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Cultivo de embriones

El cultivo de embriones es un componente de la fertilización in vitro en el que se permite que los embriones resultantes crezcan durante algún tiempo en un medio artificial.

Duración

La duración del cultivo de embriones puede variar, lo que confiere diferentes etapas de embriogénesis a la transferencia de embriones . Las principales etapas en las que se realiza la transferencia de embriones son la etapa de división (día 2 a 4 después de la co-incubación ) o la etapa de blastocisto (día 5 o 6 después de la co-incubación ). [1]

Los embriones que alcanzan el día 3 de la etapa celular pueden ser sometidos a pruebas de detección de defectos cromosómicos o genéticos específicos antes de su posible transferencia mediante diagnóstico genético preimplantacional (DGP). El cultivo de embriones hasta la etapa de blastocisto confiere un aumento significativo en la tasa de nacidos vivos por transferencia de embriones , y no hay evidencia de una diferencia entre los grupos en las tasas acumuladas de embarazo. [2] La transferencia el día 2 en lugar del día 3 después de la fertilización no presenta diferencias en la tasa de nacidos vivos . [3]

La gemelaridad monocigótica no aumenta después de la transferencia de blastocisto en comparación con la transferencia de embriones en etapa de segmentación . [4]

Existen probabilidades significativamente mayores de parto prematuro ( odds ratio 1,3) y anomalías congénitas ( odds ratio 1,3) entre los nacimientos de embriones cultivados hasta la etapa de blastocisto en comparación con la etapa de segmentación. [1]

Características de un cultivo embrionario óptimo

Lo primero que hay que tener en cuenta son las condiciones de oxígeno y dióxido de carbono, ya que deben ser lo más parecidas posibles a las del útero. Es por ello que el oxígeno tiene que estar al 5% y el dióxido de carbono al 6% (dependiendo de la altitud). Por otro lado, la temperatura debe estar fijada en 37 grados. Además, los niveles de pH deben estar entre 7,2 y 7,5.

En cuanto a la incubadora, los técnicos deben colocar un paciente por incubadora y evitar abrir la puerta con frecuencia. Teniendo en cuenta la cantidad de embriones que se utilizan en el cultivo, se recomienda el cultivo de embriones en grupo, de manera que puedan intercambiar factores de crecimiento y se ahorre tiempo en el laboratorio, pero la fusión de embriones es un inconveniente que se debe tener en cuenta, de hecho, después del día cinco es más probable que se produzca la fusión de embriones.

Técnicas

El cultivo de embriones puede realizarse en un medio de cultivo artificial o en un cocultivo endometrial autólogo (encima de una capa de células del propio revestimiento uterino de la mujer). Con un medio de cultivo artificial, puede haber el mismo medio de cultivo durante todo el período ( medio de monocultivo ), o puede usarse un sistema secuencial , en el que el embrión se coloca secuencialmente en diferentes medios, con diferentes formulaciones basadas en la diferente concentración y composición del líquido tubárico y uterino en relación con el cambio en la actividad metabólica del embrión durante su desarrollo. [5] Por ejemplo, cuando se cultiva hasta la etapa de blastocisto, se puede usar un medio para el cultivo hasta el día 3 y un segundo medio para el cultivo a partir de entonces. [6] El medio único o secuencial son igualmente efectivos para el cultivo de embriones humanos hasta la etapa de blastocisto. [7] Los medios de cultivo de embriones artificiales contienen básicamente glucosa, piruvato y componentes energéticos, pero la adición de aminoácidos, nucleótidos, vitaminas y colesterol mejora el rendimiento del crecimiento y desarrollo embrionario. En concreto, los medios de cultivo de embriones contienen más concentración de piruvato que de glucosa en la fase de clivaje y más concentración de glucosa que de piruvato en la fase de blastocisto. Esto se debe a que antes del día 3 el embrión utiliza las reservas del ovocito, sin embargo, a partir del día 3 y hasta el blastocisto empieza a expresar diferentes proteínas para continuar su desarrollo, por lo que empieza a degradar la glucosa (necesita más glucosa en este caso). [8] También se pueden añadir sustancias como antioxidantes, antibióticos, macromoléculas, hormonas y factores de crecimiento. [5] También están disponibles métodos que permiten el cultivo dinámico de embriones con flujo de fluidos y movimiento de embriones. [9] Un nuevo método en desarrollo utiliza el útero como incubadora y los fluidos intrauterinos naturales como medio de cultivo encapsulando los embriones en un vaso intrauterino permeable. [10]

Una revisión de metanálisis de 2013 de medios de cultivo de FIV disponibles comercialmente no pudo identificar un medio específico que fuera superior en términos de resultados del embarazo. [11]

