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Cecidomyiidae

Un cecidomíido poniendo huevos en la hierba.
Cecidomyiid en cópula
Cecidomyiid ovipostando en pozos de escarabajos de corteza en un haya caída

Cecidomyiidae es una familia de moscas conocidas como mosquitos de las agallas o mosquitos de las agallas . Como su nombre lo indica, las larvas de la mayoría de los mosquitos de las agallas se alimentan dentro del tejido vegetal , creando crecimientos anormales en las plantas llamados agallas . Los Cecidomyiidae son insectos pequeños muy frágiles que generalmente miden solo 2-3 mm (0,079-0,118 pulgadas) de largo; muchos miden menos de 1 mm (0,039 pulgadas) de largo. Se caracterizan por tener alas peludas, inusuales en el orden Diptera , y tienen antenas largas . Algunos Cecidomyiidae también son conocidos por el extraño fenómeno de la pedogénesis en el que la etapa larvaria se reproduce sin madurar primero. [4] [5] En algunas especies, las larvas hijas consumen a la madre, mientras que en otras, la reproducción ocurre más tarde en el huevo o pupa. [5]

Se han descrito más de 6.650 especies y 830 géneros en todo el mundo, aunque esto es sin duda una subestimación de la diversidad real de esta familia. [6] Un estudio de metacodificación de ADN publicado en 2016 estimó que la fauna de Canadá solo supera las 16.000 especies, lo que sugiere un asombroso recuento global de más de 1 millón de especies de cecidomíidos que aún no se han descrito, lo que la convertiría en la familia más específica de todo el reino animal. [7] Un segundo estudio de metacodificación de ADN similar realizado en Costa Rica también encontró que Cecidomyiidae es la familia de moscas más diversa, lo que respalda esta afirmación. [8] Un tercer estudio de metacodificación de ADN en 2023 concluyó que Cecidomyiidae es la familia más diversa recolectada de trampas de malestar en todo el mundo y es un componente dominante de la diversidad de insectos, que comprende aproximadamente el 20% de todas las especies recolectadas. [9]

Catocha americana
Daño por Contarinia nasturtii en coliflor

Descripción

Los cecidomíidos son moscas de tamaño diminuto a pequeño (0,5–3,0 mm), rara vez más grandes (hasta 8 mm, longitud del ala 15 mm) con una apariencia delicada. A excepción de unos pocos géneros con alas reducidas, los ojos son holópticos . Las piezas bucales son reducidas. Las antenas de los cecidomíidos son notablemente largas, con 12–14 segmentos (a veces menos y hasta 40 en algunos géneros). Los segmentos antenales consisten en un engrosamiento basal y pecíolo o son binodales, con un nódulo proximal, un pecíolo intermedio y un nódulo distal. En los segmentos antenales se encuentran verticilos basales, mediales y apicales de pelos. En algunas especies, también se encuentran verticilos de filamentos sensoriales en forma de bucle, siendo a veces reducido el basal o medial. Algunas moscas de las agallas tienen solo un verticilo (basal) de pelos en los segmentos antenales, y los sensorios (apéndices sensoriales transparentes) difieren en tamaño y forma. Los filamentos son similares a hilos en Porricondylinae y en todos los Cecidomyiinae y toman la forma de bucles largos en la supertribu Cecidomyiiidi). Los ocelos están presentes solo en Lestremiinae . Las alas son generalmente claras, rara vez estampadas. El ala tiene microtrichia , a menudo como escamas, y algunas especies tienen macrotrichia. El número de venas longitudinales es reducido. Solo las venas R1, R4+5, M3+4 y Cu1 están bien desarrolladas en la mayoría de las especies. Las venas mediales M1 y M2 se desarrollan solo en grupos primitivos, y la costa generalmente tiene una ruptura justo más allá de la vena R5. Las patas son largas y delgadas, sin cerdas apicales. Las larvas de mosquito de la agalla, y muchos adultos, son de color naranja o amarillo debido a los carotenoides . [10] Los Cecidomyiidae se encuentran entre los pocos animales que pueden sintetizar carotenoides, pero se desconoce en qué medida la biosíntesis de novo de carotenoides explica su color característico en comparación con el secuestro dietético o los endosimbiontes. [11] Los genes responsables de la síntesis de carotenoides probablemente se originan a partir de la transferencia horizontal de genes de un donante fúngico. [11]

