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criptobiosis

La criptobiosis o anabiosis es un estado metabólico en organismos extremófilos en respuesta a condiciones ambientales adversas como la desecación , la congelación y la deficiencia de oxígeno . En el estado criptobiótico, todos los procesos metabólicos mensurables se detienen, impidiendo la reproducción , el desarrollo y la reparación. Cuando las condiciones ambientales vuelvan a ser hospitalarias, el organismo volverá a su estado de vida metabólico como estaba antes de la criptobiosis.

Formularios

Anhidrobiosis

Anhidrobiosis en el tardígrado Richtersius coronifer

La anhidrobiosis es la forma de criptobiosis más estudiada y se produce en situaciones de extrema desecación . El término anhidrobiosis deriva del griego para "vida sin agua" y se usa más comúnmente para la tolerancia a la desecación observada en ciertos animales invertebrados como los rotíferos bdelloides , tardígrados , salmuera , nematodos y al menos un insecto, una especie de quironómido ( Polypedilum vanderplanki ). Sin embargo, otras formas de vida exhiben tolerancia a la desecación. Estos incluyen la planta resucitada Craterostigma plantagineum , [1] la mayoría de las semillas de plantas y muchos microorganismos como la levadura de panadería . [2] Los estudios han demostrado que algunos organismos anhidrobióticos pueden sobrevivir durante décadas, incluso siglos, en estado seco. [3]

Los invertebrados que sufren anhidrobiosis a menudo se contraen hasta adoptar una forma más pequeña y algunos proceden a formar un azúcar llamado trehalosa . La tolerancia a la desecación en las plantas está asociada a la producción de otro azúcar, la sacarosa . Se cree que estos azúcares protegen al organismo del daño por desecación. [4] En algunas criaturas, como los rotíferos bdelloides, no se ha encontrado trehalosa, lo que ha llevado a los científicos a proponer otros mecanismos de anhidrobiosis, posiblemente involucrando proteínas intrínsecamente desordenadas . [5]

En 2011, se demostró que Caenorhabditis elegans , un nematodo que también es uno de los organismos modelo mejor estudiados, sufre anhidrobiosis en la etapa de larva dauer . [6] Investigaciones adicionales que aprovecharon las herramientas genéticas y bioquímicas disponibles para este organismo revelaron que, además de la biosíntesis de trehalosa, un conjunto de otras vías funcionales están involucradas en la anhidrobiosis a nivel molecular. [7] Se trata principalmente de mecanismos de defensa contra especies reactivas de oxígeno y xenobióticos , la expresión de proteínas de choque térmico y proteínas intrínsecamente desordenadas, así como la biosíntesis de ácidos grasos poliinsaturados y poliaminas . Algunos de ellos se conservan entre plantas y animales anhidrobióticos, lo que sugiere que la capacidad anhidrobiótica puede depender de un conjunto de mecanismos comunes. Comprender estos mecanismos en detalle podría permitir la modificación de células, tejidos, órganos o incluso organismos no anhidrobióticos para que puedan conservarse en un estado seco de animación suspendida durante largos períodos de tiempo.

A partir de 2004, se está aplicando esta aplicación de anhidrobiosis a las vacunas . En las vacunas, el proceso puede producir una vacuna seca que se reactiva una vez que se inyecta en el cuerpo. En teoría, la tecnología de la vacuna seca podría usarse en cualquier vacuna, incluidas las vacunas vivas como la del sarampión. También podría adaptarse para permitir la liberación lenta de una vacuna, eliminando la necesidad de refuerzos. Esto propone eliminar la necesidad de refrigerar las vacunas, haciendo así que las vacunas secas estén más disponibles en todo el mundo en desarrollo, donde la refrigeración, la electricidad y el almacenamiento adecuado son menos accesibles. [8]

Basado en principios similares, la lioconservación se ha desarrollado como una técnica para la conservación de muestras biológicas a temperatura ambiente. [9] [10] La lioconservación es una estrategia biomimética basada en la anhidrobiosis para preservar las células a temperatura ambiente. Se ha explorado como una técnica alternativa para la criopreservación . La técnica tiene las ventajas de poder conservar muestras biológicas a temperatura ambiente, sin necesidad de refrigeración ni uso de temperaturas criogénicas. [11] [12]

Anoxibiosis

En situaciones de falta de oxígeno (también conocida como anoxia), muchos criptobiontes (como M. tardigradum ) absorben agua y se vuelven turgentes e inmóviles, pero pueden sobrevivir durante períodos prolongados de tiempo. Algunos vertebrados ectotérmicos y algunos invertebrados, como los camarones de salmuera , [13] copépodos , [14] nematodos, [15] y gémulas esponja , [16] son ​​capaces de sobrevivir en un estado aparentemente inactivo durante condiciones anóxicas durante meses a décadas.

