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ATPasa

Trifosfato de adenosina
Difosfato de adenosina
Monofosfato de adenosina

ATPasas ( EC 3.6.1.3, A denosina 5'- Trifosfatasa , adenilpirofosfatasa , ATP monofosfatasa, trifosfatasa, antígeno T SV40, ATP hidrolasa, complejo V (transporte de electrones mitocondriales), ( Ca 2+ + Mg 2+ ) -ATPasa, HCO 3 -ATPasa, adenosina trifosfatasa) son una clase de enzimas que catalizan la descomposición de ATP en ADP y un ion fosfato libre [1] [2] [3] [4] [5] [6] o la reacción inversa. Esta reacción de desfosforilación libera energía , que la enzima (en la mayoría de los casos) aprovecha para impulsar otras reacciones químicas que de otro modo no ocurrirían. Este proceso es ampliamente utilizado en todas las formas de vida conocidas .

Algunas de estas enzimas son proteínas de membrana integrales (ancladas dentro de membranas biológicas ) y mueven solutos a través de la membrana, generalmente en contra de su gradiente de concentración. Se denominan ATPasas transmembrana.

Funciones

Na + /K + ATPasa

Las ATPasas transmembrana importan metabolitos necesarios para el metabolismo celular y exportan toxinas, desechos y solutos que pueden obstaculizar los procesos celulares. Un ejemplo importante es la bomba de sodio-potasio (Na + /K + ATPasa) que mantiene el potencial de membrana celular . Otro ejemplo es la hidrogenopotasio ATPasa (H + /K + ATPasa o bomba de protones gástrica) que acidifica el contenido del estómago. La ATPasa está genéticamente conservada en los animales; por lo tanto, los cardenólidos , que son esteroides tóxicos producidos por plantas que actúan sobre las ATPasas, producen toxinas animales generales y efectivas que actúan de manera dependiente de la dosis. [7]

Además de los intercambiadores, otras categorías de ATPasa transmembrana incluyen cotransportadores y bombas (sin embargo, algunos intercambiadores también son bombas). Algunos de ellos, como la Na + /K + ATPasa, provocan un flujo neto de carga, pero otros no. Estos se denominan transportadores electrogénicos y transportadores electroneutros, respectivamente. [8]

"La adenosina trifosfatasa transportadora de cobre unida a la membrana (Cu-ATPasa), que une selectivamente iones de cobre, transporta iones de cobre dentro y fuera de las células (Harris et al. 1998)". Fuente: https://www.atsdr.cdc.gov/ToxProfiles/tp132.pdf pág. 73

Estructura

Los motivos de Walker son un motivo de secuencia de proteínas revelador de la unión e hidrólisis de nucleótidos. Más allá de esta amplia función, los motivos de Walker se pueden encontrar en casi todas las ATPasas naturales, con la notable excepción de las tirosina quinasas . [9] Los motivos de Walker comúnmente forman una hoja Beta -convertida en hélice Alfa- que se autoorganiza como un Nido (motivo estructural proteico) . Se cree que esto se debe a que las ATPasas modernas evolucionaron a partir de pequeños péptidos de unión a NTP que tenían que autoorganizarse. [10]

El diseño de proteínas ha podido replicar la función de la ATPasa (débilmente) sin utilizar secuencias o estructuras de ATPasa naturales. Es importante destacar que, si bien todas las ATPasas naturales tienen alguna estructura de hoja beta, la "ATPasa alternativa" diseñada carece de estructura de hoja beta, lo que demuestra que esta función esencial para la vida es posible con secuencias y estructuras que no se encuentran en la naturaleza. [11]

Mecanismo

La ATPasa (también llamada F 0 F 1 -ATP Sintasa) es un complejo de transferencia de carga que cataliza el ATP para realizar la síntesis de ATP moviendo iones a través de la membrana. [12]

El acoplamiento de la hidrólisis y el transporte de ATP es una reacción química en la que se transporta un número fijo de moléculas de soluto por cada molécula de ATP hidrolizada; para el intercambiador Na + /K + , son tres iones Na + fuera de la célula y dos iones K+ dentro por cada molécula de ATP hidrolizada.

Las ATPasas transmembrana utilizan la energía potencial química del ATP realizando trabajo mecánico: transportan solutos en la dirección opuesta a su dirección de movimiento termodinámicamente preferida, es decir, desde el lado de la membrana con baja concentración hacia el lado con alta concentración. Este proceso se conoce como transporte activo .

Por ejemplo, la inhibición de las H + -ATPasas vesiculares daría como resultado un aumento del pH dentro de las vesículas y una caída del pH del citoplasma.

