Técnica para mapear circuitos neuronales en dirección "ascendente", desde el objetivo hasta la fuente
El rastreo retrógrado es un método de investigación utilizado en neurociencia para rastrear conexiones neuronales desde su punto de terminación (la sinapsis ) hasta su fuente (el cuerpo celular ). Las técnicas de rastreo retrógrado permiten una evaluación detallada de las conexiones neuronales entre una población objetivo de neuronas y sus entradas en todo el sistema nervioso . Estas técnicas permiten el "mapeo" de las conexiones entre las neuronas en una estructura particular (por ejemplo, el ojo ) y las neuronas objetivo en el cerebro . La técnica opuesta es el rastreo anterógrado , que se utiliza para rastrear conexiones neuronales desde su fuente hasta su punto de terminación (es decir, desde el cuerpo celular hasta la sinapsis). Tanto las técnicas de rastreo anterógrado como retrógrado se basan en la visualización del transporte axonal .
Técnicas
El rastreo retrógrado se puede lograr por diversos medios, incluido el uso de cepas virales como marcadores de la conectividad de una célula con el sitio de inyección. El virus de la pseudorrabia (PRV; cepa Bartha), por ejemplo, se puede utilizar como un rastreador adecuado debido a la propensión de la infección a propagarse en sentido ascendente a través de una vía de neuronas unidas sinápticamente, revelando así la naturaleza de sus circuitos. [1] [2]
Se ha demostrado que la rabia es eficaz para este sistema de rastreo de circuitos debido a su bajo nivel de daño a las células infectadas, la especificidad de infectar solo neuronas y la estricta limitación de la propagación viral entre neuronas a las regiones sinápticas. [3] Estos factores permiten realizar rastros altamente específicos que pueden revelar conexiones neuronales individuales en un circuito sin infligir daño físico a las células. [ cita requerida ]
Otra técnica consiste en inyectar "perlas" especiales en los núcleos cerebrales de animales anestesiados. [4] Se permite que los animales sobrevivan durante unos días y luego se los sacrifica. Las células en el origen de la proyección se visualizan a través de un microscopio de fluorescencia invertido . [ cita requerida ]
Wickersham y sus colegas desarrollaron una técnica especializada que empleaba un virus de la rabia modificado . Este virus era capaz de infectar una sola célula y atravesar una sinapsis, lo que permitió a los investigadores investigar la conectividad local de las neuronas. [5]
Virus de la rabia
Después de ser absorbido por la terminal sináptica o el axón de la neurona diana, el virus de la rabia se envuelve en una vesícula que se transporta hacia el cuerpo celular a través de la dineína axonal . En el virus de la rabia de tipo salvaje , el virus continuará replicándose y propagándose por todo el sistema nervioso central hasta que haya infectado sistémicamente todo el cerebro. [3] La eliminación del gen que codifica la glucoproteína (proteína G) en la rabia limita la propagación del virus estrictamente a las células que fueron infectadas inicialmente. La propagación transsináptica del virus puede limitarse a la transmisión monosináptica a una neurona de origen seudotipificando la proteína G y poniendo el gen bajo el control de Cre . Esta propagación viral puede visualizarse a través de métodos que incluyen la adición de un gen de fluorescencia como la proteína fluorescente verde en el casete viral o mediante inmunohistoquímica . [6] [7]
Virus de la pseudorrabia
El virus de la pseudorrabia , miembro de la familia de los herpesviridae , se propaga por el sistema nervioso central de forma retrógrada y anterógrada, ascendiendo por el axón neural hasta el soma y las dendritas en la aplicación retrógrada. La eliminación de tres genes clave de proteínas de membrana en la cepa PRV-Bartha de pseudorrabia bloquea la propagación anterógrada del virus y permite manipulaciones adicionales al ADN viral, como la fluorescencia, lo que permite el rastreo del circuito retrógrado. [8]
Fluoro-oro
El fluorooro, también conocido como hidroxiestilbamidina , es un trazador retrógrado fluorescente no viral cuyo movimiento hacia arriba del axón y a través del árbol dendrítico se puede visualizar mediante microscopía fluorescente o inmunohistoquímica. [9]
^ O'Donnell, P.; Lavín, A.; Enquist, LW; Grace, AA; Card, JP (1997). "Circuitos paralelos interconectados entre el núcleo accumbens y el tálamo de la rata revelados por el transporte transináptico retrógrado del virus de la pseudorrabia". Journal of Neuroscience . 17 (6): 2143–2167. doi : 10.1523/jneurosci.17-06-02143.1997 . PMC 6793770 . PMID 9045740.