Los estudios sobre la actividad metabólica de estos organismos inactivos durante la anoxia no han sido en su mayoría concluyentes. Esto se debe a que es difícil medir grados muy pequeños de actividad metabólica de manera suficientemente confiable como para demostrar un estado criptobiótico en lugar de una depresión ordinaria de la tasa metabólica (ERM). Muchos expertos se muestran escépticos sobre la viabilidad biológica de la anoxibiosis, ya que el organismo consigue evitar daños en sus estructuras celulares debido a la energía libre negativa negativa del entorno, a pesar de estar rodeado de abundante agua y energía térmica y sin utilizar ninguna energía libre propia. . Sin embargo, hay evidencia de que la proteína p26 inducida por el estrés puede actuar como una proteína chaperona que no requiere energía en embriones quísticos de Artemia franciscana ( mono marino ), y muy probablemente una vía de polinucleótidos de guanina lenta y extremadamente especializada continúa proporcionando energía metabólica libre a los embriones de A. franciscana durante condiciones anóxicas. Parece que A. franciscana se acerca pero no alcanza una verdadera anoxibiosis. [17]

quimiobiosis

La quimiobiosis es la respuesta criptobiótica a altos niveles de toxinas ambientales. Se ha observado en tardígrados . [18]

criobiosis

La criobiosis es una forma de criptobiosis que tiene lugar como reacción a la disminución de la temperatura . La criobiosis comienza cuando el agua que rodea las células del organismo se ha congelado. Detener la movilidad de las moléculas permite al organismo soportar las temperaturas gélidas hasta que regresen condiciones más hospitalarias. Los organismos capaces de soportar estas condiciones suelen presentar moléculas que facilitan la congelación del agua en lugares preferenciales y al mismo tiempo prohíben el crecimiento de grandes cristales de hielo que de otro modo podrían dañar las células. [ cita requerida ] Uno de esos organismos es la langosta . [19]

Osmobiosis

La osmobiosis es la menos estudiada de todos los tipos de criptobiosis. La osmobiosis ocurre en respuesta al aumento de la concentración de soluto en la solución en la que vive el organismo. Poco se sabe con certeza, aparte de que la osmobiosis parece implicar un cese del metabolismo. [18]

Ejemplos

La artemia salina , Artemia salina , que se puede encontrar en Makgadikgadi Pans en Botswana , [20] sobrevive durante la estación seca cuando el agua de las charcas se evapora, dejando un lecho de lago prácticamente desecado.

El tardígrado , u oso de agua, puede sufrir los cinco tipos de criptobiosis. Mientras está en estado criptobiótico, su metabolismo se reduce a menos del 0,01% de lo normal y su contenido de agua puede caer al 1% de lo normal. [21] Puede soportar temperaturas , radiación y presión extremas mientras se encuentra en un estado criptobiótico. [22]

Algunos nematodos y rotíferos también pueden sufrir criptobiosis. [23]