Todas las ATPasas comparten una estructura básica común. Cada ATPasa rotatoria se compone de dos componentes principales: F 0 /A 0 /V 0 y F 1 /A 1 /V 1 . Están conectados por 1 a 3 tallos para mantener la estabilidad, controlar la rotación y evitar que giren en la otra dirección. Se utiliza un tallo para transmitir el par. [13] El número de tallos periféricos depende del tipo de ATPasa: las F-ATPasas tienen uno, las A-ATPasas tienen dos y las V-ATPasas tienen tres. El dominio catalítico F 1 está ubicado en el lado N de la membrana y participa en la síntesis y degradación de ATP y participa en la fosforilación oxidativa . El dominio transmembrana F 0 participa en el movimiento de iones a través de la membrana. [12]

La F 0 F 1 -ATPasa bacteriana consta del dominio F 1 soluble y el dominio F 0 transmembrana , que se compone de varias subunidades con estequiometría variable. Hay dos subunidades, γ y ε, que forman el tallo central y están vinculadas a F 0 . F 0 contiene un oligómero de la subunidad c en forma de anillo (anillo c). La subunidad α está cerca de la subunidad b 2 y forma el tallo que conecta las subunidades transmembrana con las subunidades α3β3 y δ. Las F-ATP sintasas son idénticas en apariencia y función, excepto la F 0 F 1 -ATP sintasa mitocondrial, que contiene de 7 a 9 subunidades adicionales. [12]

El potencial electroquímico es lo que hace que el anillo C gire en el sentido de las agujas del reloj para la síntesis de ATP. Esto hace que el tallo central y el dominio catalítico cambien de forma. Al girar el anillo C se producen tres moléculas de ATP, lo que luego hace que H + se mueva del lado P de la membrana al lado N de la membrana. La rotación en sentido antihorario del anillo C es impulsada por la hidrólisis del ATP y los iones se mueven del lado N al lado P, lo que ayuda a generar potencial electroquímico. [12]

ATP sintasas transmembrana

La ATP sintasa de mitocondrias y cloroplastos es una enzima anabólica que aprovecha la energía de un gradiente de protones transmembrana como fuente de energía para agregar un grupo fosfato inorgánico a una molécula de difosfato de adenosina (ADP) para formar una molécula de trifosfato de adenosina (ATP).

Esta enzima funciona cuando un protón desciende en el gradiente de concentración, lo que le da a la enzima un movimiento giratorio. Este movimiento giratorio único une ADP y P para crear ATP.

La ATP sintasa también puede funcionar a la inversa, es decir, utilizar la energía liberada por la hidrólisis del ATP para bombear protones contra su gradiente electroquímico.

Clasificación

Hay diferentes tipos de ATPasas, que pueden diferir en función (síntesis y/o hidrólisis de ATP), estructura (las ATPasas F, V y A contienen motores rotativos) y en el tipo de iones que transportan.

P-ATPasa

Las P-ATPasas (a veces conocidas como ATPasas E1-E2) se encuentran en bacterias y también en membranas plasmáticas y orgánulos de eucariotas. Su nombre se debe a la unión breve del fosfato inorgánico a los residuos de aspartato en el momento de la activación. La función de la P-ATPasa es transportar una variedad de compuestos diferentes, como iones y fosfolípidos, a través de una membrana utilizando la hidrólisis de ATP para obtener energía. Hay muchas clases diferentes de P-ATPasas, que transportan un tipo específico de ion. Las P-ATPasas pueden estar compuestas por uno o dos polipéptidos y normalmente pueden adoptar dos conformaciones principales, E1 y E2.

