leucina, mientras que la forma beta utiliza el aminoácido isoleucina. [6]

Véase también

Referencias

  1. ^ Kren V, Cvak L (1999). Cornezuelo: el género Claviceps . Ámsterdam: Harwood Academic Publishers. págs. 399-401. ISBN. 9789057023750.
  2. ^ Yates SG, Plattner RD, Garner GB (1985). "Detección de alcaloides de ergopeptina en festuca alta Ky-31 tóxica e infectada con endófito mediante espectrometría de masas/espectrometría de masas" (PDF) . Journal of Agricultural and Food Chemistry . 33 (4): 719–722. doi :10.1021/jf00064a038.[ enlace muerto permanente ]
  3. ^ Schlientz W, Brunner R, Rüegger A, Berde B, Stürmer E, Hofman A (diciembre de 1967). "Beta-ergocriptina, un nuevo alcaloide del grupo de las ergotoxinas". Experiencia . 23 (12): 991–992. doi :10.1007/BF02136400. PMID  4965668. S2CID  2328419.
  4. ^ Schlientz W, Brunner R, Ruegger A, Berde B, Stuermer E, Hofmann A (1968). "Alcaloides del cornezuelo de centeno. LXVII. β-Ergocriptina, un nuevo alcaloide de la serie de las ergotoxinas". Pharmaceutica Acta Helvetiae . 43 (8): 497–509.
  5. ^ Lee SL, Floss HG, Heinstein P (noviembre de 1976). "Purificación y propiedades de la dimetilalilpirofosfato: triptopharm dimetilalil transferasa, la primera enzima de la biosíntesis de alcaloides del cornezuelo en Claviceps. sp. SD 58". Archivos de bioquímica y biofísica . 177 (1): 84–94. doi :10.1016/0003-9861(76)90418-5. PMID  999297.
  6. ^ abcd Gerhards N, Neubauer L, Tudzynski P, Li SM (diciembre de 2014). "Vías biosintéticas de los alcaloides del cornezuelo". Toxins . 6 (12): 3281–3295. doi : 10.3390/toxins6123281 . PMC 4280535 . PMID  25513893. 
  7. ^ Rigbers O, Li SM (octubre de 2008). "Biosíntesis de alcaloides del cornezuelo en Aspergillus fumigatus. Sobreproducción y caracterización bioquímica de una N-metiltransferasa de 4-dimetilaliltriptófano". The Journal of Biological Chemistry . 283 (40): 26859–26868. doi : 10.1074/jbc.M804979200 . PMID  18678866.
  8. ^ Goetz KE, Coyle CM, Cheng JZ, O'Connor SE, Panaccione DG (junio de 2011). "La catalasa codificada por el grupo de cornezuelo es necesaria para la síntesis de chanoclavina-I en Aspergillus fumigatus". Genética actual . 57 (3): 201–211. doi :10.1007/s00294-011-0336-4. PMID  21409592. S2CID  3031547.
  9. ^ Coyle CM, Cheng JZ, O'Connor SE, Panaccione DG (junio de 2010). "Un antiguo gen enzimático amarillo controla el punto de ramificación entre las vías de los alcaloides del cornezuelo de centeno de Aspergillus fumigatus y Claviceps purpurea". Applied and Environmental Microbiology . 76 (12): 3898–3903. Bibcode :2010ApEnM..76.3898C. doi :10.1128/AEM.02914-09. PMC 2893504 . PMID  20435769. 
  10. ^ Haarmann T, Machado C, Lübbe Y, Correia T, Schardl CL, Panaccione DG, Tudzynski P (junio de 2005). "El grupo de genes de alcaloides del cornezuelo en Claviceps purpurea: extensión de la secuencia del grupo y evolución intraespecie". Fitoquímica . 66 (11): 1312–1320. Bibcode :2005PChem..66.1312H. doi :10.1016/j.phytochem.2005.04.011. PMID  15904941.
  11. ^ Walzel B, Riederer B, Keller U (marzo de 1997). "Mecanismo de síntesis de ciclopéptidos alcaloides en el hongo del cornezuelo Claviceps purpurea". Química y biología . 4 (3): 223–230. doi : 10.1016/s1074-5521(97)90292-1 . PMID  9115414.
  12. ^ Keller U (1995). Genética y bioquímica de la producción de antibióticos . Boston: Butterworth-Heinemann.