stringtranslate.com

adipogénesis

Características histológicas de un lipoblasto , también conocido como célula precursora de adipocitos o preadipocito.

La adipogénesis es la formación de adipocitos (células grasas) a partir de células madre. [1] Consta de 2 fases, determinación y diferenciación terminal. La determinación es que las células madre mesenquimales se comprometen con las células precursoras de los adipocitos, también conocidas como lipoblastos o preadipocitos, que pierden el potencial de diferenciarse a otros tipos de células como condrocitos , miocitos y osteoblastos . [2] La diferenciación terminal es que los preadipocitos se diferencian en adipocitos maduros. Los adipocitos pueden surgir de preadipocitos residentes en el tejido adiposo o de células progenitoras derivadas de la médula ósea que migran al tejido adiposo. [3]

Adipocito diferenciado teñido con Oil Red O

Introducción

Los adipocitos desempeñan un papel vital en la homeostasis energética y procesan la mayor reserva de energía en forma de triglicerol en el cuerpo de los animales. [4] Los adipocitos permanecen en un estado dinámico, comienzan a expandirse cuando la ingesta de energía es mayor que el gasto y se movilizan cuando el gasto de energía excede la ingesta. Este proceso está altamente regulado por hormonas contrarreguladoras a las que estas células son muy sensibles. La hormona insulina promueve la expansión, mientras que las contrahormonas epinefrina , glucagón y ACTH promueven la movilización. La adipogénesis es un proceso de diferenciación celular estrechamente regulado, en el que las células madre mesenquimales se comprometen con los preadipocitos y los preadipocitos se diferencian en adipocitos. La diferenciación celular es un cambio en los patrones de expresión genética que la expresión de genes multipotentes altera a la expresión de genes específicos del tipo de célula. Por tanto, los factores de transcripción son cruciales para la adipogénesis. Los factores de transcripción, el receptor γ activado por el proliferador de peroxis (PPARγ) y las proteínas de unión al potenciador de CCAAT (C/EBP) son los principales reguladores de la adipogénesis. [5] En comparación con células de otro linaje, la diferenciación in vitro de células grasas es auténtica y recapitula la mayor parte de los rasgos característicos de la diferenciación in vivo. Las características clave de los adipocitos diferenciados son la detención del crecimiento, el cambio morfológico, la alta expresión de genes lipogénicos y la producción de adipocinas como adiponectina , leptina , resistina (en el ratón, no en humanos) y TNF-alfa .

Diferenciación

Los estudios in vitro sobre diferenciación han utilizado el linaje de preadipocitos precomprometidos, como la línea celular 3T3-L1 y 3T3-F442A, o preadipocitos aislados de la fracción estromal-vascular del tejido adiposo blanco. La diferenciación in vitro es un proceso muy ordenado. En primer lugar, los preadipocitos en proliferación detienen el crecimiento, normalmente mediante inhibición por contacto. La detención del crecimiento fue seguida por los primeros eventos, incluido un cambio morfológico del preadipocito de la forma de fibroblasto a la forma redonda y la inducción de los factores de transcripción C/EBPβ y C/EBPδ . La segunda fase de la detención del crecimiento es la expresión de dos factores de transcripción clave, PPARγ y C/EBPα , que promueven la expresión de genes que confieren las características de los adipocitos maduros. Estos genes incluyen la proteína de los adipocitos (aP2) , el receptor de insulina, la glicerofosfato deshidrogenasa, la ácido graso sintasa, la acetil CoA carboxilasa, el transportador de glucosa tipo 4 (Glut 4) , etc. [6] A través de este proceso, las gotas de lípidos se acumulan en el adipocito . Sin embargo, las líneas celulares de preadipocitos tienen dificultades para diferenciarse en adipocitos. Los preadipocitos muestran CD45 CD31 CD34 + CD29 + SCA1 + CD24 + Los marcadores de superficie pueden proliferar y diferenciarse a adipocitos in vivo. [7]

Modelos de diferenciación in vitro.

