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Chlamydomonas reinhardtii

Chlamydomonas reinhardtii es un alga verde unicelular de unos 10 micrómetros de diámetro que nada con dos flagelos . Tiene una pared celular formada por glicoproteínas ricas en hidroxiprolina , un gran cloroplasto en forma de copa, un gran pirenoide y un aparato ocular que detecta la luz.

Las especies de Chlamydomonas están ampliamente distribuidas en todo el mundo en el suelo y el agua dulce, de las cuales Chlamydomonas reinhardtii es una de las más comunes y extendidas. [1] C. reinhardtii es un organismo modelo biológico especialmente bien estudiado, en parte debido a su facilidad de cultivo y la capacidad de manipular su genética. Cuando se ilumina, C. reinhardtii puede crecer fotoautotróficamente, pero también puede crecer en la oscuridad si se le suministra carbono orgánico. Comercialmente, C. reinhardtii es de interés para producir biofármacos y biocombustibles, además de ser una valiosa herramienta de investigación para producir hidrógeno .

Historia

La cepa de laboratorio de tipo salvaje C. reinhardtii c137 (mt+) se origina a partir de un aislado recolectado cerca de Amherst, Massachusetts , en 1945 por Gilbert M. Smith. [2] [3]

El nombre de la especie se ha escrito de varias maneras diferentes debido a las diferentes transliteraciones del nombre del ruso: reinhardi , reinhardii y reinhardtii se refieren a la misma especie, C. reinhardtii Dangeard. [4]

Descripción

Las células de Chlamydomonas reinhardtii son mayoritariamente esféricas, pero pueden ser elipsoidales, ovoides, obovoides o asimétricas. Tienen una longitud de entre 10 y 22 μm y un ancho de entre 8 y 22 μm. La pared celular es delgada y carece de papila. Los flagelos tienen una longitud de entre 1,5 y 2 veces la del cuerpo celular. Las células contienen un único cloroplasto en forma de copa que recubre la parte inferior de la célula, con un único pirenoide basal. [1]

Mancha en el ojo

C. reinhardtii tiene un aparato de ocelo similar al de los dinoflagelados . [5] El ocelo se encuentra cerca del ecuador celular. Está compuesto por una capa de gránulos ricos en carotenoides en el cloroplasto que actúan como un reflector de luz. [6] La función principal del ocelo es la fototaxis , que consiste en el movimiento (con los flagelos ) relacionado con un estímulo luminoso. [7] La ​​fototaxis es crucial para el alga y permite la localización del entorno con condiciones de luz óptimas para la fotosíntesis. [8] La fototaxis puede ser positiva o negativa dependiendo de la intensidad de la luz. [5] La vía fototáctica consta de cuatro pasos que conducen a un cambio en el equilibrio de batido entre los dos flagelos (el flagelo cis que es el más cercano al ocelo, y el flagelo trans que es el más alejado del ocelo). [7]

Organismo modelo

Sección transversal de una célula de Chlamydomonas reinhardtii

Chlamydomonas se utiliza como organismo modelo para la investigación de cuestiones fundamentales en biología celular y molecular como:

Existen muchos mutantes conocidos de C. reinhardtii . Estos mutantes son herramientas útiles para estudiar una variedad de procesos biológicos, incluyendo la motilidad flagelar, la fotosíntesis y la síntesis de proteínas . Dado que las especies de Chlamydomonas normalmente son haploides, los efectos de las mutaciones se observan inmediatamente sin necesidad de más cruces.

En 2007, se publicó la secuencia completa del genoma nuclear de C. reinhardtii . [9]

La canalrodopsina -1 y la canalrodopsina -2, proteínas que funcionan como canales de cationes activados por luz , se aislaron originalmente de C. reinhardtii . [10] [11] Estas proteínas y otras similares se utilizan cada vez más en el campo de la optogenética . [12]

Importancia mitocondrial

El genoma de C. reinhardtii es importante para el estudio mitocondrial, ya que es una especie en la que los genes de 6 de las 13 proteínas codificadas para las mitocondrias se encuentran en el núcleo de la célula, dejando 7 en las mitocondrias. [13] En especies fuera de Chlorophyceae, estos genes están presentes solo en las mitocondrias y no pueden expresarse de forma alotópica. Esto es importante para la prueba y el desarrollo de terapias para enfermedades mitocondriales genéticas.