Los genitales de los machos consisten en gonocoxitos, gonostilos, edeago y tergitos 9 y 10. Las moscas de las agallas inferiores (en el sentido evolutivo) a menudo tienen parámeros esclerotizados y una placa más o menos transparente (el tegmen) ubicada sobre el edeago. En las moscas de las agallas superiores, los parámeros y el tegmen no están desarrollados. En estas, en cambio, cerca del edeago, hay una excrecencia basal triangular de los gonocoxitos llamada gonosterna. Las estructuras de soporte llamadas apodema se encuentran cerca de la base de los genitales en los machos; estos a menudo están equipados con dos excrecencias. El ovipositor es corto, lameliforme o largo, móvil y, en algunas especies, acicular.

La larva es peripnéustica. La cabeza es diminuta, cónica y tiene dos prolongaciones posterolaterales. Las piezas bucales son reducidas, con mandíbulas estiliformes diminutas. Las antenas relativamente prominentes tienen dos segmentos. Las setas o papilas integumentarias son importantes en la taxonomía, ya que son constantes en número dentro de los grupos. El protórax tiene una espátula esternal esclerotizada (la mayoría). El ano es terminal en Lestremiinae y pedogenético en Porricondylinae y ventral en otros grupos. La pupa es exarada (en unas pocas especies está encerrada dentro del tegumento larvario del último estadio). El espiráculo anterior y el ángulo anterior de las bases de las antenas son prominentes (la mayoría). [12] [13]

Asphondylia solidaginis , pupa en agalla en Solidago sp.
Rhopalomyia solidaginis
Larva de Vitisiella

Como control de plagas o biológico

Muchas especies son económicamente significativas, especialmente la mosca de Hesse , una plaga del trigo, ya que las agallas causan graves daños. Otras plagas importantes de esta familia son la mosca de la flor del trigo Sitodiplosis mosellana , la mosca asiática de las agallas del arroz ( Orseolia oryzae ) y la mosca africana de las agallas del arroz O. oryzivora . La mosca del grano del mijo ( Geromyia penniseti ), la mosca del sorgo ( Contarinia sorghicola ) y la mosca africana de las agallas del arroz ( Orseolia oryzivora ) atacan cultivos de cereales como el mijo perlado en Malí y otros países del Sahel en África occidental. [14]

Otras plagas son la mosca de la flor del café ( Dasyneura coffeae ), la mosca de la vaina de la soja ( Asphondylia yushimai ), la mosca de la agalla de las agujas del pino ( Thecodiplosis japonensis ), la mosca de la flor de la lenteja ( Contarinia lentis ), la mosca de la flor de la alfalfa ( C. medicaginis ) y la mosca de los brotes de alfalfa ( Dasineura ignorata ) en las leguminosas; la mosca de la agalla del algarrobo negro ( Obolodiplosis robiniae ), la mosca de la colinabo ( Contarinia nasturtii ) y la mosca de la vaina de las coles ( Dasineura brassicae ) en las crucíferas ; la mosca de la pera ( Contarinia pyrivora ) y la mosca de la caña de frambuesa ( Resseliella theobaldi ) en los cultivos frutales; Horidiplosis ficifolii en higos ornamentales, y la mosca de la agalla de la roseta ( Rhopalomyia solidaginis ) en tallos de vara de oro , Porricondylini spp. en Citrus , Lestremia spp. en batata, ñame, jengibre, ajo, cebollas, tubérculos de taro y papa, Lestodiplosis spp., Acaroletes spp. y Aphidoletes spp. en naranjas, y Arthrocnodax spp. en limas. [15] [16] [17]