Regulaciones transcripcionales

PPARγ

PPARγ es miembro de la superfamilia de receptores nucleares y es el regulador maestro de la adipogénesis. PPARγ se heterodimeriza con el receptor de retinoide X (RXR) y luego se une al ADN, lo que activa los promotores de los genes posteriores. PPARγ induce genes específicos de células grasas, incluidos aP2, adiponectina y fosfoenolpiruvato carboxiquinasa (PEPCK) . La activación de PPARg tiene efectos sobre varios aspectos de las características de los adipocitos maduros, como los cambios morfológicos, la acumulación de lípidos y la adquisición de sensibilidad a la insulina. [21] PPARγ es necesario y suficiente para promover la diferenciación de las células grasas. "PPARγ es necesario para la diferenciación de células madre embrionarias (células ES) en adipocitos" . [22] La expresión de PPARγ en sí es suficiente para convertir los fibroblastos en adipocitos in vitro. [23] Se ha demostrado que otros factores proadipogénicos como C/EBP y factores similares a Krüppel (KLF) inducen el promotor PPARγ . Además, también se requiere PPARγ para mantener la expresión de genes que caracterizan al adipocito maduro. [24] Tiazolidinedionas (TZD), agentes antidiabéticos que utilizan bien el cóctel de diferenciación in vitro, promoviendo la actividad de PPARγ .

C/EBP

Los C/EBP , factores de transcripción, son miembros de la clase de cremalleras de leucina básica. El AMPc, un inductor de la adipogénesis, puede promover la expresión de C/EBPβ y C/EBPδ . [25] En la etapa temprana de diferenciación, se cree que el aumento transitorio de los niveles de ARNm y proteína de C/EBPβ y C/EBPδ activa los factores de transcripción adipogénicos, PPARγ y C/EBPα . PPARγ y C/EBPα pueden retroalimentarse para inducir la expresión de cada uno, así como de sus genes posteriores. [26] C/EBPα también juega un papel importante en la sensibilidad a la insulina de los adipocitos. [27] Sin embargo, C/EBPγ suprime la diferenciación que podría deberse a la inactivación por C/EBPβ .

Cascada transcripcional

Aunque PPARγ y C/EBPα son reguladores maestros de la adipogénesis, otros factores de transcripción actúan en la progresión de la diferenciación. El factor 1 de determinación y diferenciación de adipocitos (ADD1) y la proteína 1 de unión al elemento regulador de esteroles (SREBP1) pueden activar PPARγ mediante la producción de un ligando endógeno de PPARγ o promover directamente la expresión de PPARγ . La proteína de unión a elementos que responde a AMPc promueve la diferenciación, mientras que la activación de PPARγ y C/EBPα también responde a la regulación negativa. El factor de células T/factor de unión al potenciador linfoide (TCF/LEF) , [28] GATA2/3, [29] el receptor α del ácido retinoico, [30] y SMAD6/7 [31] no afectan la expresión de C/ EBPβ y C/EBPδ pero inhiben la inducción de PPARγ y C/EBPα .

Otras regulaciones

Los productos del sistema endocrino como la insulina , el IGF-1 , el AMPc , los glucocorticoides y la triyodotironina inducen eficazmente la adipogénesis en los preadipocitos. [32] [33] [34]

Insulina e IGF1

La insulina regula la adipogénesis a través de la señalización del receptor del factor de crecimiento similar a la insulina 1 (IGF1) . La insulina/IGF1 promueve los factores de transcripción de inducción que regulan la diferenciación terminal.

señalización wnt

La señalización de Wnt/β-catenina suprime la adipogénesis, al promover la diferenciación de células madre mesenquimales en miocitos y osteocitos , pero bloqueando el compromiso con el linaje adipocítico. [35] Wnt/β-catenina inhibe la diferenciación de preadipocitos al inhibir la inducción de PPARγ y C/EBPα .

BMP

Las proteínas morfogenéticas óseas (BMP) son miembros de la superfamilia del factor de crecimiento transformante β (TGFβ). BMP2 puede estimular la determinación de células multipotentes o inducir la osteogénesis a través de diferentes heterómeros de receptores. [36] Las BMP también promueven la diferenciación de los preadipocitos.