Reproducción

Las células vegetativas de las especies reinhardtii son haploides con 17 cromosomas pequeños . Bajo la privación de nitrógeno , las células vegetativas se diferencian en gametos haploides. [14] Hay dos tipos de apareamiento , idénticos en apariencia, por lo tanto isógamos , y conocidos como mt(+) y mt(-) , que pueden fusionarse para formar un cigoto diploide . El cigoto no está flagelado y sirve como una forma latente de la especie en el suelo. A la luz, el cigoto experimenta meiosis y libera cuatro células haploides flageladas que reanudan el ciclo de vida vegetativo.

En condiciones ideales de crecimiento, las células pueden experimentar a veces dos o tres rondas de mitosis antes de que las células hijas sean liberadas de la pared celular vieja al medio. Por lo tanto, un solo paso de crecimiento puede dar como resultado 4 u 8 células hijas por célula madre.

El ciclo celular de esta alga verde unicelular puede sincronizarse alternando períodos de luz y oscuridad. La fase de crecimiento depende de la luz, mientras que, a partir de un punto designado como punto de transición o de compromiso, los procesos son independientes de la luz. [15]

Genética

El atractivo de las algas como organismo modelo ha aumentado recientemente con la liberación de varios recursos genómicos al dominio público. El borrador Chlre3 de la secuencia del genoma nuclear de Chlamydomonas preparado por el Joint Genome Institute del Departamento de Energía de los EE. UU. comprende 1557 estructuras que suman 120 Mb. Aproximadamente la mitad del genoma está contenido en 24 estructuras, todas de al menos 1,6 Mb de longitud. El ensamblaje actual del genoma nuclear está disponible en línea. [16]

El genoma mitocondrial de ~15,8 Kb (número de acceso a la base de datos: NC_001638) está disponible en línea en la base de datos NCBI. [17] El genoma completo del cloroplasto de ~203,8 Kb (número de acceso a la base de datos: NC_005353) está disponible en línea. [18] [19]

Además de los datos de secuencia genómica, existe una gran cantidad de datos de secuencias de expresión disponibles como bibliotecas de ADNc y etiquetas de secuencia expresada (EST). Hay siete bibliotecas de ADNc disponibles en línea. [20] Se puede comprar una biblioteca BAC en el Instituto de Genómica de la Universidad de Clemson. [21] También hay dos bases de datos de >50 000 [22] y >160 000 [23] EST disponibles en línea.

Una colección de mutantes de todo el genoma con sitios de inserción mapeados que cubren la mayoría de los genes nucleares [24] [25] está disponible: https://www.chlamylibrary.org/.

Se ha demostrado que el genoma de C. reinhardtii contiene N 6 -Metiladenosina (m 6 A), una marca común en procariotas pero mucho más rara en eucariotas. [26] Algunas investigaciones han indicado que 6mA en Chlamydomonas puede estar involucrado en el posicionamiento de los nucleosomas, ya que está presente en las regiones de enlace entre nucleosomas, así como cerca de los sitios de inicio de la transcripción de genes transcritos activamente. [27]

C. reinhardtii parece ser capaz de realizar varios procesos de reparación del ADN . [28] Estos incluyen la reparación recombinatoria , la reparación por rotura de cadena y la reparación por escisión. En particular, los cloroplastos de C. reinhardtii poseen un sistema eficiente para reparar roturas de doble cadena del ADN . [29] En los cloroplastos, la reparación recombinatoria homóloga del ADN se ve fuertemente estimulada por las roturas de doble cadena. [29]

Evolución experimental

Chlamydomonas se ha utilizado para estudiar distintos aspectos de la biología evolutiva y la ecología. Es un organismo de elección para muchos experimentos de selección porque:

  1. Tiene un tiempo de generación corto,
  2. Es a la vez autótrofo y heterótrofo facultativo .
  3. Puede reproducirse tanto sexual como asexualmente, y
  4. Ya existe una gran cantidad de información genética disponible.