Se ha demostrado que el uso de bajas concentraciones de oxígeno del 5% en lugar de alrededor del 20% en la atmósfera aumenta la tasa de nacidos vivos a una probabilidad relativa de 1,24, sin ninguna evidencia de un mayor riesgo de embarazos múltiples, abortos espontáneos o anomalías congénitas. [12]

Sistema de amortiguación

El control y la regulación del pH son obligatorios para el cultivo in vitro de embriones. Los medios de cultivo se pueden clasificar según el tipo de tampón utilizado:

Medio tamponado con CO₂/bicarbonato: utiliza el mismo sistema tampón fisiológico que rodea a las células de los mamíferos. Requiere el uso de incubadoras con CO₂ al 5-7 %;

Medio tamponado con fosfato: no requiere ambiente de CO₂. Parece tener efectos perjudiciales en el desarrollo embrionario in vitro;

Medio tamponado con HEPES: se utiliza como medio tamponado para la recolección de ovocitos humanos y la manipulación de embriones;

Medio amortiguado con MOPS: al igual que HEPES, tiene la ventaja potencial de que la capacidad de amortiguación depende menos de la temperatura. [13]

Temperatura

Si bien se ha planteado la hipótesis de que la incubación a una temperatura inferior a 37 °C puede ser una recreación más precisa de la temperatura en el tracto reproductivo femenino, la evidencia es incierta respecto de si las diferentes temperaturas para el cultivo de embriones tienen diferentes efectos sobre las tasas de embarazo o de nacidos vivos. [14]

Riesgos

Estudios realizados en animales han detectado anomalías epigenéticas en embriones sometidos a cultivo embrionario, lo que indica la necesidad de optimizar los procedimientos. [15]

Cultivo de embriones en especies no humanas

Además del cultivo de embriones humanos, la técnica se emplea ampliamente para especies no humanas, especialmente cuando se explora el desarrollo embrionario, la tecnología de reproducción asistida y la generación de animales modificados genéticamente . [16] Los embriones de ratón , en particular, se cultivan con frecuencia para estos fines de investigación específicos. Los dos medios de cultivo que se utilizan a menudo son el medio simplex optimizado de potasio (KSOM) y el fluido tubárico humano (HTF). Debido a que KSOM utiliza un mecanismo de amortiguación de bicarbonato , depende de una incubadora de CO 2 para mantener el pH correcto . [16] Al igual que con KSOM, HTF solo es apropiado para un entorno de incubadora de CO 2 pero se emplea durante el proceso de fertilización . [17] Amortiguado por un sistema HEPES , el medio M2 facilita la manipulación de embriones en condiciones ambientales sin la necesidad de regulación de CO 2. [18]