En Sudáfrica, Dasineura rubiformis se ha utilizado contra la invasora Acacia mearnsii australiana ; pone huevos en las flores, que se convierten en agallas, reduciendo así la producción de semillas. [18]

Los parasitoides hospedados por Cecidomyiidae incluyen Braconidae (Opiinae, Euphorinae), Eurytomidae , Eulophidae , Torymidae , Pteromalidae , Eupelmidae , Trichogrammatidae y Aphelinidae . Todos contienen especies que son agentes biológicos reales o potenciales.

Un gran número de especies de mosquitos de las agallas son enemigos naturales de otras plagas de los cultivos. Sus larvas son depredadoras y algunas se reportan como parásitas . Las presas más comunes son los pulgones y los ácaros , seguidos por las cochinillas y luego otras presas pequeñas como las moscas blancas y los trips , que se alimentan de los huevos de otros insectos o ácaros. Como las larvas son incapaces de moverse distancias considerables, debe estar presente una población sustancial de presas antes de que los adultos pongan huevos, y los Cecidiomyiidae se ven con mayor frecuencia durante los brotes de plagas. Una especie, Aphidoletes aphidimyza , es un componente importante de los programas de control biológico para cultivos de invernadero y se vende ampliamente en los Estados Unidos .

Referencias

  1. ^ Gagné, Raymond; Jaschhof, Mathias (2017). "A Catalog of the Cecidomyiidae (Diptera) of the World, Fourth Edition" (PDF) . Servicio de Investigación Agrícola, Departamento de Agricultura de los Estados Unidos . Consultado el 29 de abril de 2018 .
  2. ^ Mathias Jaschhof (2016). "Una revisión de Diallactiini (Diptera, Cecidomyiidae, Winnertziinae) del mundo, con la descripción de seis nuevos géneros y diecisiete nuevas especies". Zootaxa . 4127 (2): 201–244. doi :10.11646/zootaxa.4127.2.1. PMID  27395622.
  3. ^ "Universidad de California, Riverside". Archivado desde el original el 24 de septiembre de 2015. Consultado el 4 de enero de 2013 .
  4. ^ Gagné, Raymond J.; Jaschhof, Mathias (2017). "A Catalog of the Cecidomyiidae (Diptera) of the World, Fourth Edition" (PDF) . Servicio de Investigación Agrícola, Departamento de Agricultura de los Estados Unidos . Consultado el 27 de marzo de 2018 .
  5. ^ ab Wyatt, IJ (2009-04-02). "Paedogénesis pupal en los Cecidomyiidae (Diptera).-I". Actas de la Royal Entomological Society de Londres. Serie A, Entomología general . 36 (10–12): 133–143. doi :10.1111/j.1365-3032.1961.tb00259.x.
  6. ^ RJ Gagne ; M. Jaschof (2021). Catálogo de los Cecidomyiidae (Diptera) del mundo (5.ª ed.). ISBN 978-0-9863941-3-3. Wikidata  Q109561625.
  7. ^ Hebert, Paul DN; Ratnasingham, Sujeevan; Zakharov, Evgeny V.; Telfer, Angela C.; Levesque-Beaudin, Valerie; Milton, Megan A.; Pedersen, Stephanie; Jannetta, Paul; deWaard, Jeremy R. (5 de septiembre de 2016). "Conteo de especies animales con códigos de barras de ADN: insectos canadienses". Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences . 371 (1702): 20150333. doi :10.1098/rstb.2015.0333. ISSN  0962-8436. PMC 4971185 . PMID  27481785. 