Algunos ejemplos (no exhaustivos) de trabajo evolutivo realizado con Chlamydomonas incluyen la evolución de la reproducción sexual, [30] el efecto de la aptitud de las mutaciones, [31] y el efecto de la adaptación a diferentes niveles de CO 2 . [32]

Según una hipótesis teórica frecuentemente citada, [33] la reproducción sexual (en contraste con la reproducción asexual) se mantiene de manera adaptativa en ambientes benignos porque reduce la carga mutacional al combinar mutaciones deletéreas de diferentes líneas de descendencia y aumenta la aptitud media. Sin embargo, en un estudio experimental a largo plazo de C. reinhardtii , se obtuvo evidencia que contradecía esta hipótesis. En poblaciones sexuales, no se encontró que ocurriera la eliminación de mutaciones y no se encontró que la aptitud aumentara. [34]

Movimiento

Trayectoria de C. reinhardtii , en HSA (medio de cultivo), bajo luz roja.

C. reinhardtii nada gracias a sus dos flagelos, [35] en un movimiento análogo al de la braza humana . Repitiendo este movimiento elemental 50 veces por segundo, el alga tiene una velocidad media de 70 μm/s; [36] la diversidad genética de las diferentes cepas da como resultado una enorme gama de valores para esta cantidad. Después de unos segundos de carrera, un batido asincrónico de los dos flagelos provoca un cambio aleatorio de dirección, un movimiento llamado " carrera y voltereta ". [35] A una escala temporal y espacial mayor, el movimiento aleatorio del alga puede describirse como un fenómeno de difusión activa. [37]

Técnicas de transformación del ADN

La transformación de genes se produce principalmente por recombinación homóloga en el cloroplasto y recombinación heteróloga en el núcleo. El genoma del cloroplasto de C. reinhardtii se puede transformar mediante bombardeo de partículas de microproyectiles o agitación con perlas de vidrio, sin embargo este último método es mucho menos eficiente. El genoma nuclear se ha transformado tanto con agitación con perlas de vidrio como con electroporación. El procedimiento biolístico parece ser la forma más eficiente de introducir ADN en el genoma del cloroplasto. Esto se debe probablemente a que el cloroplasto ocupa más de la mitad del volumen de la célula, lo que proporciona al microproyectil un objetivo grande. Se ha demostrado que la electroporación es la forma más eficiente de introducir ADN en el genoma nuclear con frecuencias máximas de transformación dos órdenes de magnitud más altas que las obtenidas mediante el método de perlas de vidrio. [ cita requerida ]

Usos prácticos

Producción de productos biofarmacéuticos

La C. reinhardtii modificada genéticamente se ha utilizado para producir una proteína amiloide sérica de mamíferos (requiere cita), una proteína de anticuerpo humano (requiere cita), un factor de crecimiento endotelial vascular humano , una posible vacuna terapéutica contra el virus del papiloma humano 16 , [38] una posible vacuna contra la malaria (una vacuna de algas comestibles ), [39] y un fármaco de diseño complejo que podría utilizarse para tratar el cáncer. [40]

Fuente de proteína alternativa

Se ha sugerido que C. reinhardtii es una nueva fuente nutricional a base de algas. En comparación con la Chlorella y la Spirulina , se descubrió que C. reinhardtii tiene más ácido alfa-linolénico y una menor cantidad de metales pesados, a la vez que contiene todos los aminoácidos esenciales y un contenido proteico similar. [41] Triton Algae Innovations estaba desarrollando un producto proteico alternativo comercial elaborado a partir de C. reinhardtii .

Fuente limpia de producción de hidrógeno

En 1939, el investigador alemán Hans Gaffron (1902-1979), que en ese momento trabajaba en la Universidad de Chicago, descubrió el metabolismo del hidrógeno de las algas verdes unicelulares. C. reinhardtii y otras algas verdes pueden, en determinadas circunstancias, dejar de producir oxígeno y pasar a producir hidrógeno. Esta reacción, llevada a cabo por la hidrogenasa , una enzima activa únicamente en ausencia de oxígeno, es de corta duración. Durante los treinta años siguientes, Gaffron y su equipo elaboraron la mecánica básica de esta producción fotosintética de hidrógeno por parte de las algas. [42]

Para aumentar la producción de hidrógeno, los investigadores están siguiendo varias vías.

Véase también

Referencias

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Lectura adicional

Enlaces externos