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Factor de crecimiento de fibroblastos y formación del mesodermo

Este artículo trata sobre el papel de la señalización del factor de crecimiento de fibroblastos en la formación del mesodermo .

La formación del mesodermo es un proceso de desarrollo complejo que implica una red intrincada de vías de señalización que coordinan sus actividades para garantizar que un grupo selecto de células dé lugar finalmente a los tejidos mesodérmicos en el organismo adulto. El factor de crecimiento de fibroblastos contribuye a este proceso no solo promoviendo la formación del mesodermo, sino también inhibiendo el desarrollo endodérmico .

Introducción

Durante el desarrollo temprano de los vertebrados , se establece el escenario para la especificación de las tres capas germinales  : endodermo , mesodermo y ectodermo , [1] que darán lugar al organismo adulto. El mesodermo eventualmente se diferenciará en numerosos tejidos, incluidos los músculos y la sangre . [2] Este proceso requiere la integración precisa de una variedad de vías de señalización como el factor de crecimiento transformante tipo β ( TGFβ ), el factor de crecimiento de fibroblastos ( FGF ), la proteína morfogenética ósea ( BMP ) y Wnt , para lograr la inducción , especificación, formación y diferenciación de la capa de mesodermo dentro de un tiempo y espacio determinados.

Red de vías de señalización

Los miembros de la superfamilia TGF-β, Activin y Nodal , [3] son ​​esenciales para la inducción mesodérmica, mientras que FGF y Wnt están a cargo de su mantenimiento y BMP es responsable de su patrón (2, 4) . Es importante señalar que estas vías, a su vez, dependen unas de otras. Por ejemplo, en Xenopus , la interrupción de la señalización de FGF da como resultado la inhibición de la inducción dependiente de Nodal y la formación del mesodermo del tronco y la cola (5,6) , lo que demuestra que la inducción mesodérmica dependiente de TGF-β es en sí misma dependiente de la señalización de FGF (7) .

Señalización de FGF

Durante las etapas de blástula y gástrula , las células vegetales (el endodermo presunto) liberan señales a las células de la zona marginal que resultan en la inducción y la formación de patrones del mesodermo (1, 8, 24) . Una de estas señales, FGF, logra esto a través de la regulación de los factores de transcripción de la caja T, una estrategia que comparten Xenopus , el ratón y el pez cebra (9) . Tras la unión de FGF a su receptor, FGFR, el par de receptores se dimeriza y se transfosforila, lo que le permite reclutar proteínas que activan Ras y Raf. A esto le sigue la fosforilación posterior de MEK y MAPK. MAPK puede entonces entrar en el núcleo y activar los factores de transcripción objetivo (2) .

Regulación de los factores de transcripción de la caja T

En particular, tres factores de transcripción de caja T , Brachyury (ranas) o No tail (peces) (10) , VegT (rana) o Spadetail (peces) y Tbx6 (peces y ranas) (11) son objetivos importantes de FGF que desempeñan un papel clave en la formación del mesodermo (12,13) . En Xenopus , pez cebra y ratón, Brachyury (bra), es necesario para la formación posterior (9) . FGF es necesario para la localización inicial de Xbra en el lado dorsal del embrión en la zona marginal, así como para establecer y mantener la expresión adecuada de la transcripción. La interrupción de la señalización de FGF con un inhibidor de FGFR, SU5402, da como resultado la pérdida de la expresión de Xbra en embriones (14,15) . FGF podría activar la expresión de Xbra a través de Ets2, un factor de transcripción objetivo de FGF que se une a un elemento sensible a FGF de la secuencia ascendente (16) .

Bucle de retroalimentación

La activación de FGF por dos ligandos que funcionan juntos, FGF4 y FGF8 (17) en Xenopus y FGF8 y FGF24 en pez cebra (18) , es necesaria para la formación del mesodermo. Tanto la señalización de FGF como la expresión de Xbra se mantienen a través de un ciclo de retroalimentación en el que tras la activación de FGF, se activa la expresión de Xbra y Xbra luego activa directamente eFGF, un miembro de la familia FGF (19) . Al mantener activa la señal de FGF, este ciclo de retroalimentación contribuye a la función de Fgf4 en la especificación del mesodermo paraxial (14) . La inhibición de FGFR da como resultado una reducción significativa de la expresión de Xbra y Fgf4. Aunque es poco probable que Fgf8 sea parte del ciclo de retroalimentación, contribuye a la formación del mesodermo activando Fgf4 (14) .

Otros componentes y funciones

Además, la inhibición de otros componentes de la vía del FGF, incluidos Ras , Raf y el factor de transcripción Ets2, altera la formación mesodérmica, mientras que su sobreexpresión induce marcadores mesodérmicos (9) . Además de promover la formación mesodérmica, el FGF también puede prevenir el desarrollo endodérmico. En el pez cebra, la actividad del FGF puede regular a la baja Casanova, un factor de transcripción nodal y, por lo tanto, prevenir su función de desarrollo endodérmico (20) .

Regulación de VegT

Otro actor clave en la formación del mesodermo es VegT, un inductor de transcripción expresado materna y cigóticamente localizado en el hemisferio vegetal . En Xenopus , VegT activa la transcripción de genes relacionados con Nodal (Xnr), Activina y otras transcripciones mesodérmicas, que son responsables de iniciar la formación mesodérmica (14,21) . Utilizando receptores de Activina negativos dominantes en los casquetes animales de Xenopus , se ha demostrado que la señalización de FGF es crucial para la formación del mesodermo a través de la activación de este y otros miembros de la familia TGFβ (7,22) , y este proceso está mediado por la activación de la transcripción dependiente de VegT.