^ Luo, AH; Aston-Jones, G. (2009). "Proyección de circuitos desde el núcleo supraquiasmático hasta el área tegmental ventral: una nueva vía de salida circadiana". Revista Europea de Neurociencia . 29 (4): 748–760. doi :10.1111/j.1460-9568.2008.06606.x. PMC 3649071 . PMID 19200068.
^ ab Davis, Benjamin M.; Rall, Glenn F.; Schnell, Matthias J. (6 de noviembre de 2015). "Todo lo que siempre quiso saber sobre el virus de la rabia (pero tenía miedo de preguntar)". Revisión anual de virología . 2 (1): 451–71. doi :10.1146/annurev-virology-100114-055157. PMC 6842493 . PMID 26958924.
^ Katz, LC; Burkhalter, A.; Dreyer, WJ (9 de agosto de 1984). "Microesferas de látex fluorescentes como marcador neuronal retrógrado para estudios in vivo e in vitro de la corteza visual". Nature . 310 (5977): 498–500. Bibcode :1984Natur.310..498K. doi :10.1038/310498a0. PMID 6205278. S2CID 36191957.
^ Wickersham IR, Lyon DC, Barnard RJ, et al. (marzo de 2007). "Restricción monosináptica del rastreo transsináptico a partir de neuronas individuales genéticamente dirigidas". Neuron . 53 (5): 639–47. doi :10.1016/j.neuron.2007.01.033. PMC 2629495 . PMID 17329205.
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^ Naumann, T.; Härtig, W.; Frotscher, M. (15 de noviembre de 2000). "Rastreo retrógrado con Fluoro-Gold: diferentes métodos de detección de trazadores a nivel ultraestructural y cambios neurodegenerativos de neuronas rellenadas en estudios a largo plazo". Journal of Neuroscience Methods . 103 (1): 11–21. doi :10.1016/s0165-0270(00)00292-2. ISSN 0165-0270. PMID 11074092. S2CID 24155326.
Lectura adicional
El rastreo retrógrado se ha utilizado ampliamente en una amplia gama de estudios de neurociencia, incluidos los siguientes ejemplos:
Song, Chenghui; Ehlers, Vanessa L.; Moyer, James R. (30 de septiembre de 2015). "El condicionamiento del miedo modula de forma diferencial la excitabilidad intrínseca de las neuronas de proyección de la corteza prefrontal medial y el complejo basolateral de la amígdala en las cortezas infralímbica y prelímbica". Journal of Neuroscience . 35 (39): 13511–13524. doi :10.1523/JNEUROSCI.2329-15.2015. ISSN 0270-6474. PMC 4588614 . PMID 26424895.
Bácskai, Tímea; Rusznák, Zoltán; Paxinos, George; Watson, Charles (1 de enero de 2014). "Organización musculotópica de las neuronas motoras que irrigan los músculos de las extremidades posteriores del ratón: un estudio cuantitativo utilizando el trazado retrógrado con fluoro-oro". Estructura y función cerebral . 219 (1): 303–321. doi :10.1007/s00429-012-0501-7. hdl : 20.500.11937/26565 . ISSN 1863-2653. PMID 23288256. S2CID 17675285.
Schwarz, Lindsay A.; Miyamichi, Kazunari; Gao, Xiaojing J.; Beier, Kevin T.; Weissbourd, Brandon; DeLoach, Katherine E.; Ren, Jing; Ibanes, Sandy; Malenka, Robert C. (2015). "Rastreo genético viral de la organización de entrada-salida de un circuito central de noradrenalina". Nature . 524 (7563): 88–92. Bibcode :2015Natur.524...88S. doi :10.1038/nature14600. PMC 4587569 . PMID 26131933.
Ohara, Shinya; Sato, Sho; Tsutsui, Ken-Ichiro; Witter, Menno P.; Iijima, Toshio (6 de noviembre de 2013). "Organización de las entradas multisinápticas al giro dentado dorsal y ventral: rastreo transsináptico retrógrado con el vector del virus de la rabia en la rata". PLOS ONE . 8 (11): e78928. Bibcode :2013PLoSO...878928O. doi : 10.1371/journal.pone.0078928 . ISSN 1932-6203. PMC 3819259 . PMID 24223172.
DeNardo, Laura A; Berns, Dominic S; DeLoach, Katherine; Luo, Liqun (2015). "Conectividad de la corteza somatosensorial y prefrontal del ratón examinada con rastreo transsináptico". Nature Neuroscience . 18 (11): 1687–1697. doi :10.1038/nn.4131. PMC 4624522 . PMID 26457553.