Células senescentes

Se ha demostrado que las células progenitoras adiposas senescentes en el tejido adiposo subcutáneo suprimen la diferenciación adipogénica. [37] La ​​reducción de la adipogénesis en personas obesas se debe al aumento de las células senescentes en el tejido adiposo en lugar de a un número reducido de células madre/progenitoras. [38]

Referencias

  1. ^ "Adipogénesis". Merriam Webster . Consultado el 3 de enero de 2020 .
  2. ^ Gregoire FM, Smas CM, Sul HS (julio de 1998). "Comprensión de la diferenciación de adipocitos". Revisiones fisiológicas . 78 (3): 783–809. doi :10.1152/physrev.1998.78.3.783. PMID  9674695. S2CID  1538359.
  3. ^ Hausman GJ, Hausman DB (2006). "Búsqueda de la célula progenitora de preadipocitos". Revista de investigación clínica . 116 (12): 3103–3106. doi :10.1172/JCI30666. PMC 1679717 . PMID  17143324. 
  4. ^ Cornelius P, MacDougald OA, Lane MD (1994). "Regulación del desarrollo de adipocitos". Revista Anual de Nutrición . 14 : 99–129. doi : 10.1146/annurev.nu.14.070194.000531. PMID  7946535.
  5. ^ Rosen ED, MacDougald OA (diciembre de 2006). "Diferenciación de adipocitos de adentro hacia afuera". Reseñas de la naturaleza. Biología celular molecular . 7 (12): 885–96. doi :10.1038/nrm2066. PMID  17139329. S2CID  189384.
  6. ^ Rosen ED, Walkey CJ, Puigserver P, Spiegelman BM (junio de 2000). "Regulación transcripcional de la adipogénesis". Genes y desarrollo . 14 (11): 1293–307. doi : 10.1101/gad.14.11.1293 . PMID  10837022. S2CID  5661544.
  7. ^ Rodeheffer MS, Birsoy K, Friedman JM (octubre de 2008). "Identificación de células progenitoras de adipocitos blancos in vivo". Celúla . 135 (2): 240–9. doi : 10.1016/j.cell.2008.09.036 . PMID  18835024. S2CID  12127266.
  8. ^ Green H, Kehinde O (28 de febrero de 1974). "Sublíneas de células 3T3 de ratón que acumulan lípidos". Celúla . 1 (3): 113–116. doi :10.1016/0092-8674(74)90126-3.
  9. ^ Verde H, Kehinde O (enero de 1976). "Cambios hereditarios espontáneos que conducen a una mayor conversión adiposa en las células 3T3". Celúla . 7 (1): 105-13. doi :10.1016/0092-8674(76)90260-9. PMID  949738. S2CID  41406809.
  10. ^ Négrel R, Grimaldi P, Ailhaud G (diciembre de 1978). "Establecimiento de una línea clonal de preadipocitos a partir de grasa epididimal de ratón ob / ob que responde a la insulina y a las hormonas lipolíticas". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 75 (12): 6054–8. Código bibliográfico : 1978PNAS...75.6054N. doi : 10.1073/pnas.75.12.6054 . PMC 393116 . PMID  216011. 
  11. ^ Chapman AB, Knight DM, Dieckmann BS, Ringold GM (diciembre de 1984). "Análisis de la expresión génica durante la diferenciación de células adipogénicas en cultivo y control hormonal del programa de desarrollo". La Revista de Química Biológica . 259 (24): 15548–55. doi : 10.1016/S0021-9258(17)42583-X . PMID  6392298.
  12. ^ Pape ME, Kim KH (mayo de 1988). "Efecto del factor de necrosis tumoral sobre la expresión del gen acetil-coenzima A carboxilasa y la diferenciación de preadipocitos". Endocrinología Molecular . 2 (5): 395–403. doi : 10.1210/mend-2-5-395 . PMID  2901666.
  13. ^ Darmon M, Serrero G, Rizzino A, Sato G (abril de 1981). "Aislamiento de líneas celulares clonales mioblásticas, fibroadipogénicas y fibroblásticas a partir de un precursor común y estudio de sus requisitos de crecimiento y diferenciación". Investigación con células experimentales . 132 (2): 313–27. doi :10.1016/0014-4827(81)90107-5. PMID  7215448.
