Radiación fotosintéticamente activa.

Rango de luz utilizable para la fotosíntesis.

La radiación fotosintéticamente activa (PAR) abarca la porción de luz visible del espectro electromagnético de 400 a 700 nanómetros.

La radiación fotosintéticamente activa ( PAR ) designa el rango espectral (banda de ondas) de la radiación solar de 400 a 700 nanómetros que los organismos fotosintéticos pueden utilizar en el proceso de fotosíntesis . Esta región espectral se corresponde más o menos con el rango de luz visible para el ojo humano. Los fotones en longitudes de onda más cortas tienden a ser tan energéticos que pueden dañar las células y los tejidos, pero en su mayoría son filtrados por la capa de ozono en la estratosfera . Los fotones de longitudes de onda más largas no transportan suficiente energía para permitir que se lleve a cabo la fotosíntesis.

Otros organismos vivos, como las cianobacterias , las bacterias violetas y las heliobacterias , pueden aprovechar la luz solar en regiones espectrales ligeramente extendidas, como el infrarrojo cercano . Estas bacterias viven en ambientes como el fondo de estanques estancados, sedimentos y profundidades del océano. Debido a sus pigmentos , forman alfombras coloridas de verde, rojo y morado.

Arriba: espectros de absorción de clorofila A, clorofila B y carotenoides extraídos en una solución. Abajo: espectro de acción PAR (evolución de oxígeno por fotón incidente) de un cloroplasto aislado.

La clorofila , el pigmento vegetal más abundante, es más eficaz para capturar la luz roja y azul. Los pigmentos accesorios , como los carotenos y las xantofilas, recogen algo de luz verde y la transmiten al proceso fotosintético, pero se reflejan suficientes longitudes de onda verdes para dar a las hojas su color característico. Una excepción al predominio de la clorofila es el otoño, cuando la clorofila se degrada (porque contiene N y Mg ) pero los pigmentos accesorios no (porque sólo contienen C , H y O ) y permanecen en la hoja produciendo rojo, amarillo y naranja. hojas.

En las plantas terrestres, las hojas absorben principalmente luz roja y azul en la primera capa de células fotosintéticas debido a la absorbancia de la clorofila . La luz verde, sin embargo, penetra más profundamente en el interior de la hoja y puede impulsar la fotosíntesis de manera más eficiente que la luz roja. ^{[1] [2]} Debido a que las longitudes de onda verdes y amarillas pueden transmitirse a través de la clorofila y de toda la hoja, desempeñan un papel crucial en el crecimiento debajo del dosel de la planta. ^[3]

La medición PAR se utiliza en agricultura, silvicultura y oceanografía. Uno de los requisitos para las tierras agrícolas productivas es una PAR adecuada, por lo que la PAR se utiliza para evaluar el potencial de inversión agrícola. Los sensores PAR colocados en varios niveles del dosel del bosque miden el patrón de disponibilidad y utilización de PAR. La tasa fotosintética y los parámetros relacionados se pueden medir de forma no destructiva utilizando un sistema de fotosíntesis , y estos instrumentos miden la PAR y, en ocasiones, controlan la PAR a intensidades establecidas. Las mediciones de PAR también se utilizan para calcular la profundidad eufótica en el océano.

En estos contextos, la razón por la que se prefiere PAR a otras métricas de iluminación, como el flujo luminoso y la iluminancia, es que estas medidas se basan en la percepción humana del brillo , que tiene un fuerte sesgo verde y no describe con precisión la cantidad de luz utilizable para la fotosíntesis.