Las propiedades de inducción mesodérmica de VegT dependen de la dosis, de modo que en los explantos de capuchón animal de Xenopus, las dosis altas inducen el mesodermo dorsal, mientras que las dosis más bajas dan como resultado el mesodermo ventral (23) . Lo más importante es que VegT desempeña un papel importante en la expresión de Xbra, y esto depende de la señalización de FGF. En Xenopus , la interrupción de la señalización de FGF inhibe la actividad inductora de transcripción de VegT y la expresión de Xbra, incluso a las dosis en las que se sabe que VegT induce de forma robusta la expresión de Xbra. Esto demuestra que la inducción de Xbra por VegT y su función posterior en la formación del mesodermo depende de la señalización de FGF (14) .

Referencias

1. Nentwich O, Dingwell KS, Nordheim A, Smith JC. 2009. Flujo descendente de FGF durante la formación del mesodermo en Xenopus : los roles de Elk-1 y Egr-1. Dev Bio 336:313-26.

2. Kimelman D. 2006. Inducción del mesodermo: de los casquetes a los fragmentos. Nature Rev Genet 7:360-72.

3. Heasman J. 1997. Modelado de la blástula de Xenopus . Development 124:4179-91.

4. Heasman J. 2006. Modelado del embrión temprano de Xenopus . Development 133:1205–1217.

5. Amaya E, Musci TJ, Kirschner MW. 1991. La expresión de un mutante dominante negativo del receptor FGF altera la formación del mesodermo en embriones de Xenopus . Cell 66(2):257-70.

6. Mitchell TS, Sheets MD 2001 La vía FGFR es necesaria para las funciones de inducción del tronco del organizador de Spemann. Dev Biol 237:295–305

7. Cornell RA, Kimelman D. 1994. La inducción del mesodermo mediada por activina requiere FGF. Development 120:453–462.

8. Kimelman D, Griffin KJ. Inducción y modelado del mesendodermo en vertebrados. 2000. Curr Opin Genet Dev 10:350-6.

9. Böttcher RT, Niehrs C. 2005. Señalización del factor de crecimiento de fibroblastos durante el desarrollo temprano de vertebrados. Endocr Rev 26(1):63-77.

10. Halpern ME, Ho RK, Walker C, Kimmel CB 1993 La inducción de los músculos pioneros y la placa del suelo se distingue por la mutación sin cola del pez cebra. Cell 75:99–111

11. Hug B, Walter V, Grunwald DJ 1997 tbx6, un gen relacionado con Brachyury expresado por precursores mesendodérmicos ventrales en el embrión de pez cebra. Dev Biol 183:61–73

12. Goering LM et al. 2003. Una red de interacción de genes T-box dirige la expresión y el destino de los genes en el mesodermo del pez cebra. Proc. Natl Acad. Sci. 100:9410-15.

13. Kimmel CB, Kane DA, Walker C, Warga RM, Rothman MB 1989 Una mutación que cambia el movimiento y el destino de las células en el embrión de pez cebra. Nature 337:358–362

14. Fletcher RB, Harland RM. 2008. El papel de la señalización de FGF en el establecimiento y mantenimiento de la expresión génica mesodérmica en Xenopus . Dev Dyn 237 (5):1243-54.

15. Amaya E, Stein PA, Musci TJ, Kirschner MW. 1993. Señalización de FGF en la especificación temprana del mesodermo en Xenopus . Development 118:477–487.

16. Vonica A, Gumbiner BM. 2002. Expresión de Brachyury en el embrión temprano de Xenoups laevis. Dev Bio 250:112-27.

17. Fletcher RB, Baker JC, Harland RM. 2006. Las formas de empalme de FGF8 median la formación temprana del mesodermo y del tejido neural posterior en Xenopus . Development 133:1703–1714.

18. Draper BW, Stock DW, Kimmel CB. 2003. El fgf24 del pez cebra funciona con el fgf para promover el desarrollo mesodérmico posterior. Development 130:4639-54.

19. Isaacs HV, Pownall ME, Slack JMW. 1994. El eFGF regula la expresión de Xbra durante la gastrulación de Xenopus . EMBO J 13:4469–4481.

20. Mizoguchi T, Izawa T, Kuroiwa A, KikuchiY. 2006. La señalización de Fgf regula negativamente la inducción del endodermo dependiente de Nodal en el pez cebra. Dev Biol 300:612–622.

21. Clements D, Friday RV, Woodland HR. 1999. Modo de acción de VegT en la formación del mesodermo y el endodermo. Development 126:4903-11.

22. Hemmati-Brivanlou A, Melton DA. 1992. Un receptor de activina truncado inhibe la inducción del mesodermo y la formación de estructuras axiales en embriones de Xenopus. Nature 359:609 –614.

23. Horb ME, Thomsen GH. 1997. Un factor de transcripción T-box localizado en el vegetal en los huevos de Xenopus especifica el mesodermo y el endodermo y es esencial para la formación del mesodermo embrionario. Development 124:1689–1698.

24. Pourquié, Olivier (2001). "Somitogénesis de vertebrados". Revista anual de biología celular y del desarrollo . 17 (1). Revistas anuales : 311–350. doi :10.1146/annurev.cellbio.17.1.311. ISSN  1081-0706. PMID  11687492.

Referencias

  1. ^ (1)
  2. ^ (2)
  3. ^ (3)