genes humanos

Ver también

Referencias

  1. ^ Geider K, Hoffmann-Berling H (1981). "Proteínas que controlan la estructura helicoidal del ADN". Revista Anual de Bioquímica . 50 : 233–60. doi : 10.1146/annurev.bi.50.070181.001313. PMID  6267987.
  2. ^ Kielley WW (1961). "Miosina adenosina trifosfatasa". En Boyer PD, Lardy H, Myrbäck K (eds.). Las enzimas . vol. 5 (2ª ed.). Nueva York: Academic Press. págs. 159-168.
  3. ^ Martin SS, Senior AE (noviembre de 1980). "Actividades de la adenosina trifosfatasa de membrana en páncreas de rata". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biomembranas . 602 (2): 401–18. doi :10.1016/0005-2736(80)90320-x. PMID  6252965.
  4. ^ Njus D, Knoth J, Zallakian M (1981). "Transporte ligado a protones en gránulos cromafines". Temas actuales en bioenergética . 11 : 107-147. doi :10.1016/B978-0-12-152511-8.50010-4.
  5. ^ Riley MV, Peters MI (junio de 1981). "La localización de la actividad ATPasa sensible a aniones en el endotelio corneal". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biomembranas . 644 (2): 251–6. doi :10.1016/0005-2736(81)90382-5. PMID  6114746.
  6. ^ Tjian R (1981). "Regulación de la transcripción viral y replicación del ADN por el antígeno T grande SV40". Temas actuales en microbiología e inmunología . 93 : 5–24. doi :10.1007/978-3-642-68123-3_2. ISBN 978-3-642-68125-7. PMID  6269805.
  7. ^ Dobler S, Dalla S, Wagschal V, Agrawal AA (agosto de 2012). "Evolución convergente a nivel comunitario en la adaptación de los insectos a cardenólidos tóxicos mediante sustituciones en la Na, K-ATPasa". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 109 (32): 13040–5. doi : 10.1073/pnas.1202111109 . PMC 3420205 . PMID  22826239. 
  8. ^ "3.2: Transporte en membranas". Biología LibreTexts . 21 de enero de 2017 . Consultado el 28 de julio de 2022 .
  9. ^ Walker JE, Saraste M, Runswick MJ, Gay Nueva Jersey (1982). "Secuencias lejanamente relacionadas en las subunidades alfa y beta de la ATP sintasa, miosina, quinasas y otras enzimas que requieren ATP y un pliegue de unión de nucleótidos común". EMBO J. 1 (8): 945–51. doi :10.1002/j.1460-2075.1982.tb01276.x. PMC 553140 . PMID  6329717. 
  10. ^ Romero Romero ML, Yang F, Lin YR, Toth-Petroczy A, Berezovsky IN, Goncearenco A, et al. (Diciembre de 2018). "Proteínas de bucle de fosfato simples pero funcionales". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 115 (51): E11943–E11950. doi : 10.1073/pnas.1812400115 . PMC 6304952 . PMID  30504143. 
  11. ^ Wang M, Hecht MH (agosto de 2020). "Una ATPasa completamente de novo del diseño combinatorio de proteínas". Revista de la Sociedad Química Estadounidense . 142 (36): 15230–15234. doi :10.1021/jacs.0c02954. PMID  32833456.
  12. ^ abcd Calisto F, Sousa FM, Sena FV, Refojo PN, Pereira MM (febrero de 2021). "Mecanismos de transducción de energía mediante proteínas de membrana que translocan carga". Reseñas químicas . 121 (3): 1804–1844. doi : 10.1021/acs.chemrev.0c00830 . PMID  33398986.
  13. ^ Hahn A, Parey K, Bublitz M, Mills DJ, Zickermann V, Vonck J, et al. (Agosto de 2016). "La estructura de un dímero de ATP sintasa completo revela la base molecular de la morfología de la membrana mitocondrial interna". Célula molecular . 63 (3): 445–456. doi : 10.1016/j.molcel.2016.05.037 . PMC 4980432 . PMID  27373333. 
  14. ^ Stewart AG, Laming EM, Sobti M, Stock D (abril de 2014). "ATPasas rotativas: máquinas moleculares dinámicas". Opinión actual en biología estructural . 25 : 40–8. doi : 10.1016/j.sbi.2013.11.013 . PMID  24878343.
  15. ^ Kühlbrandt W, Davies KM (enero de 2016). "ATPasas rotativas: un nuevo giro a una máquina antigua". Tendencias en Ciencias Bioquímicas . 41 (1): 106–116. doi :10.1016/j.tibs.2015.10.006. PMID  26671611.
  16. ^ Watanabe R, Noji H (abril de 2013). "Mecanismo de acoplamiento quimiomecánico de F (1) -ATPasa: catálisis y generación de par". Cartas FEBS . 587 (8): 1030-1035. doi :10.1016/j.febslet.2013.01.063. PMID  23395605.
  17. ^ Dibrova DV, Galperin MY, Mulkidjanian AY (junio de 2010). "Caracterización de la N-ATPasa, una forma distintiva de translocación de Na + transferida lateralmente de la ATPasa de membrana bacteriana tipo F". Bioinformática . 26 (12): 1473-1476. doi : 10.1093/bioinformática/btq234 . PMC 2881411 . PMID  20472544. 
  18. ^ Knowles AF (marzo de 2011). "La superfamilia GDA1_CD39: NTPDases con diversas funciones". Señalización purinérgica . 7 (1): 21–45. doi :10.1007/s11302-010-9214-7. PMC 3083126 . PMID  21484095. 

enlaces externos