Unidades

Al medir la irradiancia de PAR, los valores se expresan utilizando unidades de energía (W/m ² ), lo cual es relevante en las consideraciones de equilibrio energético de los organismos fotosintéticos . ^[4]

Sin embargo, la fotosíntesis es un proceso cuántico y las reacciones químicas de la fotosíntesis dependen más del número de fotones que de la energía contenida en los fotones. Por lo tanto, los biólogos vegetales a menudo cuantifican la PAR utilizando la cantidad de fotones en el rango de 400 a 700 nm recibidos por una superficie durante un período de tiempo específico, o la densidad de flujo de fotones fotosintéticos (PPFD). ^[4] Los valores de PPFD normalmente se expresan usando unidades de mol⋅m ⁻² ⋅s ⁻¹ . En relación con el crecimiento y la morfología de las plantas, es mejor caracterizar la disponibilidad de luz para las plantas mediante la Integral de Luz Diaria (DLI), que es el flujo diario de fotones por área de suelo, e incluye tanto la variación diurna como la variación en Dia largo. ^[5]

La PPFD solía expresarse en ocasiones utilizando unidades de Einstein , es decir, μE⋅m ⁻² ⋅s ⁻¹ , ^[6] aunque este uso no es estándar y ya no se utiliza. ^[7]

Eficiencia de las luminarias

Flujo de fotones de rendimiento

Factor de ponderación para la fotosíntesis. La curva ponderada por fotones sirve para convertir PPF a YPF; la curva ponderada por energía es para ponderar PAR expresado en vatios o julios.

Hay dos medidas comunes de radiación fotosintéticamente activa: flujo de fotones fotosintéticos (PPF) y flujo de fotones de rendimiento (YPF). PPF valora todos los fotones de 400 a 700 nm por igual, mientras que YPF pondera los fotones en el rango de 360 ​​a 760 nm según la respuesta fotosintética de una planta. ^[8]

PAR, como se describe con PPF, no distingue entre diferentes longitudes de onda entre 400 y 700 nm y supone que las longitudes de onda fuera de este rango tienen acción fotosintética cero. Si se conoce el espectro exacto de la luz, los valores de densidad de flujo de fotones fotosintéticos (PPFD) en μmol⋅s ⁻¹ ⋅m ⁻² ) se pueden modificar aplicando diferentes factores de ponderación a diferentes longitudes de onda. Esto da como resultado una cantidad llamada flujo de fotones de rendimiento (YPF). ^[8] La curva roja en el gráfico muestra que los fotones alrededor de 610 nm (rojo anaranjado) tienen la mayor cantidad de fotosíntesis por fotón. Sin embargo, debido a que los fotones de longitud de onda corta transportan más energía por fotón, la cantidad máxima de fotosíntesis por unidad de energía incidente se produce en una longitud de onda más larga, alrededor de 650 nm (rojo intenso).

Se ha observado que existe un considerable malentendido sobre el efecto de la calidad de la luz en el crecimiento de las plantas. Muchos fabricantes afirman que el crecimiento de las plantas ha aumentado significativamente debido a la calidad de la luz (alto YPF). La curva YPF indica que los fotones naranjas y rojos entre 600 y 630 nm pueden producir entre un 20 y un 30% más de fotosíntesis que los fotones azules o cian entre 400 y 540 nm. ^{[9] [10]} Pero la curva YPF se desarrolló a partir de mediciones a corto plazo realizadas en hojas individuales con poca luz. Estudios más recientes a largo plazo con plantas enteras en condiciones de mayor iluminación indican que la calidad de la luz puede tener un efecto menor en la tasa de crecimiento de las plantas que la cantidad de luz. La luz azul, aunque no emite tantos fotones por julio, estimula el crecimiento de las hojas y afecta otros resultados. ^{[9] [11]}

La conversión entre PAR basado en energía y PAR basado en fotones depende del espectro de la fuente de luz (ver Eficiencia fotosintética ). La siguiente tabla muestra los factores de conversión de vatios para espectros de cuerpo negro truncados al rango de 400 a 700 nm. También muestra la eficacia luminosa de estas fuentes de luz y la fracción de un radiador de cuerpo negro real que se emite como PAR.