  8. ^ Borkent, Art; Brown, Brian V.; Adler, Peter H.; Amorim, Dalton De Souza; Barber, Kevin; Bickel, Daniel; Boucher, Stephanie; Brooks, Scott E.; Burger, John; Burington, ZL; Capellari, Renato S.; Costa, Daniel NR; Cumming, Jeffrey M.; Curler, Greg; Dick, Carl W. (2018-03-27). "Notable diversidad de moscas (Diptera) en una zona del bosque nuboso de Costa Rica: por qué el inventario es una ciencia vital". Zootaxa . 4402 (1): 53–90. doi : 10.11646/zootaxa.4402.1.3 . ISSN  1175-5334. PMID  29690278. S2CID  13819313.
  9. ^ Srivathsan, Amrita; Ang, Yuchen; Heraty, John M.; Hwang, Wei canción; Jusoh, WanFA; Kutty, Sujatha Narayanan; Puniamoorthy, Jayanthi; Sí, Darren; Roslin, Tomás; Meier, Rudolf (2023). "Convergencia de dominancia y negligencia en la diversidad de insectos voladores". Ecología y evolución de la naturaleza . 7 (7): 1012–1021. Código Bib : 2023NatEE...7.1012S. doi : 10.1038/s41559-023-02066-0 . PMC 10333119 . PMID  37202502. 
  10. ^ Heath, Jeremy J.; Wells, Brenda; Cipollini, Don; Stireman, John O. (2013). "Los carnívoros y los carotenoides están asociados con la divergencia conductual adaptativa en una radiación de mosquitos de las agallas". Entomología ecológica . 38 (1): 11–22. Bibcode :2013EcoEn..38...11H. doi :10.1111/j.1365-2311.2012.01397.x. S2CID  85218179.
  11. ^ ab Cobbs, Cassidy; Heath, Jeremy; Stireman, John O.; Abbot, Patrick (1 de agosto de 2013). "Carotenoides en lugares inesperados: mosquitos de las agallas, transferencia lateral de genes y biosíntesis de carotenoides en animales". Filogenética molecular y evolución . 68 (2): 221–228. doi :10.1016/j.ympev.2013.03.012. ISSN  1055-7903. PMID  23542649.
  12. ^ Gagné, RJ 1981. Cecidomyiidae. En: McAlpine, JF et al. (eds.), Manual of Nearctic Diptera . Vol. 1. Research Branch, Agriculture, Canada, Ottawa. págs. 257–292. descargar aquí Archivado el 1 de diciembre de 2013 en Wayback Machine.
  13. ^ Mamaev, BM Familia Cecidomyiidae en Bei-Bienko, G. Ya , 1988 Claves para los insectos de la parte europea de la URSS Volumen 5 (Diptera) Parte 2 Edición en inglés. Claves para las especies paleárticas, pero ahora necesita revisión.
  14. ^ Heath, J. "Guía de insectos, artrópodos y moluscos del norte del país dogón". dogonlanguages.org . Consultado el 20 de octubre de 2022 .
  15. ^ Darvas, B., Skuhravá, M., Andersen, A., 2000, Plagas agrícolas de dípteros de la región paleártica. En: Papp, L., Darvas, B. (Eds.). Contribuciones a un manual de dípteros paleárticos con especial referencia a las moscas de importancia económica . Science Herald, Budapest, 565–649.
  16. ^ Dennis S. Hill, 1987 Plagas de insectos agrícolas de regiones templadas y su control Cambridge [Cambridgeshire]; Nueva York : Cambridge University Press, 1987. ISBN 0521240131 
  17. ^ Dennis S Hill 1987 Insectos dañinos para la agricultura en los trópicos y su control, Cambridge. University Press, Nueva York ISBN 9780521294416 
  18. ^ Impson, FAC, Kleinjan, CA, Hoffmann, JH, y Post, JA (2008). Dasineura rubiformis (Diptera: Cecidomyiidae), un nuevo agente de control biológico para Acacia mearnsii en Sudáfrica. Revista Sudafricana de Ciencias, 104(7-8), 247-249.

Lectura adicional

Económico

Taxonomía

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