  14. ^ Jainchill JL, Aaronson SA, Todaro GJ (noviembre de 1969). "Virus del sarcoma y la leucemia murinos: ensayo utilizando líneas clonales de células de ratón inhibidas por contacto". Revista de Virología . 4 (5): 549–53. doi :10.1128/jvi.4.5.549-553.1969. PMC 375908 . PMID  4311790. 
  15. ^ Todaro GJ, Green H (mayo de 1963). "Estudios cuantitativos del crecimiento de células de embriones de ratón en cultivo y su desarrollo en líneas establecidas". La revista de biología celular . 17 (2): 299–313. doi :10.1083/jcb.17.2.299. PMC 2106200 . PMID  13985244. 
  16. ^ Aaronson SA, Todaro GJ (octubre de 1968). "Desarrollo de líneas similares a 3T3 a partir de cultivos de embriones de ratón Balb-c: susceptibilidad a la transformación a SV40". Revista de fisiología celular . 72 (2): 141–8. doi : 10.1002/jcp.1040720208. PMID  4301006. S2CID  31332589.
  17. ^ Reznikoff CA, Brankow DW, Heidelberger C (diciembre de 1973). "Establecimiento y caracterización de una línea clonada de células de embrión de ratón C3H sensibles a la inhibición de la división posconfluencia". Investigación sobre el cáncer . 33 (12): 3231–8. PMID  4357355.
  18. ^ Allan EH, Häusler KD, Wei T, Gooi JH, Quinn JM, Crimeen-Irwin B, et al. (Agosto de 2008). "Regulación de EfrinB2 por PTH y PTHrP revelada por perfiles moleculares en la diferenciación de osteoblastos". Revista de investigación de huesos y minerales . 23 (8): 1170–81. doi : 10.1359/jbmr.080324 . PMID  18627264.
  19. ^ Yaffe D, Saxel O (22 al 29 de diciembre de 1977). "Pasaje en serie y diferenciación de células miógenas aisladas de músculo de ratón distrófico". Naturaleza . 270 (5639): 725–7. Código Bib :1977Natur.270..725Y. doi :10.1038/270725a0. PMID  563524. S2CID  4196110.
  20. ^ Christian CN, Nelson PG, Peacock J, Nirenberg M (mayo de 1977). "Formación de sinapsis entre dos líneas celulares clonales". Ciencia . 196 (4293): 995–8. Código bibliográfico : 1977 Ciencia... 196..995C. doi : 10.1126/ciencia.193191. PMID  193191.
  21. ^ Mota de Sá P, Richard AJ, Hang H, Stephens JM (marzo de 2017). "Regulación transcripcional de la adipogénesis". Fisiología Integral . 7 (2): 635–674. doi : 10.1002/cphy.c160022. ISBN 9780470650714. PMID  28333384.
  22. ^ Rosen ED, Sarraf P, Troy AE, Bradwin G, Moore K, Milstone DS y col. (octubre de 1999). "Se requiere PPAR gamma para la diferenciación del tejido adiposo in vivo e in vitro". Célula molecular . 4 (4): 611–7. doi : 10.1016/s1097-2765(00)80211-7 . PMID  10549292.
  23. ^ Tontonoz P, Hu E, Spiegelman BM (diciembre de 1994). "Estimulación de la adipogénesis en fibroblastos por PPAR gamma 2, un factor de transcripción activado por lípidos". Celúla . 79 (7): 1147–56. doi :10.1016/0092-8674(94)90006-x. PMID  8001151. S2CID  54387527.
  24. ^ Tamori Y, Masugi J, Nishino N, Kasuga M (julio de 2002). "Papel del receptor gamma activado por proliferador de peroxisomas en el mantenimiento de las características de los adipocitos maduros 3T3-L1". Diabetes . 51 (7): 2045–55. doi : 10.2337/diabetes.51.7.2045 . PMID  12086932.
  25. ^ Cao Z, Umek RM, McKnight SL (septiembre de 1991). "Expresión regulada de tres isoformas C/EBP durante la conversión adiposa de células 3T3-L1". Genes y desarrollo . 5 (9): 1538–52. doi : 10.1101/gad.5.9.1538 . PMID  1840554.
  26. ^ MacDougald OA, Mandrup S (enero de 2002). "Adipogénesis: fuerzas que inclinan la balanza". Tendencias en Endocrinología y Metabolismo . 13 (1): 5–11. doi :10.1016/s1043-2760(01)00517-3. PMID  11750856. S2CID  39531967.