Por ejemplo, una fuente de luz de 1000 lm con una temperatura de color de 5800 K emitiría aproximadamente 1000/265 = 3,8 W de PAR, lo que equivale a 3,8 × 4,56 = 17,3 μmol/s. Para una fuente de luz de cuerpo negro a 5800 K, como lo es aproximadamente el sol, una fracción de 0,368 de su radiación total emitida se emite como PAR. Para las fuentes de luz artificial, que normalmente no tienen un espectro de cuerpo negro, estos factores de conversión son sólo aproximados.

Las cantidades en la tabla se calculan como

${\displaystyle \eta _{v}(T)={\frac {\int _{\lambda _{1}}^{\lambda _{2}}B(\lambda ,T)\,683\mathrm {~[lm/W]} \,y(\lambda )\,d\lambda }{\int _{\lambda _{1}}^{\lambda _{2}}B(\lambda ,T)\,d\lambda }},}$

${\displaystyle \eta _{\mathrm {photon} }(T)={\frac {\int _{\lambda _{1}}^{\lambda _{2}}B(\lambda ,T)\,{\frac {\lambda }{hcN_{\text{A}}}}\,d\lambda }{\int _{\lambda _{1}}^{\lambda _{2}}B(\lambda ,T)\,d\lambda }},}$

${\displaystyle \eta _{\mathrm {PAR} }(T)={\frac {\int _{\lambda _{1}}^{\lambda _{2}}B(\lambda ,T)\,d\lambda }{\int _{0}^{\infty }B(\lambda ,T)\,d\lambda }},}$

donde es el espectro del cuerpo negro según la ley de Planck , es la función de luminosidad estándar , representa el rango de longitud de onda (400–700 nm) de PAR y es la constante de Avogadro . ${\displaystyle B(\lambda ,T)}$ ${\displaystyle y}$ ${\displaystyle \lambda _{1},\lambda _{2}}$ ${\displaystyle N_{\text{A}}}$

Eficiencia PAR de la segunda ley

Además de la cantidad de radiación que llega a una planta en la región PAR del espectro, también es importante considerar la calidad de dicha radiación. La radiación que llega a una planta contiene entropía además de energía, y combinando esos dos conceptos se puede determinar la exergía. Este tipo de análisis se conoce como análisis de exergía o análisis de segunda ley, y la exergía representa una medida del trabajo útil, es decir, la parte útil de la radiación que puede transformarse en otras formas de energía.

La distribución espectral de la exergía de la radiación se define como: ^[12]

${\displaystyle Ex_{\lambda }=L_{\lambda }(T)-L_{\lambda }(T_{0})-T_{0}[S_{\lambda }(T)-S_{\lambda }(T_{0})]}$

Una de las ventajas de trabajar con la exergía es que depende no sólo de la temperatura del emisor (el Sol), sino también de la temperatura del cuerpo receptor (la planta), es decir, incluye el hecho de que la exergía La planta está emitiendo radiación. Nombrando y , el poder emisor de exergía de la radiación en una región se determina como: ${\displaystyle T}$ ${\displaystyle T_{0}}$ ${\displaystyle x={\frac {hc}{\lambda kT}}}$ ${\displaystyle y={\frac {hc}{\lambda kT_{0}}}}$

${\displaystyle \int _{0}^{\lambda _{i}}Ex(\lambda ,T)d\lambda =\Im _{Ex_{0\rightarrow \lambda _{i}}}={\frac {15}{\pi ^{4}}}\sigma \left\{T^{3}\left[(T-T_{0})x^{3}\mathrm {Li} _{1}(e^{-x})+(3T-4T_{0})x^{2}\mathrm {Li} _{2}(e^{-x})\right.\right.}$

${\displaystyle +\left.(6T-8T_{0})x\mathrm {Li} _{3}(e^{-x})+(6T-8T_{0})\mathrm {Li} _{4}(e^{-x})\right]}$

${\displaystyle +\left.T_{0}^{4}\left[y^{2}\mathrm {Li} _{2}(e^{-y})+2y\mathrm {Li} _{3}(e^{-y})+2\mathrm {Li} _{4}(e^{-y})\right]\right\}}$

