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Isopropil β-D-1-tiogalactopiranósido

El isopropil β- d -1-tiogalactopiranósido ( IPTG ) es un reactivo de biología molecular . Este compuesto es un imitador molecular de la alolactosa , un metabolito de la lactosa que desencadena la transcripción del operón lac , y por lo tanto se utiliza para inducir la expresión de proteínas donde el gen está bajo el control del operador lac .

Mecanismo de acción

Al igual que la alolactosa, el IPTG se une al represor lac y libera el represor tetramérico del operador lac de manera alostérica , lo que permite la transcripción de genes en el operón lac, como el gen que codifica la beta-galactosidasa , una enzima hidrolasa que cataliza la hidrólisis de los β-galactósidos en monosacáridos. Pero a diferencia de la alolactosa, el átomo de azufre ( S ) crea un enlace químico que no es hidrolizable por la célula, lo que evita que la célula metabolice o degrade el inductor . Por lo tanto, su concentración permanece constante durante un experimento.

La captación de IPTG por E. coli puede ser independiente de la acción de la permeasa de lactosa , ya que también intervienen otras vías de transporte. [1] En concentraciones bajas, el IPTG entra en las células a través de la permeasa de lactosa, pero en concentraciones altas (normalmente utilizadas para la inducción de proteínas), el IPTG puede entrar en las células independientemente de la permeasa de lactosa. [2]

Uso en laboratorio

Cuando se almacena en forma de polvo a 4 °C o menos, el IPTG es estable durante 5 años. Es significativamente menos estable en solución; Sigma recomienda almacenarlo durante no más de un mes a temperatura ambiente. [3] El IPTG es un inductor eficaz de la expresión de proteínas en el rango de concentración de 100 μmol/L a 3,0 mmol/L. Normalmente, se añade una solución estéril filtrada de 1 mol/L de IPTG en una proporción de 1:1000 a un cultivo bacteriano de crecimiento exponencial, para obtener una concentración final de 1 mmol/L. La concentración utilizada depende de la fuerza de inducción requerida, así como del genotipo de células o plásmido utilizado. Si está presente lacI q , un mutante que sobreproduce el represor lac, puede ser necesaria una concentración más alta de IPTG. [4]

En la prueba de cribado azul-blanco , se utiliza IPTG junto con X-gal . La prueba de cribado azul-blanco permite identificar colonias que han sido transformadas con el plásmido recombinante en lugar de uno no recombinante en experimentos de clonación. [ cita requerida ] [5]

Referencias

  1. ^ Hansen LH, Knudsen S, Sørensen SJ (junio de 1998). "El efecto del gen lacY en la inducción de promotores inducibles por IPTG, estudiado en Escherichia coli y Pseudomonas fluorescens". Curr. Microbiol . 36 (6): 341–7. doi :10.1007/s002849900320. PMID  9608745. S2CID  22257399. Archivado desde el original el 18 de octubre de 2000.
  2. ^ Marbach A, Bettenbrock K (2012). "Inducción del operón lac en Escherichia coli: Comparación sistemática de la inducción de IPTG y TMG e influencia de la transacetilasa LacA". Revista de biotecnología . 157 (1): 82–8. doi :10.1016/j.jbiotec.2011.10.009. PMID  22079752.
  3. ^ https://www.sigmaaldrich.com/content/dam/sigma-aldrich/docs/Sigma-Aldrich/Product_Information_Sheet/i5502pis.pdf [ enlace roto ]
  4. ^ Células competentes BL21(DE3), células competentes BL21 (DE3)pLysS y manual de instrucciones de células competentes BL21 (revisión n.° 066004e ed.). La Jolla, CA: Stratagene. 2006. pág. 7.
  5. ^ https://www.agilent.com/Library/usermanuals/Public/200521.pdf [ URL básica PDF ]

Enlaces externos