Ver también

Referencias

  1. ^ Bartels, Dorotea; Salamini, Francesco (diciembre de 2001). "Tolerancia a la desecación en la planta resurrección Craterostigma plantagineum. Una contribución al estudio de la tolerancia a la sequía a nivel molecular". Fisiología de las plantas . 127 (4): 1346-1353. doi : 10.1104/págs.010765. PMC  1540161 . PMID  11743072.
  2. ^ Calahan, decano; Dunham, Maitreya; DeSevo, Chris; Koshland, Douglas E (octubre de 2011). "Análisis genético de la tolerancia a la desecación en Sachharomyces cerevisiae". Genética . 189 (2): 507–519. doi :10.1534/genética.111.130369. PMC 3189811 . PMID  21840858. 
  3. ^ Shen-Miller, J; Mudgett, María Beth; Schopf, J. William; Clarke, Steven; Berger, Rainer (noviembre de 1995). "Longevidad excepcional de las semillas y crecimiento robusto: antiguo loto sagrado de China". Revista americana de botánica . 82 (11): 1367-1380. doi :10.2307/2445863. JSTOR  2445863.
  4. ^ Erkut, Cihan; Penkov, Sider; Fahmy, Karim; Kurzchalia, Teymuras V (enero de 2012). "Cómo sobreviven los gusanos a la desecación: trehalosa pro agua". Gusano . 1 (1): 61–65. doi : 10.4161/gusano.19040. PMC 3670174 . PMID  24058825. 
  5. ^ Tunnacliffe, Alan; Lapinski, Jens; McGee, Brian (septiembre de 2005). "Una supuesta proteína LEA, pero no trehalosa, está presente en los rotíferos bdelloides anhidrobióticos". Hidrobiología . 546 (1): 315–321. doi :10.1007/s10750-005-4239-6. S2CID  13072689.
  6. ^ Erkut, Cihan; Penkov, Sider; Khesbak, Hassan; Vorkel, Daniela; Verbavatz, Jean-Marc; Fahmy, Karim; Kurzchalia, Teymuras V (agosto de 2011). "La trehalosa hace que la larva dauer de Caenorhabditis elegans sea resistente a la desecación extrema". Biología actual . 21 (15): 1331-1336. Código bibliográfico : 2011CBio...21.1331E. doi : 10.1016/j.cub.2011.06.064 . PMID  21782434. S2CID  18145344.
  7. ^ Erkut, Cihan; Vasilj, Andrej; Boland, Sebastián; Habermann, Bianca; Shevchenko, Andrej; Kurzchalia, Teymuras V (diciembre de 2013). "Estrategias moleculares de la larva Caenorhabditis elegans dauer para sobrevivir a la desecación extrema". MÁS UNO . 8 (12): e82473. Código Bib : 2013PLoSO...882473E. doi : 10.1371/journal.pone.0082473 . PMC 3853187 . PMID  24324795. 
  8. ^ "Grandes esperanzas para inyecciones sin frigorífico". Noticias de la BBC . 2004-10-19.
  9. ^ Yang, Geer; Gilstrap, Kyle; Zhang, Aili; Xu, Lisa X.; Él, Xiaoming (1 de junio de 2010). "Temperatura de colapso de soluciones importantes para la lioconservación de células vivas a temperatura ambiente". Biotecnología y Bioingeniería . 106 (2): 247–259. doi : 10.1002/bit.22690. PMID  20148402. S2CID  20748794.
  10. ^ Chakraborty, Nilay; Chang, Antonio; Elmoazzen, Heidi; Menze, Michael A.; Mano, Steven C.; Tóner, Mehmet (2011). "Una técnica de centrifugado para la lioconservación de células de mamíferos". Anales de Ingeniería Biomédica . 39 (5): 1582-1591. doi :10.1007/s10439-011-0253-1. PMID  21293974. S2CID  11204697.
  11. ^ Yang G, Gilstrap K, Zhang A, Xu LX, He X. "Temperatura de colapso de soluciones importantes para la lioconservación de células vivas a temperatura ambiente". Biotecnología Bioeng. 1 de junio de 2010; 106 (2): 247–259.
  12. ^ Chakraborty N, Chang A, Elmoazzen H, Menze MA, Hand SC, Toner M. "Una técnica de centrifugado para la lioconservación de células de mamíferos". Ann Biomed Ing. Mayo de 2011; 39 (5): 1582–1591.
  13. ^ Clegg y col. 1999
  14. ^ Marcus y otros, 1994
  15. ^ Crowe y Cooper, 1971
  16. ^ Reiswig y Miller, 1998
  17. ^ Clegg, James S. (2001). "Criptobiosis: un estado peculiar de organización biológica". Bioquímica y Fisiología Comparada B. 128 (4): 613–624. doi :10.1016/S1096-4959(01)00300-1. PMID  11290443. Icono de acceso cerrado
  18. ^ ab Møbjerg, N.; Halberg, KA; Jorgensen, A.; Persson, D.; Bjorn, M.; Ramlov, H.; Kristensen, RM (2011). "Supervivencia en ambientes extremos - sobre el conocimiento actual de las adaptaciones en tardígrados". Acta Fisiológica . 202 (3): 409–420. doi :10.1111/j.1748-1716.2011.02252.x. PMID  21251237. S2CID  20894284.
  19. ^ "Langostas congeladas devueltas a la vida". 18 de marzo de 2004.
  20. ^ C. Michael Hogan (2008) Makgadikgadi, El portal megalítico, ed. A. Burnham
  21. ^ Piper, Ross (2007), Animales extraordinarios: una enciclopedia de animales curiosos e inusuales , Greenwood Press .
  22. ^ Datos sobre tardígrados de la Universidad Wesleyan de Illinois
  23. ^ Watanabe, Masahiko (2006). "Anhidrobiosis en invertebrados". Aplica. Entomol. Zoológico . 41 (1): 15–31. Código Bib : 2006AppEZ..41...15W. doi : 10.1303/aez.2006.15 .

Otras lecturas