Donde hay una función especial llamada polilogaritmo . Por definición, la exergía obtenida por el cuerpo receptor es siempre inferior a la energía irradiada por el cuerpo negro emisor, como consecuencia del contenido de entropía en la radiación. Así, como consecuencia del contenido de entropía, no toda la radiación que llega a la superficie terrestre es "útil" para producir trabajo. Por lo tanto, la eficiencia de un proceso que involucra radiación debe medirse en función de su exergía, no de su energía. ${\displaystyle \mathrm {Li} _{s}(z)}$

Usando la expresión anterior, la eficiencia óptima o eficiencia de la segunda ley para la conversión de radiación en trabajo en la región PAR ^[13] (de 400 nm a 700 nm), para un cuerpo negro a = 5800 K y un organismo a = 300 K es determinado como: ${\displaystyle \lambda _{1}=}$ ${\displaystyle \lambda _{2}=}$ ${\displaystyle T}$ ${\displaystyle T_{0}}$

${\displaystyle \eta _{\text{PAR}}^{ex}(T)={\frac {\int _{\lambda _{1}}^{\lambda _{2}}Ex(\lambda ,T)d\lambda }{\int _{0}^{\infty }L(\lambda ,T)d\lambda }}=0.337563}$

alrededor de un 8,3% inferior al valor considerado hasta ahora, como consecuencia directa de que los organismos que utilizan la radiación solar también emiten radiación como consecuencia de su propia temperatura. Por tanto, el factor de conversión del organismo será diferente en función de su temperatura, siendo más adecuado el concepto de exergía que el de energía.

Medición

Investigadores de la Universidad Estatal de Utah compararon mediciones de PPF e YPF utilizando diferentes tipos de equipos. Midieron el PPF y el YPF de siete fuentes de radiación comunes con un espectrorradiómetro, luego los compararon con las mediciones de seis sensores cuánticos diseñados para medir el PPF y tres sensores cuánticos diseñados para medir el YPF.

Descubrieron que los sensores PPF e YPF eran los menos precisos para fuentes de banda estrecha (espectro de luz estrecho) y los más precisos para fuentes de banda ancha (espectros de luz más completos). Descubrieron que los sensores PPF eran significativamente más precisos bajo lámparas de halogenuros metálicos, sodio de baja presión y sodio de alta presión que los sensores YPF (diferencia >9%). Tanto los sensores YPF como los PPF fueron muy inexactos (>18% de error) cuando se usaron para medir la luz de diodos emisores de luz roja. ^[8]

Medida similar

Radiación fotobiológicamente activa (PBAR)

La radiación fotobiológicamente activa (PBAR) es un rango de energía luminosa que va más allá e incluye a la PAR. El flujo de fotones fotobiológicos (PBF) es la métrica utilizada para medir PBAR.

sociedad y Cultura

Publicidad falsa

A muchas luces de cultivo a menudo les falta un informe de prueba de esfera integradora, lo que significa que el fabricante adivina valores como el flujo de fotones fotosintéticos (PPF). ^{[ cita necesaria ]} Además, la publicidad falsa de los valores de eficacia de los fotones fotosintéticos (PPE) (flujo de fotones fotosintéticos (PPF) μmol/W) de los fabricantes de luces de cultivo se puede evitar simplemente controlando y calculando el valor. Además, algunos fabricantes indican el valor de densidad de flujo de fotones fotosintéticos (PPFD) del diodo emisor de luz (LED) central en lugar de la PPF en el área de un metro cuadrado. ^{[ cita necesaria ]}

Ver también

• Espectro de acción
• Luz diaria integral
• Absorción electromagnética por el agua.