Referencias

  1. ^ ab Dar, S.; Lazer, T.; Shah, PS; Librach, CL (2014). "Resultados neonatales entre nacimientos de feto único después de la transferencia de embriones en etapa de blastocisto versus etapa de división: una revisión sistemática y metanálisis". Actualización de la reproducción humana . 20 (3): 439–448. doi : 10.1093/humupd/dmu001 . ISSN  1355-4786. PMID  24480786.
  2. ^ Glujovsky, Demián; Farquhar, Cindy; Quinteiro Retamar, Andrea Marta; Alvarez Sedo, Cristian Roberto; Blake, Deborah (30 de junio de 2016). "Transferencia de embriones en estadio de clivaje versus estadio de blastocisto en tecnología de reproducción asistida". Base de Datos Cochrane de Revisiones Sistemáticas (6): CD002118. doi :10.1002/14651858.CD002118.pub5. ISSN  1469-493X. PMID  27357126.
  3. ^ Brown, Julie; Daya, Salim; Matson, Phill (2016). "Transferencia de embriones en el día tres versus el día dos después de la fertilización in vitro o la inyección intracitoplasmática de espermatozoides". Base de Datos Cochrane de Revisiones Sistemáticas . 12 (12): CD004378. doi :10.1002/14651858.CD004378.pub3. ISSN  1469-493X. PMC 6463848 . PMID  27976360. 
  4. ^ Papanikolaou EG, Fatemi H, Venetis C, et al. (febrero de 2009). "La gemelación monocigótica no aumenta después de la transferencia de un solo blastocisto en comparación con la transferencia de un solo embrión en etapa de segmentación". Fertil. Steril . 93 (2): 592–7. doi : 10.1016/j.fertnstert.2008.12.088 . PMID  19243755.
  5. ^ ab Sunde, Arne; Brison, Daniel; Dumoulin, John; Harper, Joyce; Lundin, Kersti; Magli, M. Cristina; Van den Abbeel, Etienne; Veiga, Anna (octubre de 2016). "Es hora de tomar en serio el cultivo de embriones humanos: Tabla I". Reproducción humana . 31 (10): 2174–2182. doi : 10.1093/humrep/dew157 . ISSN  0268-1161. PMID  27554442.
  6. ^ Comparación de un medio único con medios secuenciales para el desarrollo de embriones humanos hasta la etapa de blastocisto Archivado el 21 de marzo de 2012 en Wayback Machine Melanie R. Freeman y Don Rieger. Nashville Fertility Center, Nashville, TN, EE. UU. y LifeGlobal, Guelph, ON, Canadá
  7. ^ Schneider, DT; Verza, S.; Esteves, SC (2009). "El medio único o secuencial es igualmente eficaz para el cultivo de embriones humanos hasta la etapa de blastocisto: un estudio piloto". Fertilidad y esterilidad . 92 (3): S231–S232. doi : 10.1016/j.fertnstert.2009.07.1564 .
  8. ^ Xella S, Marsella T, Tagliasacchi D, et al. (abril de 2010). "Calidad embrionaria y tasa de implantación en dos medios de cultivo diferentes: ISM1 versus Universal IVF Medium". Fertil. Steril . 93 (6): 1859–63. doi : 10.1016/j.fertnstert.2008.12.030 . PMID  19152877.
  9. ^ Swain JE, Smith GD (2011). "Avances en plataformas de cultivo de embriones: nuevos enfoques para mejorar el desarrollo embrionario previo a la implantación mediante modificaciones del microambiente". Hum. Reprod. Update . 17 (4): 541–57. doi : 10.1093/humupd/dmr006 . PMID  21454356.
  10. ^ Blockeel, C.; Mock, P.; Verheyen, G.; Bouche, N.; Le Goff, P.; Heyman, Y.; Wrenzycki, C.; Höffmann, K.; Niemann, H.; Haentjens, P.; De Los Santos, MJ; Fernández-Sánchez, M.; Velasco, M.; Aebischer, P.; Devroey, P.; Simón, C. (2008). "Un sistema de cultivo in vivo para embriones humanos utilizando una tecnología de encapsulación: un estudio piloto". Reproducción Humana . 24 (4): 790–796. doi :10.1093/humrep/dep005. PMC 2656929 . PMID  19273881. 
  11. ^ [1] Mantikou, E.; Youssef, MAFM; Van Wely, M.; Van Der Veen, F.; Al-Inany, HG; Repping, S.; Mastenbroek, S. (2013). "Medios de cultivo de embriones y tasas de éxito de FIV/ICSI: una revisión sistemática". Human Reproduction Update . 19 (3): 210–220. doi : 10.1093/humupd/dms061 . PMID  23385469.
  12. ^ [2] Mantikou, E.; Bontekoe, S.; Van Wely, M.; Seshadri, S.; Repping, S.; Mastenbroek, S. (2013). "Bajas concentraciones de oxígeno para el cultivo de embriones en tecnologías de reproducción asistida". Human Reproduction Update . 19 (3): 209. doi :10.1093/humupd/dms055. PMID  23377864.
  13. ^ Swain, Jason E.; Pool, Thomas B. (junio de 2009). "Nuevo sistema de amortiguación del pH para medios utilizados durante manipulaciones de gametos y embriones para reproducción asistida". Reproductive Biomedicine Online . 18 (6): 799–810. doi : 10.1016/s1472-6483(10)60029-6 . ISSN  1472-6491. PMID  19490784.
  14. ^ Baak, NA; Cantineau, AE; Farquhar, C; Brison, DR (17 de septiembre de 2019). "Temperatura del cultivo de embriones para reproducción asistida". Base de Datos Cochrane de Revisiones Sistemáticas . 9 (9): CD012192. doi :10.1002/14651858.CD012192.pub2. PMC 6748832 . PMID  31529804. 
  15. ^ Anckaert, E.; De Rycke, M.; Smitz, J. (2012). "Cultivo de ovocitos y riesgo de defectos de impronta". Actualización en reproducción humana . 19 (1): 52–66. doi : 10.1093/humupd/dms042 . PMID  23054129.
  16. ^ ab Summers, Michael C. (18 de septiembre de 2013). "Una breve historia del desarrollo de la familia de medios KSOM". Revista de reproducción asistida y genética . 30 (8): 995–999. doi :10.1007/s10815-013-0097-8. ISSN  1058-0468. PMC 3790120 . PMID  24046024. 
  17. ^ Wigger, Magdalena; Schneider, Marco; Feldmann, Anni; Assenmacher, Sonja; Zevnik, Branko; Tröder, Simon E. (24 de agosto de 2023). "Uso exitoso de HTF como medio de fertilización basal durante la fertilización in vitro con ratones SEcuRe". BMC Research Notes . 16 (1): 184. doi : 10.1186/s13104-023-06452-6 . ISSN  1756-0500. PMC 10463834 . PMID  37620881. 
  18. ^ Manipulación del embrión de ratón: manual de laboratorio (4.ª ed.). Cold Spring Harbor (NY): Cold Spring Harbor laboratory press. 2014. ISBN 978-1-936113-00-2.