  27. ^ Wu Z, Rosen ED, Brun R, Hauser S, Adelmant G, Troy AE y col. (febrero de 1999). "La regulación cruzada de C / EBP alfa y PPAR gamma controla la vía transcripcional de la adipogénesis y la sensibilidad a la insulina". Célula molecular . 3 (2): 151–8. doi : 10.1016/s1097-2765(00)80306-8 . PMID  10078198.
  28. ^ Ross SE, Hemati N, Longo KA, Bennett CN, Lucas PC, Erickson RL, MacDougald OA (agosto de 2000). "Inhibición de la adipogénesis por señalización Wnt". Ciencia . 289 (5481): 950–3. Código bibliográfico : 2000Sci...289..950R. doi : 10.1126/ciencia.289.5481.950. PMID  10937998.
  29. ^ Tong Q, Dalgin G, Xu H, Ting CN, Leiden JM, Hotamisligil GS (octubre de 2000). "Función de los factores de transcripción GATA en la transición preadipocito-adipocito". Ciencia . 290 (5489): 134–8. Código Bib : 2000Sci...290..134T. doi : 10.1126/ciencia.290.5489.134. PMID  11021798. S2CID  8445774.
  30. ^ Schwarz EJ, Reginato MJ, Shao D, Cracovia SL, Lazar MA (marzo de 1997). "El ácido retinoico bloquea la adipogénesis al inhibir la transcripción mediada por C/EBPbeta". Biología Molecular y Celular . 17 (3): 1552–61. doi :10.1128/mcb.17.3.1552. PMC 231881 . PMID  9032283. 
  31. ^ Choy L, Skillington J, Derynck R (mayo de 2000). "Funciones del receptor autocrino de TGF-beta y la señalización de Smad en la diferenciación de adipocitos". La revista de biología celular . 149 (3): 667–82. doi :10.1083/jcb.149.3.667. PMC 2174852 . PMID  10791980. 
  32. ^ Estudiante AK, Hsu RY, Lane MD (mayo de 1980). "Inducción de la síntesis de ácido graso sintetasa en la diferenciación de preadipocitos 3T3-L1". La Revista de Química Biológica . 255 (10): 4745–50. doi : 10.1016/S0021-9258(19)85559-X . PMID  7372608.
  33. ^ Spiegelman BM, Green H (septiembre de 1980). "Control de la biosíntesis de proteínas específicas durante la conversión adiposa de células 3T3". La Revista de Química Biológica . 255 (18): 8811–18. doi : 10.1016/S0021-9258(18)43575-2 . PMID  6773950.
  34. ^ Amri EZ, Dani C, Doglio A, Etienne J, Grimaldi P, Ailhaud G (agosto de 1986). "Diferenciación de células adiposas: evidencia de un proceso de dos pasos en la línea clonal Ob1754 dependiente de poliamina". La revista bioquímica . 238 (1): 115–22. doi :10.1042/bj2380115. PMC 1147104 . PMID  3800927. 
  35. ^ Christodoulides C, Lagathu C, Sethi JK, Vidal-Puig A (enero de 2009). "Adipogénesis y señalización WNT". Tendencias en Endocrinología y Metabolismo . 20 (1): 16–24. doi :10.1016/j.tem.2008.09.002. PMC 4304002 . PMID  19008118. 
  36. ^ Chen D, Ji X, Harris MA, Feng JQ, Karsenty G, Celeste AJ, et al. (Julio de 1998). "Funciones diferenciales del receptor de la proteína morfogenética ósea (BMP) tipo IB e IA en la diferenciación y especificación de células precursoras mesenquimales de linajes de osteoblastos y adipocitos". La revista de biología celular . 142 (1): 295–305. doi :10.1083/jcb.142.1.295. PMC 2133031 . PMID  9660882. 
  37. ^ Eckel-Mahan K, Latre AR, Kolonin MG (2020). "Expansión y agotamiento de las células del estroma adiposo: mecanismos y consecuencias". Células . 9 (4): 863. doi : 10.3390/celdas9040863 . PMC 7226766 . PMID  32252348. 
  38. ^ Gustafson B, Nerstedt A, Smith U (2019). "La adipogénesis subcutánea reducida en la obesidad hipertrófica humana está relacionada con células precursoras senescentes". Comunicaciones de la naturaleza . 10 (1): 2757. Código bibliográfico : 2019NatCo..10.2757G. doi :10.1038/s41467-019-10688-x. PMC 6588633 . PMID  31227697.