Referencias

1. Sol, Jindong; Nishio, John N.; Vogelmann, Thomas C. (5 de diciembre de 1997). "La luz verde impulsa la fijación de CO2 en lo profundo de las hojas". JSPP. {{cite journal}}: El diario de citas requiere |journal=( ayuda ) ^{[ enlace muerto ]}
2. Terashima, Ichiro; Fukita, Takashi; Inoue, tomashi; Chow, Wah pronto; Oguchi, Riichi (4 de enero de 2009). "La luz verde impulsa la fotosíntesis de las hojas de manera más eficiente que la luz roja con luz blanca intensa: revisando la enigmática cuestión de por qué las hojas son verdes". JSPP. Archivado desde el original el 23 de junio de 2012. {{cite journal}}: Citar diario requiere |journal=( ayuda )
3. Ptushenko, VV; Avecheva, OV; Bassarskaya, EM (9 de agosto de 2015). "Posibles razones de una disminución en el crecimiento de la col china bajo una luz combinada roja y azul de banda estrecha en comparación con la iluminación con una lámpara de sodio de alta presión". Scientia Horticulturae . 194 : 267–277. doi :10.1016/j.scienta.2015.08.021.
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5. Más pobre, Hendrik; Niinemets, Ülo; Ntagkas, Nikolaos; Siebenkäs, Alrun; Mäenpää, Maarit; Matsubara, Shizue; Pons, Thijs L. (8 de abril de 2019). "Un metanálisis de las respuestas de las plantas a la intensidad de la luz para 70 rasgos que van desde moléculas hasta el rendimiento de toda la planta". Nuevo fitólogo . 223 (3): 1073-1105. doi : 10.1111/nph.15754 . PMID  30802971.
6. Instalador, Alastair H.; Hay, Robert KM (2 de diciembre de 2012). Fisiología ambiental de las plantas. Prensa académica. pag. 26.ISBN​ 9780080549811.
7. Incoll, LD, SP Long y MA Ashmore. 1981. "Unidades SI en publicaciones sobre ciencia vegetal". Comentarios en ciencia vegetal. 2: págs. 83–96.
8. Barnes, C.; Tibbitts, T.; Sager, J.; Deitzer, G.; Bubenheim, D.; Koerner, G.; Bugbee, B. (1993). "Precisión de los sensores cuánticos que miden el flujo de fotones de rendimiento y el flujo de fotones fotosintéticos". HortScience . 28 (12): 1197-1200. doi : 10.21273/HORTSCI.28.12.1197 . ISSN  0018-5345. PMID  11537894.
9. Nelson, Jacob A.; Bugbee, Bruce (6 de junio de 2014). "Análisis económico de la iluminación de invernaderos: diodos emisores de luz frente a accesorios de descarga de alta intensidad". MÁS UNO . 9 (6): e99010. Código Bib : 2014PLoSO...999010N. doi : 10.1371/journal.pone.0099010 . PMC 4048233 . PMID  24905835. 
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11. Hacer frente, Kevin R.; Snowden, M. Chase; Bugbee, Bruce (1 de mayo de 2014). "Interacciones fotobiológicas de la luz azul y el flujo de fotones fotosintéticos: efectos de fuentes de luz monocromáticas y de amplio espectro". Fotoquímica y Fotobiología . 90 (3): 574–584. doi : 10.1111/php.12233 . ISSN  1751-1097. PMID  24372324. S2CID  40541340.
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13. Delgado-Bonal, Alfonso (10 de mayo de 2017). "Entropía de la radiación: el lado invisible de la luz". Informes científicos . 7 (1642): 1642. Código bibliográfico : 2017NatSR...7.1642D. doi :10.1038/s41598-017-01622-6. PMC 5432030 . PMID  28490790. 

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• McCree, Keith J (1972a). "El espectro de acción, absorbancia y rendimiento cuántico de la fotosíntesis en plantas de cultivo". Meteorología Agrícola y Forestal . 9 : 191–216. Código Bib : 1971AgMet...9..191M. doi :10.1016/0002-1571(71)90022-7.
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• McCree, Keith J. (1981). "Radiación fotosintéticamente activa". En: Enciclopedia de fisiología vegetal, vol. 12A . Springer-Verlag, Berlín, págs. 41–55.

enlaces externos

• El proceso fotosintético
• Comparación de sensores cuánticos (PAR) con diferentes sensibilidades espectrales